Di r ecci ó n:Di r ecci ó n: Biblioteca Central Dr. Luis F. Leloir, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Buenos Aires. Intendente Güiraldes 2160 - C1428EGA - Tel. (++54 +11) 4789-9293

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Tesis de Posgrado

Basidiomicetos xilófilos en bosquesBasidiomicetos xilófilos en bosquesimplantados de pinus elliottii yimplantados de pinus elliottii y

pinus taedapinus taeda

Blumenfeld, Silvia N.

1983

Tesis presentada para obtener el grado de Doctor en CienciasBiológicas de la Universidad de Buenos Aires

Este documento forma parte de la colección de tesis doctorales y de maestría de la BibliotecaCentral Dr. Luis Federico Leloir, disponible en digital.bl.fcen.uba.ar. Su utilización debe seracompañada por la cita bibliográfica con reconocimiento de la fuente.

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Cita tipo APA:Blumenfeld, Silvia N.. (1983). Basidiomicetos xilófilos en bosques implantados de pinus elliottii ypinus taeda. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires.http://digital.bl.fcen.uba.ar/Download/Tesis/Tesis_1798_Blumenfeld.pdf

Cita tipo Chicago:Blumenfeld, Silvia N.. "Basidiomicetos xilófilos en bosques implantados de pinus elliottii y pinustaeda". Tesis de Doctor. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires.1983. http://digital.bl.fcen.uba.ar/Download/Tesis/Tesis_1798_Blumenfeld.pdf

tesis 1798UNIVERS'DAD DE BUENOS AIRES

pj. 2FACULTAD DE CIENCIAS EXACTAS Y NATURALES

BASIDIOMICETOS XILOFILOS EN BOSQUES IMPLANTADOS

DE PINUS ELLIOTTII Y PINUS TAEDA

Silvia N. Blumenfeld

TESIS PARA OPTAR AL TITULO DE DOCTORA EN CIENCIAS BlOLOGICAS

DIRECTOR: DR. JORGE E. WRIGHT

-1983"

A mis padresA mi eSpOSO e hijosA mis maestros

INTRODUCCION

ANTECEDENTES

INDICE

I) Modelosde colonización........................II) Colonizaciónde sustratos lignicolas ...........

i) Arbolesii) Arboles

iii) Troncosiv) Tocones

III) ClasificaIV) Técnicas dV) Trabajos reMATERIALES Y M

1) Sitio de mu

vivos............................muertosenpie ..................., postesy estacas................

ción de las comunidades fúngicas ..e muestreo........................alizadosenel pais ...............ETODOS

estreoa) Ubicacióngeográfica........................b) Clima ..

i) Estación Experimental INTA—Delta ............ii) Puert

2)3)4)

Muestreo deMuestreo dea) Misionesb) Delta ..

5) Densidad es6)7)8) Aislamiento9) Estudio delO) Ensayo de

Contenido d

ll) Ensayo dea) Resinab) Resina

o Libertad ( Misiones)oooconteo-000.01.10.000...­los árbolesenpie .................los troncos estibados

pecifica de los troncos estibadose humedadde los troncos estibados

de las cepaslos cultivos

Identificaciónde las eSpecies......................

pérdida de peso de la madera "in vitro" ..medio adicionado con resinanaturalsólida

NJCDmU'ïJi-hld

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C) oconocio-OO'OOOIOOCOOOUOQooo-occ.d) Medio de agar-malta adicionado con sol. buffer .. " 26

12) Ensayopara probarinteracción ..................... " 26RESULTADOS............................................. " 28I) Arbolesenpie ...................................... " 28

a) Análisis de la composiciónflorística .........¡.. " 28b) Análisis según el Método de promedio de los pares

pesados(WPGMA)........................,......... " 30c) Análisis de otros bOSqueS........................ " 33

II) Troncosesribados.................................. " 33a) Análisis de 1a composiciónflorística ........... " 33b) Análisisestadístico............................ " 41

i) AN.FA.C0..................................... " 41ii) "47c) Densidad y humedadde los troncos estibados ..... " 49

III) Estudiodelos cultivos........................... " 54IV) Ensayo de pérdida de peso de tacos de madera "in vitro" 54V) Ensayode medioadicionado con resina ............... " 60VI)Interacciones...................................... " 63VII) Análisis de‘las poblaciones fúngicas en función de

los hOSpedantes, las estaciones del año y el lugar0.0I¡CI-ICICÍ'OOÜCOIOCDOOUOOOOCOOOOOOOI.

VIII) Clasificación de las eSpecies según el grado de im­portancia de 1a función ecológica de cada una .... 72

PARTETAXONOMICA....................................... 76CLAVE DE LAS ESPECIES REGISTRADAS SOBRE PINUS ELLIOTTII

Y PINUSTAEDAEN MISIONESY EL DELTA .................. 76CLASIFICACIONSISTEMATICADE LAS ESPECIES .............. 81DESCRIPCIONDELASESPECIES............................ 82CONCLUSIONES........................................... 127FIGURAS................................................ 130FOTOGRAFIAS.......................v.................... 155

.-Ioo...¡IOOOOOUOOJOOOOOCOOOIOCC¡IIOOIIOOOO

AGRADECIMIENTOS

Al Dr. Jorge E. Wright, por haberme enseñado con profundoentusiasmo los diversos caminos de la investigación mico­lógica, brindándome su apoyo permanente en la direcciónde este trabajo.

A la Ing. Agr. Marta B. Collantes, por su asesoramiento enel tratamiento ecológico y la interpretación de los resul­tados estadísticos.

A la empresa Alto Paraná S.A., en las personas del Ing. Agr.Rosario De Leonardis, Gerente Forestal y del Dr. Jorge R..Deschamps,Jefe de Investigación y Desarrollo Forestal, porhaberme prestado su apoyo económico y técnico para la rea­lización de este trabajo.

A las autoridades de la Estación EXperimental del INTADelta,por facilitarme el acceso a las plantaciones y los datos téc­nicos necesarios.

Al CONICETy al IFONApor haber otorgado parte de los subsirdios utilizados en la realización de este trabajo.

Al Sr. Emilio del Busto, lamentablemente falleéido, por suinestimable e irreemplazable colaboración técnica.

A Edy Warmanpor la realización del trabajo fotográfico.

A la Sta. Casilda Pardo, por su ayuda técnica.

A1 Inn(1.

estadístico.Agr. Héctor D. Ginzo por 1a realización del análisis

A1 Ing. D. Almonacid del Centro de Cómputos de Salud de 1aUniversidad de Buenos Aires, por el procesamiento de losdatos.

A1 Dr. Mario Rajchenberg por su colaboración en la identi­ficación de algunos materiales.

A 1a Lic. Silvia E. López por el permanente intercambio deideas y sugerencias para 1a mejor realización del trabajo.

A mis compañeros de 1a Facultad por su apOyo constante ysu amistad.

INTRODUCCION

La madera, como sustrato de colonización para nume­rosos microorganismos ha sido intensamente estudiada en par­ticular en el hemisferio Norte. El significado económicoqueposeen las grandes extensiones de bOSquesnaturales o implan­tados, el acOpio de troncos a la intemperie comomateria pri­ma para la industria de la madera y el papel o la reforesta­ción de zonas intensamente explotadas por el hombre son, entreotros, poderosos argumentos para encarar el estudio de la co­lonización de sustratos lignicolas y la sucesión de microorga­nismos que lleva a su deterioro y degradación.

Los diversos trabajos que se han realizado encara­ron el estudio tanto de árboles vivos como de madera muerta, yen cada caso el tratamiento es totalmente diferente. En losárboles vivos la pudrición es el estado final de un largo pro­ceso que se inicia por la producción de heridas e involucrareSpuestas protectoras, químicas y anatómicas, del árbol e in­teracciones de microorganismos, ya sea entre ellos y con elhOSpedante (Shigo, 1975). Este modelo de proceso de la pudri­ción involucra 3 estados principales: l) reSpuesta del hOSpe­dante a las heridas, expresada en una leve decoloración delxilema comoresultado de procesos quimicos que involucran laformación de fenoles y otros componentes; 2) invasión por mi­croorganismos pioneros, que sobrepasan las barreras de pro­tección quimica e invaden el xilema; la decoloración se inten­sifica comoresultado de las interacciones entre los microorga­nismos invasores y las células vivas del xilema; 3) degrada­ción de las células muertas, que ocurre cuando entran los mi­croorganismos que producen verdaderas pudriciones, eSpecial­mente basidiomicetos que invaden y degradan las sustancias dela pared celular.

La madera comomaterial inerte, en-cambio, no produ­ce respuosta alguna al invasor; solamente puede ser modificada

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por la acción del organismo, ya sea por destrucción de membra­nas, penetración a través de las paredes, formación de cavida­des en las paredes, sinergismo o antagonismo entre organismos.o competencia por nutrientes (Levy, 1975).

Los 2 factores principales que influyen en el esta­blecimiento de la pudrición son las condiciones ambientales a­pr0piadas y una adecuada fuente de inóculo, pero ambos puedenno ocurrir simultáneamente. De este modo encontramos que secrean microclimas diferentes según sea la condición del sustra­to estudiado. Cuandola madera está en contacto directo con elsuelo, las condiCiones para la pudrición permanecen más o menosconstantes; esta situación difiere radicalmente cuando se tra­ta de madera expuesta no en contacto con el suelo. Los orga­nismos que pueden colonizar en este caso, no tienen reserva dematerial alimenticio comola que existe en el suelo, sobre to­do para sobrellevar las fases tempranas de la invasión (Butcher,1978), y esto puede limitar su capacidad para invadir ese sus­trato.

Conbase en estas consideraciones, y en los antece­dentes que encontramos sobre el tema, nos pareció muyimportan­te iniciar el estudio de los basidiomicetos xilófilos sobre doseSpecies de notoria importancia económica en nuestro país:Pinus elliottii y Pinus taeda, utilizadas en la industria co­momaderables para diversos fines y para la elaboración de pas­ta celulósica.

El plan de trabajo se diagramó sobre la base de lossiguientes aSpectos:1) Reconocimiento taxonómico y descripción de los basidiomi­cetos xilófilos sobre B.elliottii y E.taeda en plantaciones delas provincias de Buenos Aires y Misiones.2) Determinación de 1a función ecológica de cada eSpecie en­contrada dentro de la comunidad fúngica y en relación con loshOSpedantes.3) Determinación de las variaciones cuali y cuantitativas de las

eSpecies encontradas en función del hOSpedante, las estacio­nes del año, y el lugar geográfico.

ANTECEDENTES

Prácticamente hasta el año 1950, el estudio de lassucesiones fúngicas sobre desechos vegetales sobre el suelono es significativo. Chesters (1949,1950) fué el primero en re­saltar que para estudiar los hongos del suelo hay que verificarprimero lo que sucede con los materiales que llegan a él, yaque lo hacen notablemente modificados; realizó el estudio dela sucesión de ascomicetos asociados con la pudrición de tron­cos y ramas de árboles deciduos, pero lo hizo en forma descrip­tiva, con observaciones no cuantitativas.

Nangenot (1952) efectuó un estudio ecológico de loshongos xilófilos sobre troncos caidos de diferentes árbolescaducos (fresno, abedúl, haya, aliso, entre otros): Bncontró230 eSpecies dentro o sobre madera, y pudo reconocer 7 estadosde descomposición, ya citados por Deschamps (1980:31-32).

I) Modelos gg colonizaciónLos principios que gobiernan la colonización de los

desechos vegetales y 1a madera, fueron tratados por diversosautores que trataron de plantear modelos más o menos genera­les.

Garret (1963) prOpuso un esquema en el cual la colo­nización está relacionada con la secuencia de utilización delos componentes orgánicos de los sustratos. Reconoce 4 esta­dos en la descomposición de los tejidos senescentes y muertos:Estado primario: involucra la presencia de parásitos débiles

sobre los tejidos senescentes.Estado l : los tejidos muertos son invadidos por saprófitos

primarios que viven de azúcares y compuestos car­bonados más simples que la celulosa.

Estado 2 : dominanlos hongos celuloliticos y los saprófitossecundarios asociados, que utilizan los productosde la descomposición de la celulosa.

Estado 3 : aparecen los hongos lignolí :os, capaces de uti­lizar sustancias altamente complejas.

Comoexcepción de la sucesión descripta, el autor menciona lacolonización de tocones recién cortados de coníferas, dondelos hongoslignoliticos anteceden a los celuloliticos.

Hudson (1968) hace una revisión de los primeros tra­bajos realizados sobre colonización fúngica en sustratos 1eño­sos naturales, y plantea el mismoesquema de descomposición e­nunciado por Garrett, incorporando los sustratos vivos. Esta­blece para los tejidos muertos una secuencia que se inicia conlos asomicetos e imperfectos, sigue con los basidiomicetos yculmina con los habitantes del suelo.

Pugh (1980) explica los cambios que se observan através del tiempo en la micoflora que coloniza cualquier tipode sustrato. Esto se da en función de 2 factores primordiales:el sustrato, que sufre modificaciones comofuente de nutrientes,y los hongos que deben desarrollar, en consecuencia, diversasestrategias. El autor reconoce 4 grupos de hongos: ruderales,competidores,estres-tolerantes y sobrevivientes escapistasya descriptas por Cabral (1982:43-44).

II) Colonización de sustratos lignícolasLos detalles de la infección primaria y 1a coloniza­

ción subsiguiente, dependen de la manera en que la madera mue­re y queda eXpuesta a 1a acción de los microorganismos, y delos factores ambientales a que está sujeta. En algunos casoslas sucesiones siguen patrones de desarrollo diferentes a losclásicos.i) Arboles vivos

Goody Nelson (1962) encararon el estudio de la su­cesión sobre álamos vivos, aislando 63 eSpecies. Alternaria,CytOSpora, Haploñraphium, Penicillium y Trichoderma, asi comoalgunas bacterias, se aislaron frecuentemente en las zonas depudrición incipiente o en zonas que no presentaban ningún

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síntoma de invasión fúngica. Sin embargo estos hongos fueronaislados con 1a mismafrecuencia en zonas de pudrición avan­zada. Entre los basidiomicetos aparecieron con frecuencia Fomesigniarius, Phlebia gp. y Stereum 52.

Etheridge (1961) estudió la sucesión en árboles vi­vos de POpulus tremuloides reconociendo 5 estados: 1) bacte­rias, que persisten durante todas las etapas de la pudrición;2) fase en la que predominan las eSpecies de CXtOSDOPa,luegOde4 años de la muerte de las ramas; 3) fase en la que predominanCytOSpora chrysosoerma, Phoma52. y Libertella s2., que aparecenlue o de 6 años- 4) fase en 1a ue redominan los basidiomicetosg 2 q p s

que aparecen entre los 8 y 9 años, siendo los más frecuentesCorticium polygonumy Bjerkandera adusta.

Shigo (1967) estudió las sucesiones de organismos queprovocan la decoloración y pudrición de árboles vivos de Facus,Betula y ¿333. Encuentra relativamente pocas eSpecies; los co­lonizadores primarios son hongos del azúcar que con excepción deCeratocystis piceae y 2 ó 3 eSpecies más, no son celulolíticosni provocan pudriciones blandas. Son seguidos directamente porhongos que provocan pudriciones blancas, comoPolyporus abietinus,Stereum s2. y PeniODhoragigantea, entre otros. Bn.el último es­tadío aparecen los hongos celulolíticos, de pudrición castaña,comoFomespinicola, Lenzites sepiaria y Fomes subroseus.

Jahn (1968) observó la sucesión fúngica en árboles vi­vos de Abies alba. Los colonizadores primarios penetran por ra­mas heridas, siendo Aleurodiscus calycinus y TrychOSCyphellacalxcia los más frecuentes. Entre los lO y 13 años aparecen losbasidiomicetos que provocan pudriciones severas como Fomespinicola, Ganodermaapplanatum, Phellinus pouzariiy Fomesannosus.Luego de 13 años prevalecen los hongos que causan pudricionesblandas y los agaricales reemplazan a los políporos.

ii) Arboles EEHPCOSen niePr“' “‘FKF,]°66) sstudió ln pudriWÏÉn en álamos y

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y pinos destruidos por el fuego, utilizando técnicas de aisla­miento. En ambos casos obtuvo una clara sucesión. En los álamos(POpulus tremuloides) aparecieron Corticium polígonum, LibertellaEp. y Phialthora alba en los estadios de pudrición incipiente.Luego avanzaron Fomes igniarius y Radulum casearium y, con me­nor frecuencia Pholiota spectabilis y Armillariella mellea, pro­vocando una pudrición severa. En los pinos (Pinus banksiana) apa­recieron primero algunos imperfectos y luego los basidiomicetos,siendo Fomes pini y PeniOphora pseudODini los de frecuencia más— — 4alta. En cultivo no encontró antagonismos ni sinergismos evidentes,explicando la schencia regular de organismos por alteracionesen la acidez y eSpecialmente en el contenido de humedaddel sus­trato.

Kaarik (1974) realizó un trabajo sobre árboles de Piceaabies muertos por el ataque de insectos y obtuvo una sucesión si­milar, con el agregado de una ola de hongos que tiñen de azul elsustrato registrada con posterioridad a la aparición de los basi­diomicetos, En la base de los árboles, en donde es mayor el con­tenido de humedad, no aparecieron basidiomicetos hasta los 6meses; en la parte superior de los troncos lo hicieron deSpuésde 1 año. Las eSpecies más frecuentes fueron Polyporus kymatodes,Sistotrema brinkmannii, Polyporus abietinus y PeniOQhoraqiqantea.

iii) Troncos, postes y estacasHenningsson (1962) estudió la descomposición fúngica

de madera de Pinus sylvestris, Picea abies y Betula pubescens.Para describir la flora utilizó técnicas de aislamiento y deobservación directa de eSporóforos. Encontré que con las pri­meras obtuvo mayores frecuencias de bacterias y mohos en losestadios de pudrición incipiente. En las pudriciones avanzadasobservó la presencia de 15 basidiomicetos, entre los que Fomesannosus, PeniOphora gigantea, Corticium laeve, Polyporus abie­tinus, Stereum sanguinolentum y Lenzites sepiaria son los máscomunes, junto con varias eSpecies de Trichoderma. Verificó

,8

que el contenido de humedady la densidad de las áreas más ata­cadas son menores que las de las partes sanas de la madera.

Henningsson (1967,1968) realizó el estudio de des­composición de madera de abedul y álamo, estibada en 5 lugaresdiferentes de Suecia, analizando la flora y los cambios en elcontenido de humedad, densidad y composición quimica del sus­trato. Por observación de eSporóforos obtuvo la secuencia si­guiente: a) en la primera fase del deterioro predominaron laseSpecies de Corticium; b) hacia el fin del primer año y duran­te el segundo aparecieron Stereum púrpureum, Penioohora incar­nata y Libertella betulina; c) finalmente, en el tercer año,predominaron Stereum hirsutum y el grupo de eSpecies afines aCoriolus versicolor. El autor puntualiza que las primeras es­pecies descomponenmuy lentamente el sustrato, mientras quelos basidiomicetos que aparecen más tarde son muchomás acti­

'vos. Asimismoobservó que el micelio de los basidiomicetos cau­santes de pudriciones blancas se aisló de la madera a partirde los 3 meses de estibada, muchoantes de que aparecieran losreSpectivos eSporóforos, pero verificó que por aislamiento seobtiene la mismasecuencia de aparición que la de los eSporó­foros sobre los troncos estibados.

Corbett y Levy (1963) estudiaron la sucesión de or­ganismos en postes enterrados y expuestos de Pinus y Betula.De los resultados obtenidos pr0ponen el siguiente patrón decolonización:_a) Moniliales grupo l (eSpecies de.Penicillium,Trichoderma y Botrytis) y SphaerOpsidales (hongos que provo­can pudriciones blandas); b) Honiliales grupo 2 (eSpecies deGliocladíoosis y CYlindrocarpon); c) Basidiomycetes (C09ri­nus y otras eSpecies no identificadas).

Merrill y French (1966) prOpusieron un patrón decolonización similar para la madera de Pinus ponderosa, endonde los mohos son los pioneros, luego aparecen los hongosque provocan pudriciones blandas, y el único basidiomiceto en­contrado es Sistotrema brinkmannii.

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Butcher (1968) estudió la sucesión un poutcs dePinus radiata en Nueva Zelandia. Establecld ¡ü mismatenden­cia de la sucesión que Merrill y French Mmm) y Corbett yLevy (1963):a) en las partes SUperiores dv lun postes se re­gistran primero hongos que tiñen de azul v1 sustrato y luegomohos; b) a la altura del suelo y en las pJPLCSenterradas delos postes aparecen primero los mohos y Inogo son reemplaza­dos por hongos que producen verdaderas pudvluiones. El au­tor resalta la importancia del contenido de humedadde lamadera comoel factor que más gravita en o] curso y la rapidezde la colonización por los microorganismos.

Banerjee y Levy (1971) estudiaron la sucesión fún­gica en postes de Betula y Pinus en Inglaterra, comparandolaspartes aéreas con las zonas a ras del suelo. Encontraron 20géneros que colonizan la superficie del sustrato, pero menosdel 50%de las eSpecies penetra a 5 mmde profundidad, y so­lamente 3 eSpecies corticícolas penetran a 25 mm, y 2 a 45 mmluego de 10 meses de exposición de los postes. Los basidiomi­cetos se encontraron en todas las profundidades, excepto enla capa superficial. La sucesión fúngica sobre la SUperficiedel suelo fué: a) hongos que tiñen la albura; b) hongos quetiñen la albura junto con hongos que provocan pudriciones blan­das; c) basidiomicetos.

Káárik (1967,1968) siguó la colonización de postesde pino y abeto comparandolas partes aéreas con las enterra­das, por períodos de 6, 12 y 18 meses, obteniendo resultadoscontrastantes cón los de Butcher (0p. cit.) y Merrill y French(op. cit.), ya que los basidiomicetos de pudriciones blancasaparecen entre los 4 y 6 meses, pero poseen baja capacidadlignolitica. Los que causan verdadero deterioro se registra­ron entre los 12 y 18 meses, pero al mismo tiempo que los hon­gos causantes de manchas y pudriciones blandas continúan lacolonización activa de la madera. Encontró una distribuciónvertical de perfcc“amentr fefïnl' hn las partes

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superiores predominancasi exclusivamente los basidiomicetos,como PeniOphora gigantea, Stereum sanguinolentum y Polyporusamorphus;otros atacan las partes aéreas hasta la superficiedel suelo, comoFomes annosus y Polvporus borealis; los hon­gos imperfectos se encuentran a ras y bajo 1a superficie delsuelo.

iv) ToconesMeredith (1959) describió la sucesión sobre tocones

recién cortados de Pinus, que son colonizados por un númerorelativamente bajo de hongos que son capaces de vencer la re­sistencia activa de la madera aún viva. Los colonizadores pri­marios fueron basidiomicetos,Fomes annosus, PeniOphora giganteay Stereum sanguinolentum, junto con otros hongos no celulolíti­cos que provocan tinción azul del sustrato, comoCeratocvstis.Luego de 2 años dominan los agaricales, principalmente Naemato­loma fasciculare, junto con otros poliporos, comoPolvporusadustus y Polystictus abietinus. El estado final de la descom­posición está representado por Tricholoma rutilans. El númerode Phycomycetes y hongos imperfectos aumenta a medida que pro­gresa la descomposición.

Káárik y Rennerfelt (1957) realizaron un trabajo so­bre la flora fúngica en tocones de pino y abeto en Suecia,en—contrando una situación similar a la descripta por Meredith (0p.cit.).

Rayner (1977) estudió la sucesión fúngica en toconesde abeto, haya y roble, con diferentes tratamientos quimicos,en distintos sitios, tomandoen cuenta los carpóforos. Encon­tró 3 fases en la descomposición, cada una de las cuales re­presenta un ensamble particular de eSpecies en un momentode­terminado de la descomposición, pero no los considera estadossucesionales definidos, ni plantea que necesariamente una fa­se sigue a la otra. Encontró algunas eSpecies asociadas adeterminado tipo de tejidos, comoNaematolomafasciculare,que

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siempre produce un extenso micelio subcortical agregado enabanico, o Stereum hirsutum, que tiende a establecerse en lostejidos centrales.

III) Clasificación gg las comunidadesfúngicasOrlós (1965) realizó un amplio estudio de las comu­

nidades fúngicas de los bOSquesde Checoeslovaouia, clasifi­cando 1as eSpecies según su papel ecológico. Realizó 1a eva­luación del grado de importancia de la función ecológica decada eSpecie estableciendo 5 indices: 1) frecuencia; 2) abun­dancia; 3) conexión con el hOSpedante; 4) zona de ocurrencia;5) grado de influencia sobre el ambiente. Para cada indice es­tableció una escala cuantitativa; la sumaalgebraica de los va­lores de los índices determina el grado de importancia de lafunción ecológica. De acuerdo con la función ecológica esta­bleció 5 grupos de hongos: I) Cormobiontes parásitos; II) Xi­lobiontes saprófitos o parásitos; III) rizobiontes simbiotró­ficos; IV) pedobiontes saprófitos; V) eSpecies no conectadascon los árboles.

IV) Técnicas gg muestreoEl problema fundamental con reSpecto a las técni­

cas de muestreo está centrado en definir cuál es la más re­presentativa para establecer la colonización de un sustratoen un momentodado. Desde esta perspectiva, la Opinión de losautores difiere significativamente.

K'a'árik y Rennerfelt (1957), I-Iangenot (1952),Henningsson (1968) y Rayner (1977), utilizaron técnicas deaislamiento y de observación directa, comprobandoque siem­pre que obtuvieron el estado vegetativo de una eSpecie,obser—varon posteriormente el estado reproductivo.

Orlós (1965) realizó la evaluación de las comunida­des sobre la base de los basidiocarpos y no sobre el micelio,que r“ n1“fl impnronpfirlfl. Postuló que los basidiocarpos

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constituyen el indice que caracteriza a1 individuo fúngicoenteramente, indicando su potencial biótico bajo determina­das condiciones ambientales. El autor recomienda realizar pa­trullas de observaciones que cubran todas las épocas del año,a diferentes intervalos de tiempo, ya que,com0 los hongosaparecen eSporádicamente, aún la más cuidadosa observaciónpuede omitir muchoshongos característicos.

Butcher (1975) afirma que los métodos de aislamien­to no reflejan la condición real del ataque de la madera, quees un sustrato muyheterOgéneo. Resalta 1a importancia de ladistribución eSpacial de los hongos en la madera y la interac­ción de los microorganismos dentro del sustrato, prOponiendoentonces la realización del examenmicroscópico directo paraestudiar el desarrollo de la colonización. .

Rayner (1977) afirmó que la observación de eSporó—foros representa 1a sucesión aparente, ya que bien puede re­flejar diferencias en el tiempo que lleva para fructificar acada eSpecie, más que verdaderos cambios en el sustrato comofuente nutricional. Confirmandoestos postulados, Carruthersy Rayner (1979) en un estudio de la comunidades fúngicas so­bre ramas de árboles caducos, rechazan la base nutricionalde la sucesión clásica; observaron que algunos colonizadoresprimarios son reemplazados mucho antes de que 1a madera pue­da considerarse exhausta, mientras que otros persisten y sonreSponsables de la mayor parte de 1a descomposición.El cursode la sucesión parece estar determinado inicialmente por laexposición del sustrato en relación con la fuente de inóculodiSponible para 1a colonización.

Butcher (1968) hizo una serie de objeciones a lastécnicas de aislamiento; en primer lugar destacó que lasfrecuencias no deben tomarse comoabsolutas para describirla comunidad, ya que cuando aislamos obtenemos frecuenciasde aislamiento y no frecuencias de presencia; en segundotérmino, no se pueden aislar todos los hongos presentes en

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1a madera; en tercer lugar habría que saber si el hongo ais­lado está en estado fisiológicamente activo dentro de la ma­dera; finalmente es más importante la aparición inicial deuna eSpecie que su abundancia relativa, ya que algunos hon­gos comoTrichoderma viride, por ejemplo, parecen dominartodas las zonas y oscurecen la presencia de otros hongos.

V) Trabajos realizados en el BaísWright et al. ( 1972; 1974; 1975; 1976-1977;inédito)

iniciaron en el país, el estudio de la flora,(Polyporaceae eHymenochaetaceae)sobre sustratos lignícolas en los bosquesandinoépatagónicos y la región meSOpotámica.

Deschamps(1980)estudióla incidencia de basidio­micetos xilófilos en bOSqueSde coihue.

López ( 1983) y Romero (1983) encararon el estudiode basidiomicetos y micromicetos reSpectivamente, sobre árbo­les vivos y troncos en estiba de Eucalvotus viminalis; actual­mente realizan el mismoestudio para tocones.

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MATERIALES X METODOS

El período de esta investigación abarcó desde se­tiembre de 1979 hasta junio de 1982.

1) Sitio de muestreoa) Ubicación geográfica

Se eligieron 2 sitios de muestreo: l) Estación Ex­perimental INTÁ-Delta, en 1a provincia de Buenos Aires, pinaridentificado comode "Ensayo de origen de semillas"; 2) PuertoLibertad, Misiones, b05que perteneciente a la empresa Alto Pa­raná S.A., lotes 109-110.

En ambos sitios encontramos bOSques monoeSpecíficosde Pinus elliottii y Pinus taeda, con árboles de 1a mismaedad,implantados en el año 1966, y con suficiente número de indivi­duos comopara realizar un muestreo significativo.b) Climai) Estación Experimental INTA-Delta *

Latitud: 34° 09'sLongitud: 58° 57'0Altura sobre el nivel del mar: 4 mTemperatura.media anual: 16.100Temperatura máxima media anual: 22.70CTemperatura mínima media anual: 9.5°CPrecipitación anual promedio: 999.5 mmFrecuencia media de días con lluvia en el año: 83

* Datos climáticos promedio de los años 1942-1979, provistospor el Laboratorio de AgrometeorOIOgia de la Estación Expe­rimental AgrOpecuaria INTA-Delta del Paraná.

El Delta de la provincia de Buenos Aires posee unclima subtrOpical marítimo, caracterizado por inviernos pocohelados y lluvias todo el año (Papadakis,1980). Debido a la

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influencia directa de los rios de 1a Plata y Paraná, el cli­ma se hace más moderado, resultando ser dentro de 1a provin­cia de Buenos Aires, la región con menor número de horas-frio,(Burgos,1968 ), lo que se traduce en menor número de días conposibilidad de heladas. Los suelos son de llanura baja y mues­tran la combinación de 3 grupos típicos de este ambiente: alu­vial, gley húmicoy semipantanoso,concaracterísticas esencial­mente derivadas del material originario y de la presencia deagua muycercana o sobre 1a superficie (Cappannini,1968 ).

Desde el punto de vista fitOgeográfico, la provinciade BuenosAires está situada en la región NeotrOpical; en elextremo norte de aquella, sobre las islas del Delta del Para­ná y en 1a ribera del Río de la Plata, se encuentra un estre­cho apéndice de la provincia Paranaense, perteneciente al do­minio Amazónico (Cabrera,1968 ).

ii) Puerto Libertad (Misiones)Latitud: 26° 02'sLongitud: 54° 37'0Altura sobre el nivel del mar: 195 m'Temperatura media anual: 21°CTemperatura máxima media anual: 31°CTemperatura minima media anual: 15.4°CPrecipitación anual promedio:-l.849 mmFrecuencia media de dias con lluvia en el año: 88

* Datos climáticos promedio de los años 1947-1978, provistospor el Laboratorio de Investigación y Desarrollo Forestalde Alto Paraná S.A.

Esta localidad misionera posee un clima semitrOpi—cal húmedo, cálido y con precipitaCiones durante todo el año(Papadakis,1980 ); de mayoa agosto pueden producirse heladas.Los suelos son lateriticos, rojos y ácidos, formados por

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partículas finas.Desde el punto de vista fitOgeOgráfico se halla

situada en la región NeotrOpical, provincia Paranaense, Dis­trito de las selvas Mixtas, que ocupa casi toda la provinciade Misiones (Cabrera,l968 )_

En los gráficos 1 y 2 se representaron los regis­tros de temperatura media mensual y precipitación mensual pa­ra los periodos de muestreo. Los asteriscos sobre las curvasseñalan el mes en que se realizó cada muestreo, pero hay quetener en cuenta que el desarrollo de los organismos en un mo­mento determinado, resulta ser la expresión de las condicio­nes ambientales previas a dicho momento. Por lo tanto paracada muestreo deben considerarse los parámetros del mes ante­rior al mismo.

2) Muestreo preliminarEn setiembre de 1979 se realizó un muestreo preli­

minar para obtener información acerca de la composición de lamicoflora de las plantaciones y, en función de los resultados,poder aproximar el número de censos que debían realizarse encada caso. En la tabla l se detallan todas las eSpeciesidentificadas en este muestreo previo, que servirá para podercomparar posteriormente con los resultados obtenidos en losmuestreos estacionales.

3) Muestreo gg'lgs árboles en pieSe eligieron 4 stands dentro de los bOSques, 2 en

el Delta y 2 en Misiones, l de E.elliottii y l de g.taedaen cada lugar. Se realizó un muestreo sistemático sobre ru­tas preestablecidas, considerando cada árbol comocenso oparcela de muestreo. Se establecieron 50 censos comomuestratotal en cada stand, representada por los árboles consecutivos

17

TABLA 1

ESPECIES IDENTIFICADAS EN EL MUESTREO

Antrodia PamentaceaBotryobasidium conspersumCoriolus villosusCotylidia aurantiacaGanoderma subamboinense

GymnOpiluspeliolepisHyphoderma setigerumHyphoderma puberumHyphodontiaalutariaHyphodontia halonataHyphodontia spathulataHypochnicium punctulatumJunghuhnia complicataNaematolomafascicuiarePhellinus gilvusPhlebiOpsis giganteaPndOpOPus sanguíneusRigidoporus zonalisSchizopora carneo-luteaSebacina cinereaTyromyces caesiusTyromyces duracinusHPightOpOPia avellanea

ArllWAILAjs41IrAIAWAIalllISJArJlWAlGIAlIS''I'I1'—'7' ÍÍÍ''I''ÍÍIl'Ü'Í'Ï'rÍÍÍ

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GRAFICO2

THPERATURAMEDIAMENSUALYPRECIPITACIONHENSUAL-SET.1979-JUN.1982

t-(QC’#400EB.“m) 0-.

30u

.300

20"

.200 -100

19

20

de una hilera ubicada a 16 lineas de_los bordes del standcon el fin de evitar en lo posible los efectos de borde. Ca­da uno de los árboles censados fue marcado con una chapa dealuminio numeradapara facilitar su ubicación y la identifi­cación de las muestras recolectadas. Se eligió este tipo demuestreo con censos fijos y diseño concentrado para evitareventuales pérdidas de ejemplares por raleo del bOSque, queen Misiones particularmente, se realizan periódicamente.

Los muestreos se efectuaron cada 3 meses comenzan­

do en la primavera de 1979 hasta el invierno de 1980, de mo­do que se tuvieron 4 para cada sitio. En cada uno se realizóuna inspección prolija de los árboles marcados y se recolec­taron todos los Basidiomycetes que aparecían colocándolos enbolsas de polietileno en las que fueron trasladados al labo­ratorio para su identificación. De todos los materiales reco­gidos se descartaron los basidiocarpos que evidenciaban serviejos por su grado de meteorización¡ para no entorpecer conlos mismosel posterior tratamiento estadístico. Asimismo,to­dos los materiales muy jóvenes e inmaduros y las muestras demicelio cortical o subcortical fueron tratados en los análi­sis comomicelios estériles.

Comoestimador se utilizó la frecuencia de cada es­pecie fúngica, teniendo en cuenta que aunque la relación en­tre el cuerpo fructífero de un hongo y el micelio vegetativopresente en el sustrato no es en todos los casos una expresióndirectamente pr0porciona1, la frecuencia de las fructificacio­nes resulta ser un buen indicador de 1a presencia y extensiónde la infección fúngica(Heningsson ,1968; Butcher,197l; Orlós,1965). Otros parámetros son imposibles de estimar debido altipo de carpóforos predominantes. La densidad, por ejemplo, nopuede medirse desde el momentoen que no se pueden establecerlos limites del "individuo", sobre todo en los hongos resupinados

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que se extienden en manchones irregulares en cuanto a for­ma y tamaño en cada caso. Tampocopuede calcularse la cober­tura sobre el sustrato sobre la base de la superficie ocupa­da por el hongo, ya que los distintos tipos de carpóforos,resupinados o pileados, no son comparables.

4) Muestreo gg los troncos estibadosa) Misiones

Se cortaron 30 segmentos de B.elliottii y 30 deB.taeda de aproximadamente l m de longitud x 30 cm de diá­metro, provenientes de árboles aparentemente sanos y vigoro­sos, y se apilaron sobre el suelo dentro del ámbito de laplantación. Cada uno de ellos fue marcado con una chapa dealuminio numerada con el fin de conservar su posición en laestiba a lo largo de todo el ensayo. Al mismo tiempo se colo­có junto a cada una de las estibas de 30 troncos, un grupo de70 troncos de las mismascaracterísticas destinados a actuarcomo control.

Las estibas fueron colocadas en la primavera de 1979y se revisaron cada 3 meses a partir del verano de 1980 hastael otoño de 1982, de modo que se hicieron 10 muestreos esta­cionales para cada pino. En cada uno se procedió de la siguien­te manera: la estiba de 30 troncos numerados fue revisada mi­nuciosamente; se inSpeccionó cada uno de los troncos, recolec­tándose todos-los basidiocarpos aparecidos, y se trató de co­locarlo nuevamenteen su posición original. La estiba de 70troncos control también fue revisada prolijamente pero sinmover para nada sus componentes, recolectándose todos los ba­sidiocarpos que aparecían en los extremos. De este modosepudo comparar si el manejo de las estibas influye en el de­sarrollo de la sucesión fúngica.

b) DeltaSe formaron 2 estibas de 30 troncos cada una,

_correSpondientes a ambas-eSpecies de pino, de aproximada­mente 50 cm de longitud x 15 cm de diámetro. En el DeltatrOpezamos con el inconveniente de que los árboles del bos­que eran "intocables" por tratarse de un ensayo de origenesde semilla; por lo tanto, las estibas se formaron a partir deramas raleadas. Esto determinó que el tamaño de las mismasfuera menor que las de Misiones, y que no se pudieran for­mar las pilas de troncos control.

Las estibas fueron colocadas en el verano de 1980y se revisaron cada 3 meses a partir del otoño de 1980 hastael invierno de 1982, de modo que se hicieron lO muestreos es­tacionales para cada pino. Se usó la mismametodología des­cripta para Misiones.

5) Densidad esoecifica gg los troncos estibadosA1 mismotiempo que se recogieron los basidiocarpos,

se tomaron muestras de las estibas para determinar la densidadeSpecifica de la madera. En las estibas los troncos se apila­ron en 4 hileras. En cada muestreo se sortearon 2 troncos decada hilera, tomándose 2 muestras por tronco sorteado, obte­niéndose de este modo16 muestras. Las muestras se sacaron cor­tando un trozo pequeño de tronco con serrucho o formón y colo­cándolo inmediatamente en una bolsa de polietileno que se tras­ladaba al laboratorio. El peso eSpecifico de la madera estiba­da se determinó empleando el método adOptado por el CentreNationale de Recherches Forestiéres de Nancy (Francia), se­gún Guth (1970,1973,1974), utilizando la siguiente fórmula:

P0 lPeso eSpecifico = ____ =

VS EM - 0.347PO

donde:

EQ= relación entre el peso en seco y el volumen verde.VS

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PO = peso seco anhidro luego de 48 hs en estufa a 10300.VS = volumen saturado lOgrado mediante la inmersión de las

muestras en agua destilada y realizando el vacio pormedio de una bomba de vacio.

PM= peso máximo de la muestra integramente saturada de agua.0.347 = constante que proviene de la relación l - l/l.53, sien­

do l.53 el peso específico de la pared celular.

6) Contenido de humedad de los troncos estibadosA las mismas muestras sacadas para la determinación

de la densidad eSpecifica de la madera, se les determinó elcontenido de humedad. Este se halló pesando las muestras talcual estaban, para tener asi el peso húmedo, colocándolas lue­go en estufa a 1030Chasta obtener peso seco constante. Elcontenido de humedadse determinó en porciento peso por peso,o sea, gr de agua por 100 gr de muestra,mediante la fórmula:

% de humedad =_PH_-_EL5_ x 100PH

donde:PH: peso húmedo de las muestras tal cual llegan al laboratorio.PS: peso seco anhidro luego de 48 hs en estufa a lOÍ’C.

7) Identificación de las esoeciesa) Medios gg montaje

Se realizaron cortes de los basidiocarpos a manoal­zada, que fueron montados en los siguientes medios:l) Solución acuosa de KOHal 5%

2) Solución acuosa de floxina al 1%3) Reactivo de Helzer (Singer 1949:80)4) Azul de algodón al lactofenol (Kotlaba & Pouzar 1964:132)5) Reactivo de sulfobenzaldehido (Boidin 1958:30)

bV Anatomia X microsconia de los basidiocarnos

Se usó una lupa Reichcrt con escala de Vernier

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incorporada, y un microsc0pio Wild M-20con objetivo Fluotar.Los dibujos se efectuaron con tubo de dibujo Wild adaptado almicroscopio.

8) Aislamiento de las cepasDe las colecciones procedentes de los muestreos tan­

to de árboles en pie comode troncos estibados, se obtuvieroncultivos axénicos ya sea a partir de carpóforos, de maderaatacada o de eSporadas. En los dos primeros casos se cortaroncon pinzas de relojero pequeños trozos que se sembraron en tu­bos con agar- extracto de malta. Las eSporadas se obtuvieroncolocando los basidiocarpos en cajas de Petri preparadas comocámara húmeda, con papel de filtro embebido en agua estéril,reCOgiendolas eSporas sobre portaobjetos y transfiriéndolasposteriormente a cajas de Petri con agar-extracto de malta.

La composición del medio de cultivo utilizado paralos aislamientos es: 20 gr de agar; 12.5 gr de extracto demalta; 1000 ml de agua destilada.

9) Estudio de los cultivosSe realizaron siguiendo la metodolOgia prOpuesta

por Nobles (1958 b:883; 1965:1097). Los medios de cultivo em­pleados fueron:a) agar-extracto de malta (Nobles 1948:285)b) medio para_reacción de oxidasas (Nobles 1948:286)c) reactivo de goma de guayaco (Nobles 1958293)

Se registraron los caracteres macro y microscópicosdesarrollados por las cepas durante 6 semanas, creciendo en os­curidad en cajas de Petri de 9 cm de diámetro con P5 cm3 de me­dio de agar-extracto de malta a 25 C de temperatura. La revi­sión de las cajas se efectuó a intervalos semanales registrán­dose todos los detalles del desarrollo; se tomaron fotos de latextura de la capa miceliana en la sexta semana de crecimiento.Las reacciones de oxidasas se determinaron inoculando las cepas

25

en cajas de Petri con 25 cm3 de medio de agar-extracto de mal­ta con ácido tánico o gálico, anotando la presencia o ausen­cia de reacción al cabo de una semana. La intensidad de lareacción se calificó según 1a siguiente escala: negativa (—);muy débil (+); débil (++); moderadamente fuerte (+++); fuerte(++++); muy fuerte (+++++).

Para la detección rápida de fenoloxidasas se colocóuna gota de reactivo de goma de guayaco sobre el micelio, queen caso de reacción positiva,en pocos instantes vira su colo­ración al azul.

10) Ensayo de pérdida de peso gg la madera "in vitro"Se cortaron troncos sanos de B.e11iottii y B.taeda

en tacos de madera de 1 x 3 x 0.5 cm. Cada taco, antes de serinoculado, fué llevado a estufa a 103°Chasta peso constantepara obtener su peso seco inicial. En tubos de ensayo de 200x 18 mmcon medio de agar-extracto de malta, se inocularonlas cepas axénicas del hongo cuya acción degradadora se quieremedir. Se dejaron crecer las cepas 15 dias hasta cubrir bien1a superficie del agar y se colocaron los tacos de madera ( 1taco por tubo), previamente saturados en agua destilada, este­rilizados y escurridos por 48 hs. Los tacos fueron expuestosdurante 1 año a 25°C, habiéndose determinado la pérdida depeso a los 3, 6, 9 y 12 meses. A1 sacar cada taco del tubose lo limpió bien del micelio que lo cubría, se lo colocó enestufa a 103°Chasta peso constante y se lo pesó para obtenerel peso seco final.

La pérdida de peso se calculó como:Peso seco inicial —Peso seco final x 100

Peso seco inicialLos cálculos se realizaron según el promedio de 3 réplicas.

11) Ensaxo gg medio adicionado con resinaa) Resina natural

26

Se prepararon distintas concentraciones de medio deagar-extracto de malta-resina en Erlenmeyers de 250 ml. Se u­tilizó resina natural extraída de los árboles de B.elliottii,y se trabajó a baño maria, manteniendo la temperatura en 50°C,homOgeneizandocon varilla de vidrio.Luego se esterilizó en au­toclave. La concentración de los distintos medios obtenido estáexpresada en peso x peso (x ej. la solución al 1%contiene 1 gde resina x lOOg de agar-extracto de malta). Para cada con­centración se prepararon 9 cajas de Petri que se inocularoncon la cepa a estudiar. Se siguió el crecimiento de las cepashaciendo l lectura diaria hasta que cubrían totalmente la caja.

b) Resina sólidaSe prepararon distintas concentraciones de medio de

agar-extracto de malta-resina,utilizando resina sólida prove­'niente del destilado de la resina natural,libre de sustanciasvolátiles. Se calentó a baño maria para homogeneizar, se es­terilizó y'se procedió de la mismaforma descripta en (a).

c) Medición del pgSe efectuó la medición del pH de cada una de las

soluciones preparadas utilizando papel pH : Merck (rango 1-10);Merck (rango 5.4-7) y Macherey,Nager y Co-Duren (rango 3.8-5.8).

d) Mediode agar-malta adicionado con solución bufferSe prepararon soluciones buffer citrato-fosfato 5C “M

para pH 4.6, 5.8 y 7, las que se agregaron al medio de agar­extracto de malta. Para cada pH se prepararon 6 cajas; se sem­braron las cepas siguiendo su crecimiento hasta cubrir la caja.

12) Ensaxo para probar interacciónDel conjunto de hongos aislados, y luego de probar

su capacidad degradadora "in vitro", se seleccionó la cepa No.2417 de Naematoloma fasciculare, que provocó muy poca pérdida

27

de peso, creciendo muy bien sobre los tacos de madera. E1test de interacción se realizó enfrentando las distintas ce­pas con la de fi.fasciculare. Para ello se inocularon ladosOpuestos de cajas de Petri con agar-extracto de malta; des­pués de un periodo de incubación de 10 a 15 dias a 25°C,se examinaronlas cajas, anotándose los caracteres fisicosdel contacto: el radio de crecimiento, 1a zona de inhibi­ción, el crecimiento de uno sobre el otro, la formación dezonas coloreadas , la producción de exudados, etc.

28

RESULTADOS

I) ARBOLES EH PIE

a) Análisis de la composiciónfloristicaSe identificaron 14 eSpecies sobre árboles en pie,

8 pertenecientes a la familia Corticiaceae y 6 a Polyporaceae.En la tabla 2 se detallan las eSpecies con sus reSpectivas fre­cuencias de aparición. De 1a misma se deSprende que el estadosanitario de las plantaciones es muybueno ya que el porcen­taje de árboles atacados nunca superó el 8%.

En Misiones se registró el mayor número de eSpecies,12 en total, de las cuales 5, Hyphodontia alutaria, Hyohodermasambuci, Hyphodontia halonata, Sistotrema brinkmannii y Subuli­cystidium lonpisporum, son netamente corticícolas, de aparicióneSporádica y muybaja frecuencia; Botryobasidium laeve tambiénes corticïcola, pero aparece con mayor frecuencia que los an­teriores; HyphodontiaSpathulata es una corticiácea que se re­gistró sobre ramas heridas de árbol vivo y reveló poseer unaalta capacidad degradativa en los ensayos realizados "in vitro";las 5 restantes son poliporáceas: Junqhuhnia complicata, Schizo­Bora carneo-lutea, Phellinus gilvus, Tyromycescaesius y Rigido­Rorus zonalis, todas ellas, con excepción de 2. caesius , sonde importancia no por su frecuencia de aparición sobre árbolen pie, que es muybaja,sino por la pudrición que presentaronlos ejemplares por ellas atacados, asi comopor su capacidad de­gradadora "in vitro". Sobre B. taeda se recogieron 19 muestrascorreSpondientes a 12 eSpecies diferentes, mientras que sobreB. elliottii se registraron ll muestras pertenecientes a 6 es­pecies distintas.

En el Delta solamente se contabilizaron 5 eSpecies,de las cuales 3, Hïphodermasetigerum, Hvohodontia alutaria yBotryobasidium laeve son corticiáceas eSporádicas; las otras 2son poliporáceas, Coriolus villosus es un saprófito que aparece

TABLA2

FRECUENCIA(%)QELASESPECIESREGISTRADASSOBREARBOLESEEPIE____._—_—__—_

MI!

P-79V-80

TE

SIONESDELTA

0-801-80P-79V-800-80I-80 TETETETETETE

¡tnyobasidiumlaeve22 ,

2222

ariolusvillosus'yphodermasamhuci2

Hyphodermasetigerum

yphodontiaalutaria2

Hyphodontiahalonata2

¿phodóntiaSpathulata

Junghuhniacemplicata22 Ristotremabrinkmannii

,chizoporacarneo-lutea

SubulicystidiumlongisporumPhellinusgilvus22 Rigidoporuszonalis Tyromycescaesius2 Ref°=T(E2329i);E(E-slliszsii):P

I(invierno)

(primavera);V(verano);O(otoño);

29

30

con frecuencias muybajas casi exclusivamente sobre ramazóncaida; SChiZOQOPacarneo-lutea, en cambio, es muy común y cons­tituye la única eSpecie de importancia sobre árbol vivo dentrode este bOSque, de acuerdo con su frecuencia y capacidad de­gradadora. Sobre B. taeda se identificaron 12 muestras perte­necientes a 4 eSpecies diferentes, mientras que sobre B.elliottiise recogieron 3 muestras correSpondientes a 2 eSpecies diferentes.

Comosobre los árboles en pie se registraron relati­vamente muypocas eSpecies, para determinar 1a exclusividadtanto de sitio como de hOSpedante para las mismas, se tuvieronen cuenta los datos obtenidos sobre los troncos estibados. De es­te modoresultan ser:ESpecies exclusivas sobre B.elliottii—Delta : ninguna.

" " " E.taeda— Delta : g.villosus, 5.5333­aerum.án?—_

E.elliottii—Nisiones:fl.sambuci, fi.halo­nata.

B. taeda —Misiones :¿3comnlicata,2.gil—vus, g.brinkmannii, ï.caesius, É. lon­gisgorum .

Sin embargo, comofi.setiperum, T.caesius, S.longiSpo—rum y J.comnlicata son eSpecies comunes a ambos sitios sobreambospinos para madera estibada, resulta finalmente que:

Especies exclusivas sobre B.taeda —Nisiones: B.gilvus y É.brink—' mannii.

B.taeda—ambossitios: Q.VillosusE.elliottii: ninguna

para el Delta : ninguna

b) Análisis senín el método de promedio de los pares pesados (WPGHAConel objeto de obtener conclusiones objetivas del a­

nálisis de los datos para los árboles en pie,buscamos la aplica­ción de un método estadístico. Comolas frecuencias resultaron ser

31

muybajas, se nos aconsejó realizar el análisis según un mé­todo de clasificación aglomerativo: el método de promedio delos pares pesados o WPGMA(weighted pair-group method average).A partir de la tabla 2 de frecuencias, se calcularon los valo­res que representan el grado de similitud entre pares de censos,utilizando el coeficiente de similitud cuantitativo de Czeka­nowski (1913):

Indice de similitud = 2 w

donde:w : suma del valor más bajo de frecuencia de las eSpecies

comunes a los 2 censos.a : sumatoria de frecuencias en el primer censo.b : sumatoria de frecuencias en el segundo censo.

Los resultados obtenidos se agruparon según elWPGMA(Sokal y Sneath, 1963),construyendo el dendrograma corres­pondiente que se observa en el gráfico 3. En el mismo vemos quelos censos de los árboles en pie se separan de acuerdo con ellugar geográfico. Se obtuvieron 2 grupos bien nitidos , uno for­mado por los censos del Delta y otro por los de Misiones. La úni­ca tranSposición la conforman los censos 7 y 14. En el censo 7aparecen E.1aeve y g.carnco-1utea, eSpecies que se registran porúnica vez en los árboles de Misiones, y que aparecen más liga­das a los censos del Delta en donde registran mayor frecuencia.En el censo l4 sucede exactamente lo contrario, aparece fl,aluta—¿la por única vez en el Delta, y resulta estar más ligada a loscensos de Misiones en los que esta eSpecie es caracteristica.

En lbs censos 2 y 16 no se registró ninguna eSpecie,por lo tanto no se unen en el dendrograma. En el censo 4 apa­recieron solamente 2 eSpecies: fi.sambuci y fl.halonata exclusivasde él; por lo tanto tampoco se une en el dendrograma porque noposee ninguna eSpecie en comúncon los otros censos.

Dentro de cada uno dc los 2 grupos, los censos que

GRAFICO 3

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1 ol.10.61

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33

correSpondena E.taeda y a E.elliottii se separan discreta­mente, indicando una diferencia en cuanto al sustrato, peroque, en definitiva, es menor que 1a diferencia en cuanto allugar geOgráfico.

c) Análisis de otros bOSquesParalelamente al estudio de los pinares de 13 años,

se recorrieron otros bOSquesde distintas edades para teneruna idea lo más completa posible, de la composición f10risti­ca de las poblaciones de xilófilos que en ellas se encuentran.Se revisaron pinares de 10, 15 y 30 años reSpectivamente, pero1a frecuencia de los hongos que se identificaron en ellos re­sultó ser notablemente baja.

Se registraron 2 eSpecies sobre árboles en pie de 10años; 2 eSpecies sobre los de 15 años, mientras que en los pi­nares de 30 años solamente se recolectaron muestras sobre ra­mas caídas, troncos en suelo o tocones. En la tabla 3 se hananotado las eSpecies encontradas en pinares de distintas eda­des y, comose puede verificar, no apareció ninguna eSpecieque no estuviera registrada para el pinar de 13 años, objetoprimordial de nuestro estudio. \

.Todos estos elementos nos permiten afirmar que lapresencia de xilófagos sobre árboles en pie es afortunadanentede una frecuencia muybaja. Todos los casos en que se encontra­ron árboles seriamente deteriorados por algún patógeno, fueronde ejemplares aislados, sin transmitirse a los árboles vecinos.No se detectó, curiosamente, ningún caso de ataque en la zonade cuello.

II) TRONCOS ESTIBADOS

a) Análisis de la composiciónflorísticaSe identificaron 35 eSpecies, 17 pertenecientes a

la familia Corticiaccae, 9 a Polyporaceae y 9 corresponden a

34

TABLA 3

ESPECIES IDENTIFICADAS EE PINARES DE DIFERENTES EDADESEN MISIONES

PINARES DE 1o AÑOS

Botryobasidium 1aeve ( sobre árbol en pie y sobre rama caída)Coriolus villosus ( sobre rama caída)Ganoderma subamboinense ( sobre tocón)Hyphoderma setigerum (sobre rama caída)Hyphodontia spathulata (sobre rama caída)Junghuhnia complicata (sabre árbol en pie y sobre rama caída)Phellinus gilvus (sobre rama caída)Pycnoporus sanguíneus (sobre tocón y sobre rama caída)Schizopora carneo-lutea (sobre tocón y sobre rama caída)

PINARES DE lg ¿Egg

Botryogiiigigg laíle (sobre árbol en pie y sobre rama caída)Hyphoderma setigerum (sobre rama caída)Hyphodontia spathulata (sobre rama caída)Phellíggi giilgí (sobEe rama caída)Rigidoporus zonalis (sobre rama caída)Tyromyces duracinus (sobre árbol en pie y sobre rama caída)

PINARES DE 30 AÑOS

Junghuhnia COmplicata (sobre rama caída)Ganoderma Subamboinense (sobre rama caída)Hyphodontia spathulnta (sobre rama caída)Nacmatolomafasciculare (sobre rama caída)Phellinus gilvus (50brc rama caída)

35

otras 8 familias.En Misiones se registraron 30 eSpecies: 14 corticiá­

ceas, 9 poliporáceas y 7 pertenecientes a otras tantas familias.Se reCOgieron 416 muestras sobre E.taeda y 295 muestras sobreB.elliottii. En la tabla 4 se resumenlas eSpecies encontradassobre madera estibada, con sus respectivas frecuencias. Podemosdividirlas en 6 grupos:1) ESpecies de alta frecuencia y permanencia en casi todas las

estaciones: B.1aeve, H.Spathu1ata, H.punctu1atum, ¿.compli­cata, R.zonalis, T.fuliginea y S.Carneo-1utea.

V2 ESpecies de frecuencia alta o moderada y permanencia en par­te de las estaciones: H.setigerum y S.lonpiSnorum.

3V ESpecies de baja frecuencia y permanencia en parte de las

estaciones: S.oaradoxa y P.;:alactites.-—I_—.._—.__. — .‘——_——_4

V Especies eSporádicas que aparecen con frecuencia moderada:C.villosus

5V ESpecies eSporádicas que aparecen con baja frecuencia: É.sub—

coronatus, Henningsomyces52., 5.abieticola, ï.a1utaria,y.fasciculare, Pleurotus sp., B.gilvus, fi.halonata , E.san—guinolentus, g.commune,S.ochraceum, T.farinacea, T.Caesiusy Ï.duracinus.

V6 ESpecies que aparecen en el último muestreo por primera vez:g.conSpersum,g.crustulinus, Vuilleminia sp. y E.avellanea.

En el Delta el número de eSpecies es notablementeinferior. Se identifibaron 14 eSpecies: 7 corticiáceas, 4 po­liporáceas y 3 correSpondientes a otras tantas familias.Se reco­gieron 197 muestras sobre E.taeda y 93 sobre E.elliottii. En latabla 5 se resumen las eSpecies sobre madera estibada con susreSpectivas frecuencias. Podemosdividirlas en 4 grupos:l) ESpecies de alta frecuencia y permanencia en casi todas las

estaciones: H.Spathulata, J.comnlicata, S.carneo—luteayg.cinerea"

2) ESpecics eSporádicas que en alguna estación aparecen confrecuencia alta o moderada: ¿.tullasneloidea y B.giflantea_

TABLA4

FRECUENCIA(Z)DELAS-ESPECIES-REGISTRADAS'ÉE'EfiQéMUESTREOSOBRELASESTIBAS

(Ref:V:verano-Ozotoño—I:invierno—P:primavera—T:taeda-Ezelliottii)

MISIONES

TTETE

Botrbasidiumconsrsum

rsumsuoronaum rsumaeve

rnomcescrusunus rousvcaus nnnsomCCS5 .

rmaSGer‘um

aecoa aura aona su

CnCumunCU

ununacomcaamaoomaasccuare anerocaeeaces enusvus eurouss

Pussanunoenus ruszonas osancos racarneo-uea raraxa

umcommune

eccernumocraceum

csumonsPum

recsraarnacea oneneaunea

romescaesus

¿romcesuracnus

VLemr1a0:1e .roraave

TABLA4(Cont.)

DELTA0-80I-BOP-80V-810-81I-81P-81V-82

Botryobasidiumlaeve Calocerasp. Hyphodermasetigerum Hyphodontiaspathulata8161232860

v

60448436

Junghuhniac0mp1icata163243220122412 Peniophoracinerea4 Phlebiopsisgigantea121616

v

NCOStVÑ“

Schizoporacarneo-lutea122440124 Schizoporaparadoxa84

C0

CD

SchizophyllumcommuneSebacinacinepea44816321684

d.

Trechisporafarinacea4 Tyromycescaesius Xenasmatellatulasnelloidea2812

37

38

3) ESpecies esporádicas que aparecen con frecuencias bajas:P.cinerca, S.paradoxa, S.communey T.farinacea.

4) ESpecies que aparecen en el último muestreo por primeravez: B.1aeve, H.setiaerum y Calocera so.— — V _¡_

Con reSpecto a la distribución de las eSpecies so­bre ambospinos, se identificaron 26 eSpecies sobre E.elliottiide las cuales 5, 5.abieticola, Ï.duracinus, Henningsomycesso.T.farinacea y Vuilleminia sn, son exclusivas para este pino,y todas de Misiones, con excepción de-Ï.farinacea que es comúna ambos sitios. No se encontró ninguna eSpecie exclusiva sobreB.elliottii en el Delta.

Sobre E.taeda se registraron 31 eSpecies de las cua­les 10, g.con50ersum,g.villosus, fl.alutaria, Pleurotus 52.,P.ggiactites, B.gilvus,ï.halonata,ï.ochraceum, 2.0aesius yCalocera 52, son exclusivas para este pino, todas de Misiones,con excepción de Calocera gp, que es exclusiva del Delta yT.caesius, que es comúna ambos sitios.

El gráfico 4 exhibe la sumatoria de frecuencias encada estación para ambos pinos en ambos sitios; el gráfico 5muestra el número de eSpecies que aparecen en cada estaciónsobre ambospinos en ambos sitios. El factor constante queemerge del análisis de estos gráficos es que en todos los ca­sos E.taeda es más susceptible al ataque fúngico-que E.e11iottii,y presenta una mayor'frecuencia acumuladaen todas las estacio­nes, asi comotambién una mayor diversidad eSpecifica. Asimis­mo la riqueza floristica de Misiones es notablemente mayor queen el Delta. Las diferencias climáticas y edáficas se ven cier­tamente reflejadas en el hecho que en Misiones aparecen las pri­meras fructificaciones sobre los troncos estibados a los 3 me­ses, mientras que en el Delta esto sucede a los 9 meses, locual es muysignificativo aún teniendo en cuenta las diferen­cias "fisicas" de las estibas.

GRAFICO422m25EEÉEEEESLAÉ9.5¿5259,591.52EECADAMUESTREO

LOSTRONCOSESTIBADOS

..__.Taeda.Misiones*-——*——*E11iottii"

.___.._--.TaedaDelta #--*--*Elliottii"

P-81

V-82I-82

39

GRAFICO5

DIVERSIDADESPECIFICASOBRELASESTIBASENCADAMUESTREO

NUMERO .____.Taeda.Misiones

de7,,_,¡,___,,‘Elliot‘lfiiMisiones

‘N

o-----c---.oTaedaDelta.

,,,,_-_*.----*ElliottiiDelta.

V-BO0-80I-BOP-80V-810-811-81P-81V-820-82I-82

40

41

En Misiones, en donde se pudo estibar una pila detroncos testigos, no apareció sobre ellos ninguna eSpecie queno estuviera registrada sobre el grupo de troncos revisados pe­riódicamente en cada muestreo, lo que estaria indicando en pri­mer término, que el manejo en este caso, no influye en la com­posición de la sucesión fúngica; en segundo término, se pudocomprobar que prácticamente todos los hongos de incidencia Sig­nificativa terminan fructificando en los extremos de los ton­cos. La forma de estibaje debe influir necesariamente sobre laaparición de los patógenos, ya que está relacionada directa­mente con 1a humedad y la temperatura de la madera. Las condi­ciones en la superficie de 1a estiba son diferentes de las dela base. Asimismo, la exposición de cada tronco es distinta encada una de sus partes. Henningsson (1968) y Kááril-E(1960) de­sarrollaron estos aSpectos en sus trabajos, y amboscoincidenen que la humedades el factor decisivo, directamente relaciona­do con la posibilidad de germinación de las eSporas. En las zonasmás expuestas de 1a estiba se combinan mayores temperaturas loca­les y menor humedad. En nuestra experiencia observamos que enlos troncos internos de la estiba, los más protegidos, se de­sarrollan los hongos cubriendo grandes superficies, mientras queen los troncos más eXpuestos, aunque aparezcan las mismas eSpe­cies, lo hacen en superficies muypequeñas, a veces dificilmen­te visibles a simple vista.

b) Análisis estadísticoi) An.Fa.Co.

El Análisis factorial de correSpondencias (An.Fa.Co.),es un método de ordenamiento multivariado (Cordier,1965; Benze­cri,1976) muyaprOpiado para tratar el tipo de datos que obtuvi­mos, entre los que no se verifican relaciones lineales. De lamatriz original de datos se pasa a una matriz en forma disyun­tiva complcta, desdoblando cada variable de tal modoque en elanálisis general cada una conserva su peso. Esta matriz de datos

GRAFICO6

CENSOSIESPECIESSEGUNLOSEJESI_Y_IIE,PORMEDIODEáE.FA.CO.

0014Ieb

l ‘-_-flla\

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,Ean.fa.co.elliottii 'l

ocensosDELTA oHMISIONES

C)ESPECIESDELTA n nMISIONESa m nCOMUNES

43

en forma disyuntiva completa, está asociada a una tabla decorreSpondenciasque fija las relaciones existentes entrelas variables. El resultado final es un gráfico en el que seordenan las variables en el plano constituído_por 2 ejes alos que hay que asignar el atributo por el cual se separaronlas variables estudiadas.

En nuestro caso se realizó un An.Fa.Co. para E.taeday uno para E.elliottii.

An.Fa.Co. —Elliottii

Los censos y las eSpecies se agruparon según el lugarde muestreo. En el gráfico 6 están representados los ejes I yIII que son los que mejor definen los grupos. Los elementos sedistribuyen según el eje I, que expresa claramente el lugar geo­gráfico. Los censos del Delta se separan en el cuadrante I- III—,en donde se nuclean los censos 12, 13, 16 y 18 junto con las es­pecies exclusivas del Delta: ï.tullasneloidea, E.cinerea y g.cinerea. S.commune,eSpecie comúna ambos sitios, se encuentraen este núcleo porque está más ligada a los censos 15 y 16 delDelta, en los que aparece junto con otras eSpecies de muybajafrecuencia, que a los censos 5 y 6 de Misiones, en los que apa­rece con frecuencia muy baja junto con otras eSpecies muy comu­nes y frecuentes.

En el cuadrante I+/— III+/- , alrededor de la intersec­ción de los ejes, se encuentra un segundo núcleo que agrupa laseSpecies comunes a ambos sitios. Las 3 eSpecies más importantesde este grupo son: ¿.complicata, ï.carneo—lutea e 5.52athu1ata,y están asociadas a los censos 17 y 19, en los que aparecenjuntas con frecuencias relevantes. S.paradoxa aparece asocia­da a los censos 4 y 5, únicos en los que se registró sobre estehOSpedante. Completan este núcleo E.setigerum, 2.1aeve y 2.fari—nacea, eSpecies que se registraron con diversas frecuencias envarios censos de ambossitios.

44

En el cuadrante I+/— III+ se ubica un tercer nú­cleo compuesto por eSpecies exclusivas de Misiones. Se loca­lizan H.fasciculare y 2.duracinus ligadas al censo 6 en el quese registraron por única vez; ï.fuliginea, netamente asociadaal censo l en el cual es la única especie identificada; g.lgg­pisEorum, ligada al censo 3 en el que aparece con la mayor fre­cuencia, y B.zonalis, que es una de las eSpecies más caracteris­ticas sobre B.elliottii, y aparece prácticamente en todos loscensos con frecuencias altas.

Un cuarto núcleo se encuentra en el cuadrante I+ III+,en el que se ubican Henningsomxcess2.,fl.abieticola y 5.5ancui—nolentus, ligadas a1 censo 8 en el que se registraron por úni­ca vez, e firpunctulatum que es una eSpecie frecuente durante to­do el año, pero que aparece ligada al censo 8 en donde registróla frecuencia másalta.

Finalmente, un quinto núcleo, en el cuadrante I+ III—,agrupa los últimos censos de Misiones, 9 y 10, con las eSpeciesque aparecen por primera vez en ellos: Vuilleminia gp, g.crustu—linus, 3.avellanea y g.subcoronatus.

Nopudieron verificarse diferencias estacionales en­tre censos de un mismositio,ya que no se agruparon los censoscorreSpondientes a la misma época del año. Para las eSpecies ex­clusivas de Misiones, el eje III defihe aproximadamenteel de­sarrollo de 1a sucesión. En las III+ se agrupan los censos 1 al8, con las eSpecies que colonizan las maderas estibadas en unaprimera etapa; mientras que en las III- se nuclean los censos9 y 10, con las eSpecies que estarían determinando un recambioen la sucesión fúngica, ya que desaparecen las especies pionerasy se registran en ellos 5 especies nuevas.

En el Delta, en cambio, no se puede detectar el mis­mo comportamiento de la sucesión, ya que las eSpecies que apa­rccieron en los primeros muestreos siguieron detectándose re­gularmente en los últimos censos, aunque con frecuencias rela­tivamente bajas.

45

An.Fa.Co. —Taeda

En el gráfico 7 se observa el ordenamiento de censosy eSpecies según los ejes I y III. El atributo para el eje Ies, a1 igual que para g.elliottii, el lugar geográfico.

En el cuadrante I- III+/— encontramos un núcleo con­formado por todos los censos del Delta (11 a 17); el censo 19,único en que aparece Calocera 52., eSpecie exclusiva del Delta,queda separado del mismo.

Tambiénen el cuadrante I- III+/—, pero alrededor delorigen de las coordenadas, encontramos un segundo núcleo consti­tuido por las eSpecies comunesa ambossitios: ¿.comolicata ,H.Spathulata, S.carneo-1utea,T.caesius, g.commune,É.laeve,fifsetiqerum y g.naradoxa. El censo 18,que correSpoñde al Delta,se encuentra ligado a este grupo porque se registran en él sola­mente 3 eSpecies comunes a ambos sitios. Lo mismo sucede conlos censos 2, 3 y 4, en los que aparecen casi exclusivamente laseSpecies comunescon frecuencias muysignificativas.

En el cuadrante I+ III+ observamos un tercer núcleoformado por censos de Misiones. Q.villosus y 2.5alactites soneSpecies eSporádicas; N.fasciculare, P.gilvus y Pleurotus 52.

,_se registraron juntas en el censo o al que aparecen ligadas;fi.punctulatum se encuentra ligada al censo 8 en el que regis­tró la mayorfrecuencia; B.zonalis, ligada al censo 6 por lasmismas razones; Ï.fu1ininea y ñ.lonaiSporum son eSpecies muycomunes que aparecen en este grupo de censos con frecuenciasnotables; i.halonata y 5.ochraceum se segregaron de este nú­cleo posiblemente porque se registraron una sola vez, en elcenso 8, con muybaja frecuencia.

Finalmente, en c1 cuadrante I+ III- se encuentranagrupados los últimos censos, 9 y lO, en los cuales aparecie­ron por primera vez las eSpecies asociadas a ellos: fi.avella­Egg, B.sanouinolentus y 2.8ubcoronatus en el censo 9; 2.22gg­persum y C.crustulinus en el censo lO.

ORDENAHIENTO

GRAFICO7

alta

o19

01

cal

_D_ÉLOSCENSOSXESPECIESSEGUNLOSEJESIYIII,PORMEDIODEAN.FA.CO.

Isle

\

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zono,.

\-.78n.I‘----—--------'

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\

o

‘—---_——-’

an.fa.co.taeda

OCENSOSDELTA .IlMISIONESC]ESPECIESDELTA

.n

MISIONES

B

llCOMUNES

46

47

A1 igual que con que E.elliottii tampocose verifi­caron diferencias estacionales entre censos del mismositio.Para las eSpecies de misiones el eje III aparentemente marcauna etapa de recambio en la sucesión, que se produce entrelos censos 8, 9 y 10. Desde los 24 meses de muestreo (prima­vera 1981) aparecen 6 eSpecies nuevas, mientras que las pri­meras que colonizan este sustrato se registran en los últimoscensos con frecuencias muybajas, en una clara tendencia dereemplazo por otras eSpecies. En el Delta, en cambio,solamen—te aparecen 2 eSpecies nuevas en los ultimos censos, y se si­guen registrando las pioneras con frecuencias notables.

1 i) WPGHA

Comoel An.Fa.Co. se realizó para ambos pinos sepa­radamente, se pensó en efectuar el agrupamiento de los censossegún los coeficientes de similitud, teniendo en cuenta todoslos censos de ambos sitios y ambos pinos en conjunto. Se apli­có el mismo método de promedio de los pares pesados utilizadopara el análisis de los árboles en pie. En el gráfico 8 encon­tramos el dendrograma obtenido. En él vemos que los 2 grandesgrupos que se formaron correSponden a los censos del Delta yde Misiones reSpectivamente.

Dentro del grupo de censos de Misiones predomina unordenamientopor sucesión de estaciones, tanto para B.elliottiicomopara B.taeda. Se pueden reconocer 3 subgruposzl) censos1-12, con exclusión de 3, 4 y 5, correSponden desde el veranode 1980 hasta otoño de 1981, con la aparición de las primeraseSpecies; 2) censos 13-16, correSponden a los censos de invier­no y primavera de 1981; 3) censos 17-20, correSponden a loscensos dc verano y otoño de 1982, periodo detectado por elAn.Fa.Co. para cada pino, como el de aparición de nuevas eSpe—cies. Los censos 1 y 2 exhiben poca similitud con los demásen función de las pocas eSpecies y las bajas frecuencias con

GRAFICO8

TRONCOSESTIBADOS

DendrogÉamasegúnVJ.P.G.M.A.

49

que aparecen en ellos. Los censos 3, 4 y 5, de Misiones, seinterrelacionan con los censos del Delta por la similitUdconferida por sus eSpecies comunes,5.5pathulata, ¿.comgli­gata y g.carneo—lutea.

Dentro del grupo de censos del Delta sucede algosimilar, ordenándose por sucesión de estaciones. Pueden de­tectarse 3 subgrupos: l) censos 26-30, correSpondientes aprimavera de 1980 hasta otoño de 1981; 2) censos 29-36, corres­pondientes a invierno de 1981 hasta verano de 1982; 3) censos37-40, últimos censos de otoño e invierno de 1982, respectiva­mente. Los censos 21-24 no registraron ninguna eSpecieL porlo tanto no se unen en el dendrograma. El censo 25 posee unasimilitud muybaja con el resto porque en él aparecen muyp0­cas eSpecies en muybaja frecuencia.

Del análisis del dendrograma se deSprende claramenteque no existe estacionalidad marcada en la sucesión, ya queno se observa asociación entre los censos de una misma épocadel año. Tampocoexiste un agrupamiento evidente entre loscensos de cada pino en particular, sino que, según las épocas,los censos de uno u otro hOSpedante están más o menos juntos.Por lo tanto, el factor primordial que divide los elementos eneste análisis, al igual que en el An.Fa.Co., es el lugar geo­gráfico.

c) Densidad y humedadde los troncos estibados

Paralelamente al estudio de los carpóforos y lasfrecuencias con que iban apareciendo sobre las maderas esti­badas, se efectuó el análisis de la densidad eSpecífica pro­medio y del contenido de humedad de dichas estibas. Esto serealizó con el objeto de poder evaluar de algún modoel dete­rioro real que sufren las estibas por la acción degradadoradel conjunto de organismos que sobre ellas actúa. En la tabla6 se volcaron los resultados del estudio de la densidad; se

50

TABLA 6

DENSIDAD ESPECIFICA DE LOS TRONCOS ESTIBADOS

MISIONES DELTA

elliottii taeda elliottii ' taeda

3 meses 0.538 0.524 0.540 0.529

6 meses 0.496 0.492 0.545 0.523

9 meses 0.479 0.466 0.521 0.515

12 meses 0.462 0.418 0.493 0.484

15 meses 0.426 0.389 0.468 0.457

18 meses 0.399 0.358 0.435 0.421

21 meses 0.367 0.335 0.412 0.395

24 meses 0.353 0.319 0.379 0.368

27 meses 0.326 0.306 0.358 0.513

ao meses 0.309 0.271 0.340 0.296

51

verificó una disminución notable de la densidad especificade las maderas estibadas luego de transcurridos 30 meses demuestreos, lo que concuerda con la experiencia de otros auto­res (Henningsson,l968).

EnMisiones, para B.elliottii se registró una dis­minución de densidad del 44.22%; para B.taeda fue del 49,82%.En el Delta se verificó una disminución del 35.38% paraE.elliottii y 42%para B.taeda.

Los datos fueron_tratados con un test no paramé­trico, el de MannWhitney (Daniel, 1978), que ratificó lasdiferencias significativas existentes entre las densidades delas estibas de Misiones y las del Delta. Asimismose ajustó encada caso una recta de regresión, representada en el gráfico 9.Se trata de regresiones lineales expresadas por una ecuacióndel tipo y: a + bx, donde a es la ordenada al origen y b lapendiente.

En la tabla 7 se volcaron los datos del contenidode humedadde los troncos estibados, el que aumenta progresi­vamente a medida que la acción fúngica va deteriorando laestructura de la madera. No se verificó una relación direc­ta entre las precipitaciones y el contenido de humedaddelsustrato. Butcher (1968) describe una sucesión en estibasobservando que llegan a una humedad cercana a1 65%en el pri­mer invierno; luego se secan a medida que aumentan las tempe­raturas, permaneciendo los valores estables durante 5 meses,luego la humedad del sustrato se incrementa a1 100%. Henningsson(1968) encontró que la humedadde las estibas decreció duranteel estibaje, aumentando en los casos en que se produjeronfuertes precipitaciones. Ademáscomprobóque los troncos sesecan diferencialmente: muchomás en los extremos que en elcentro de cada uno.

Obviamente,estos autores trabajaron sobre otros sus­tratos en climas totalmente distintos al nuestro. Tanto enMisiones comoen el Delta, los troncos estibados encuentran un

GRAFICO9

DISEIEQEIQEDEkéDENSIDADESPECIFICAEEEEECIOE

DELTIEMPO

der‘sidad

Q5“MISIONES05“ 0.4.. 0.3..0.3..

' elliotlii

52

°taeda

36912151'82'12'4273'0mesesáéé1'21'51'82'12'42'73'0

CONTENIDO DE HUMEDAD DE LOS TRONCOS ESTIBADOS

InicialV-80

0-80

I-80

P-80

TABLA 7

MISIONES

elliottii taeda24% 28.5%

24.7% 29.3%

25.3% 31.5%

28.9% 33.8%

30.4% 36.4%

34.1% 37.2%

40.8% 49.5%

50.3% ‘59.1%

54.1% 63.9%

55.2% 66.5%

60% 70.8%

DELTA

elliottii17.5%

21.1%

23.4%

30.7%

31.2%

40.7%

47.9%_

52.2%

58.4%

54.2%

55.2%

53

taeda

20.3%

22.5%

28.1%

32.9%

38.3%

49.5%

53.2%

56.7%

63.8%

67.9%

69.6%

54

ambiente permanentemente húmedo, y se produce una constante a­cumulación de pinochas sobre los mismos, ayudando a conservarun alto contenido de humedaddel sustrato.

III) ESTUDIO 25 LOS CULTIVOS

De los materiales provenientes de los distintos mues­treos se obtuvieron 30 cepas pertenecientes a 18 eSpecies dife­rentes según se puede observar en la tabla 8. Todas fueron es­tudiadas en cultivo según el método de Nobles (1958, 1965), ycon los resultados obtenidos se elaboró una clave para su reco­nocimiento por cultivo. En la tabla 9 se presenta esta clave, quepuede ser utilizada para la identificación de cepas obtenidas enel ámbito de diferentes plantaciones de estos pinos, sobre todosi se logra trabajar con aislamientos a partir de madera, en losque se hace muyengorrosa, cuando no imposible, 1a identifica­ción de los basidiomicetos que no fructifican. Todas las cepasobtenidas, con excepción de A.ramentacea, L.acuta.y g.longis—porum, dieron reacción de oxidasas positiva, lo que indica queproducen pudriciones blancas. De las cepas que dieron oxidasasnegativas, solamente Lenzites acuta produce elevada pérdida depeso en tacos de madera "in vitro".

IV) ENSAYO D_13PERDIDA" _D_FIpaso gy TACOS EL; MADERA "y VITRO"

Se ensayaron 25 cepas sobre tacos de cada uno delos 2 pinos. Los resultados se volcaron en la tabla lO. En lamisma se discriminó el origen de la cepa ya que, como puedeobservarse, en todos los casos en que se obtuvieron cepas dedistinto origen, se verificó que las de Misiones poseían unamayor capacidad degradativa que las correSpondientes al Delta.

A estos datos se les aplicó el análisis de la

TABLA 8

55

CEPAS AXENICAS OBTENIDAS A PARTIR EE Egg MAIÉBEAEÉÉ EE EggDIFERENTES MUESTREOS

Coriolus villosusGanoderma subamboinenseGymnopilus peliolepisHyphoderma setigerumHyphodontiaalutariaHyphodontia spathulataJunghuhnia complicataLenzites aCUtaNaematolomafascicularePhellinus gilvusPhlebiopsis giganteaPycnóporus sanguíneusRigidoporus zonalisSchizopora carneo-lutea

Subulicystidium longisporumTyromyces caesiusTyromyces duracinus

95252 EAEC

531(M) — 474(D)

635(M)265(M)204o (M)

2063 (M)

2297(D)- 2298(D)-2352(M)— 24o7(m)2302(D)- 2453 (D)-2438(H)- 2444(M)2435 (M)

2417 (M)

650 (M) - 2237 (M)

699 (M)

2387 (m)

654(H)- 2002(M)- 2011(M)- 2458(M596(D) - 2032 (M)2348 (m)

2347 (M)

2283 (M)

2286 (M)

56

TABLA 9

1'SEAXÉ 5555 EE RECONOCIMIENTO EE CULTIVO QE LAS ESPECIES ESTUDIADAS0.000.000.00000

.....-.oo...........3UbuliCyStidium..o.o...ono......c....LenZíteS(1)-2—6-8—10—13-32-36-38-43-53-55..........Rigidoporus zonalis2-3-7-26—°2-36-38-43-53-55.................Schizopora carneo-lutea2-3-7-32-36-38-43-53-55....................Tyromyces duracinus2-3-8-9-12-14-32-36-38-43-48-50-55.........8ke1eéocutis nivea2-3-8-1O-34-36-37-39-42-53455..............Ganoderma subamboinense2—3—(8)—10—35—36—38-46-53-55...............Naenatoloma fasciculare2-3-8-12-35-35-38-43-53-55..............2-3—8—26-35—36—38—44—53-55..............2-3-8-32-36-40-42-51-53-55.................Coriolus villosus

..Junghuhnia complicata

..Gymnopilus peliolepis

2-3-8-34-35-36-40-42-43-53-55......J.......Pycnoporus sanguíneus2-3e11-26—32-36-38-42-53-55................Hyphoderma setigerumo.a.............Hyph0d0ntia.o.......o..f......Hyph0dOntiaa...................PhlebiOpSiSoocsoaooco.ooooooonoccoo-coconoacophellinus..Tyromyces caesius

* CODIGOS SEGUN NOBLES (1948).

PÉEBLEÉ EE ÏÉÉQ BE 15992

TABLA 10

57

DE2/1235 "IN v2.59"

BAFC TAEDA ELLIOTTIIAntrodia ramentacea 719 (D) 4.86% 4.07%Coriolus villosus 531 (H) 59.30% 49.60%

" " 474 (D) 39.7 Z 26.60%

Gymnopilus peliolepis 265 (u) 34.36% 26.27%Hyphoderma setigerum 2040 (H) 41.32% 38.8 ZHyphodontia alutaria 2063 (W) 48.65% 41.28%Hyphodontia spathulata 2407 (H) 94.53% 75.74%

U " 2298 (D) 43.66% 42.83%

Junghuhnia complicata 2438 (H) 51.54% 42.44%" " 2302 (D) 32.01% 30.13%

EEEEEEÉE ¿EEEE 2435 (H) 76.52% 71.3 %Naematoloma fasciCulare 2417 (H) 11.3 Z 9.50%

ggg¿¿¿g¿3 g¿¿133 650 (u) 65.12% 57.02%" " 2237 (H) 42.86% 40.78%

Phlebiopsis gigantea 699 (H) 27.04% 22.61%Pycnoporus sanguíneus 2387 (H) 69.41% 59.18%Rigidoporus zonalis 654 (W) 40.54% 33.61%

" " 2002 (H) 36.48% 35.54%

Schizopora cañneo-¿EEEÏ 2032 (H) 47.65% 36.3 Z" " ' 596 (D) 24.03% 27.47%

ghglgïgggïíí gilgi 2348 (H) 47.17% 41.87%222213212232322

lgggiiggggg 2347 (H) 33.62% ' 24.42%Tyromyces caesius 2283 (H) 15.3% 14.73%TyPOmyCGSduracinus 2286 (H) 35.6 % 26.47%

* Los números corresponden al porcentaje de pérdida de pesodel duodécimo mes de ensayo.

58

covarianza (Sokal et a1., 1979), que permite aislar y se­parar del efecto principal las variaciones intrínsecas delmaterial eXperimental, cuyo control puede efectuarse por unamedición independiente de 1a medición final. Esto significa queel análisis permite usar tacos de maderade distintos pesos i­niciales y separar los efectos debido a 1a acción de cada ce­pa¡ de los efectos debidos a la variación intrínseca del ma­terial (tacos de distinto peso). La homogeneidadde las va­rianzas se comprobóaplicando el test de Barlett ( Sokal eta1., op. cit.).

Los F Calculados fueron los siguientes:G. de L. S.C. C.M. F

Grupos 49 3.5732 0.0729 26.46Cepas 24 2.7806 0.1159 41.38ESpecies 1 0.0444 0,0444 15.80Resto 24 0.7482 0.0312 11.30Error 99 0.2756 0.0028

Error standard=V0.0028/3= 0.03055Los F resultaron muysignificativos lo que demues­

tra que hay diferencias en los tratamientos (las cepas), y lossustratos (tacos de B.taeda ó de E.e11iottii). En 1a tabla 11 serealizó el ordenamiento de las cepas por el í corregido segúnel análisis de 1a covarianza. De acuerdo con el mismo se com­prueba que las cepas más degradadoras son: fi.snathu1ata, g.acuta,P.Sannuineus,P.gilvus, g.villosus, ¿.comnlicata, fl. alutaria,_.— —.¿_—.S.carneo—lutea, S.nivea, H.setigerum, R.zona1is y G.5ubamboinense.Son casi todas poliporáceas, con excepción de una ganodermatácea,Ganodermasuhamboinense, y 3 corticiáceas: H.Spathu1ata, H.a1uta—ria y fi.setigerum; notablemente la primera de estas 3 eSpeciescorticicolas resultó ser 1a de mayor capacidad degradadora "invitro".

TABLA 11

ORDENAMIENTO DE CEPAS POR ­59

CORREGIDO SEGUN EL

CEPA

24072435240724352387

650531

2337650

2438531

20632032234822932237229824382348204o20632237474

204o654

2002203220022286

654265

234723022302

596699474

2286265

2347596699

2283228324172417719719

(H.spathulata)(¡.53ÍÉEÏ___­(Ñ.Eíïïíu1ata)(Ï.EÉÜÍEÏ___—(5.;Eíaüineus)(5.EÏÏVÜEÏ—_—(6.7ÏÏÏ33US)(É'EEÏÉEÏEEEE)

(J.c0mp1icata)(C.vi11csus)(H.a1ut3r¿g)(S.carne3—Íutea)

(P.gllVUS)

(H.setigerum)(H.alutaria)(P.gi1vus)(C.villosus)(fi.setigerum)(R.zona1is)(5.20nalis)

(R.zona1is)(5.53ÏÏ3Ï3pis)(5.ïa¡aï;;a:am>(3.3555ÏÏEEÉEÏ(3.3353ÏÏÉEÉ5)5.35FFÉSZÏÜÉea)

(3.Eïaïíïeíï_—_(5.7ÏÏÏÉEÜE)(ï.EJFEEïíís)(6.EÉÏÏ3ÏÉBÏ5)(5.Ï3;5ÏEESFGm)(5.35F3333ÏÍï3a)(5.Eïfiïíïeïï__—(ï.ÉEEEÏÜEÏ(ï.ÉEEEÏU3)(Ñ.FEEÉÏÉU1are)(Ñ.FEEÉÏÉCÏEFE)(¡.FEEÉÉÏÏÉESÏ<5 55555€5€€5>

MADERA

m-irn-lrnHm-Immmm-irnm-lq-Im-Imm—I-¡m-imm-lmmm-i-i-I-I-im-Imm-l-¡Hmm-I-i

í corregido0.5880.6310.7290.8350.8600.9090.9170.9310.9350.9600.9650.9720.9750.9791.0091.0191.0201.0251.0361.0371.0401.0431.0441.0631.0661.0681.0781.0921.0961.1001.1041.1081.1221.1331.1341.1341.1361.1441.1471.1731.1791.1811.2301.2501.2571.2791.2931.318

60

V) ENSAYOE M ADICIONADO9213 RESINA

De acuerdo con los resultados obtenidos en los mues­treos y en el ensayo de pérdida de peso de tacos de madera"in vitro", siempre Pinus taeda evidenció poseer mayor suscep­tibilidad al ataque fúngico. Este hecho llama poderosamente 1aatención teniendo en cuenta la estrecha relación que existe en­tre ambas eSpecies de Pinus. Al observador comúnle resultaríamuydificil discernir acerca de cual de las dos eSpecies setrata a simple vista. Sin embargohay una serie de variedadesdiferenciadas, entre otros caracteres, por 1a producción de re­sinas. Mangieri (1979), considera que Pinus elliottii var. densaes la mejor productora de resinas. Un detalle que pudimos apre­ciar en los bOSqueSfue la gran cantidad de exudado producidopor los árboles de E.elliottii al clavarles la chapa de alumi­nio para identificarlos; comocon los árboles de E.taeda no seprodujo este fenómenocon igual magnitud, tratamos de relacio­nar el mayor contenido de resinas con la mayor resistencia alos patógenos. Para esto preparamos medio adicionado con resinanatural.

La resina natural está compuesta por 68%de colofonia,20%de trementina y 12%de agua (Payne, 1954). Se caracterizapor su bajo punto de fusión, entre 60 y 8ÓOC,y su elevada aci­dez, el número ácido varia entre 163 y 170 (Gordon et al.,1954).Por destilación del exudado natural se remueven la trementina yel agua, quedando la'colofonia comoremanente sólido.

Cuando preparamos el medio, realizamos 2 ensayos, unoutilizando resina natural y otro con resina sólida, libre desustancias volátiles, para tratar de evaluar en que fase se en­cuentra la acción retardadora del crecimiento de los hongos. Lascepas se sembraron en cajas conteniendo distintas concentracio­nes de resina, y se midió el crecimiento diario de las mismashasta que cubrieron_1as cajas. En la tabla 12 se exhiben los re­sultados obtenidos para cada cepa.En todos los casos las cepas

61

TABLA 12

ENSAYO DE MEDIO ADICIONADO CON RESINA

BAFC TESTIGO 1% 2% 4% % 12%

531 0.73 0.53 0.53 0.57 0.42 0.36

2002 0.47 0.38 0.33 0.38 0.32 0.26

2417 0.28 0.19 0.19 0.21 0.19 0.17

531 0.73 0.49 0.52 0.49 0.45 0.39

2002 0.47 0.39 0.32 0.32 0.30 0.29

2387 0.42 0.18 0.18 0.18 0.18 0.16

596 0.32 0.10 0.10 0.08 0.10 0.06

III) BE BE EAS DISTINTAS SOLUCIONES

pH 5.8-6.2 5.2 5.2 5 4.6 406

IV) SOLUCIONES BUFFER *

BAFC 531 BAFC 2387 BAFC 2435

pH 5.a 0.72 0.70 0.63pH 4.6 0.40 0.41 0.35

x Todas las cifras expresan crecimiento en cm por dia

62

sembradas en las cajas testigo (0%de resina), crecieron a unavelocidad mucho mayor que las que fueron sembradas en medio a­dicionado con resina (Fotos 80-85). Se produjo la misma reSpues­ta tanto con la resina natural comocon la sólida, de lo que sepuede inferir que el factor inhibitorio no estaria en las sus­tancias volátiles sino en la colofonia remanente. Sin embargo,no se produjo una reSpuesta de tipo cuantitativo a la concen­tración de resina, esto es, menor crecimiento a mayor concen­tración. De algún modoparecia que bastaba la presencia de unapequeña cantidad de resina en el medio, para que se inhibiera1a velocidad de desarrollo de las cepas.

Cuando medimos el pH de las distintas soluciones deagar-malta-resina preparadas,observam08que el medio se acidi­fica notablemente aún con pequeñas cantidades de resina presen­tes. El pH de las soluciones adicionadas con resina varió entre4.6 y 4.8, mientras que 1a variación de las soluciones testigode agar-extracto de malta fué entre-5.8 y 6.2.

Para comprobar fehacientemente que se trataba de unproblema de acidez preparamos soluciones de buffer citrato ­fosfato que adicionamos al medio de agar-extracto de malta, pa­ra pH 4.6 y 5.8. Obtuvimos la misma reSpuesta: en las cajas depH5.8, con pHsimilar a las cajas testigo libres de resina,las cepas crecieron más rápidamente que en las cajas de pH 4.6,con pH similar a las cajas con medio adicionado con resina, (Fo­tos 86-91).

Scheffer (1975 ) verificó que aunque todos los hongosprefieren medios ácidos, algunos son incapaces de crecer o sedesarrollan muy lentamente en pH muy ácido, así como en pH ma­yor que 7; según este autor, el rango de pH normal de las ma­deras estaria entre 4.5 y 5.5 .

Butcher (1968) trabajando con gran cantidad de cepas,encontró que la mayoria produjo su crecimiento máximo en pHentre 5 y 6 .

Shain ( 1967) midió el pH de maderas sanas y podridas.

63

Observó que-el pH de albura y duramen sanos varió entre 4.6y 4.9, mientras que el de zonas muyatacadas varió entre 3.9y 4.4 . Henningsson (1967) encontró que el pH de extractos so­lubles de madera podrida estuvo entre 4 y 5 .

Muchosautores han verificado que los hongos que pro­ducen pudriciones blancas y castañas, acidifican fuertementeel sustrato por la producción de ácidos inherentes a cada ce­pa. Aún los medios buferizados se acidifican rápidamente, sobretodo con los hongos que producen pudriciones castañas.

Entonces, si al medio de agaraextracto de malta, cuyopH se encuentra alrededor de 6, el agregado de resina le bajael pH en más de l unidad, en la madera podría producirse el mis­moefecto, la resina la convierte en un sustrato decididamenteácido para el desarrollo óptimo de los hongos.

Shain ( 1967) llegó a conclusiones similares; obser­vó que el crecimiento lineal de Egmgsannosus se inhibió sobreagar-extracto de malta conteniendo 25 ppm. de pinosilvinas (o­leoresinas) purificadas. Asimismodetectó sobre árboles en pie,la formación de zonas que él denomina "de reacción", en las quehay concentración de fenoles libres y oleoresinas, comores­puesta a la agresión de los patógenos.

De acuerdo con todos estos elementos podemos afir­mar que los hongos se desarrollan más lentamente sobre B.elliottiique sobre 3.Egggg debido al mayor contenido de resinas delprimero, fenómeno que se expresa en una frecuencia de ataquede patógenos sustancialmente menor.

VI) INTERACCIONES

El éxito de un hongo como saprófito primario en 1acolonización de un sustrato, dependerá ampliamente de su habili­dad para eXpandirse rápidamente a través del mismoutilizandofuentes hidrocarbonadas no estructurales. Con la madera en

64

particular se comprobóque las hifas de los xilófagos se dis­tribuyen rápidamente a través del sustrato aún antes de que sedetecte una pérdida de peso significativa (Hulmey Shields,1970),utilizando principalmente azúcares simples presentes en la al­bura de las maderas, que representan entre el 0.03 y 0.08% delpeso seco de las mismas. Se observó asimismo que la velocidadde desarrollo de los colonizadores primarios sobre la madera espreporcional al desarrollo sobre cajas de agar-extracto de malta,aunque teniendo en cuenta que sobre celulosa se desarrollan máslentamente que sobre azúcares simples (Hulme y Shields, 0p. cit.;Thompsonet al., 1968; Sharp y Eggins,1970b).

La acción de los saprófitos primarios altera la maderapermitiendo la entrada de otros organismos. Para determinar elpatrón secuencial de la colonización fúngica, es necesario con­siderar los mecanismosde interacción fúngica. Se considera in­teracción a cualquier actividad de un organismo que de algúnmodoafecta el crecimiento de otro organismo en asociación conél (Woody Tueit, 1955). Se pueden definir 4 relaciones princi­pales: parasitismo, micofagia, secreción de toxinas (incluyendolos antibióticos) y competencia.

Hulme y Shields (1972) comprobaron que Trichodermaviride, que es un hongo celulolitico que coloniza la madera pe­ro no puedeutilizar sus polisacáridos estructurales, retarda eldesarrollo de otros hongos produciendo antibióticos y removiendorápidamente los carbohidratos no estructurales que parecen sernecesarios para la rápida progresión hifal de los colonizadoressecundarios. Cuanto más tarda en inocular 2.viride', mayorcan­tidad de basidiomicetos se aislan del sustrato.

Otros autores también trabajaron inoculando saprófitosprimarios (Etheridge,197l; Butcher,1972) o secundarios (Hanka,1968), en un intento de encontrar antagonistas naturales paradeterminadas comunidades de xilófagos.

Se realizaron distintos tipos de eXperiencias paramedir interacción, entre otras: sobre b10ques de madera ( Sharp

65

y Eggins, 1970-a,b ; Hulmey Shields,1972); sobre agar-malta(Dennis y Webster, 1971-a,b ); sobre agar-papa (Manka, 1968).

De acuerdo con los resultados que obtuvimos en losmuestreos, decidimos realizar una primera aproximación al pro­blema probando la interacción de las cepas más importantesfrente a Naematolomafasciculare, en cajas de Petri con mediode agar-extracto de malta. fi.fascicu1are demostró poseer es­casa capacidad degradadora de 1a madera "in vitro" y, al mis­motiempo se desarrolló vigorosamente sobre este sustrato. Al­gunos autores lo han postulado comocontrol biológico de al­gunos xilófagos ( Park, 1968; Rayner,1977).

Para la evaluación de los resultados medimosel cre­cimiento 1inea1y obsawamos el contacto y la mezcla hifalteniendo en cuenta la presencia o ausencia de una zona de inhi­bición y la formación de zonas coloreadas o exudados cuando losmicelios se aproximan. La ausencia o presencia de mezcla hifalse toma comoreflejo de interacción, existiendo compatibilidadcuando ésta se observa o inhibición cuando no se verifica.

En la tabla 13 se pueden observar los resultados ob­tenidos. En ella vemosque fi.fasciculare es antagonista de :Hiphoderma setigerum (Foto 92); Hyphodontia snathulata (Foto 93);Hyphodontia alutaria (Foto 94); Subulicystidium longisoorum (Fo­to 95); Phellinus gilvus (Foto 96); Junghuhnia complicata (Foto98); PXCnODOPUSsancuineus (Foto 100); RigidOporus zonalis (Fo­to 101); SChiZODOPacarneo-lutea (Foto 102); Skeletocutis Ei­vea (Foto 103) y GymnOpiluspeliolenis (Foto 104).Es inhibido por : Coriolus villosus (Foto 97) y Lenzites acu­ta (Foto 99);

VII) ANALISIS BE LAS POBLACIONES FUNGICAS EH FUNCION QE LOS

En el gráfico 10 se representan los histogramas de

ENSAYOPARA

TABLA13' PROBARINTERACCIONEO

CEPA E'EEEÉQEEEE E-EEEEEELEEE E'ílEEEEEE 2-12223522222 E-gílxai S'lillííïí E-isgii i-samalisaïs 5-3122222222 E-aanílii E-Eísaie-laiss É°Eilíi 9 -2313212233

FOTO

92 93 94 95 96 97 99 98100 101 102 103 104

CRECIMIENTO*

SOLO

CONN.F.

CRECIMIENTOSOBREN.F. N.F." N.F. N.F. N.F.

crece

ELOTRO sobre

CubretotalmenteaN.F.

..N.F. N.F." N.F." N.F. N.F. N.F.

crece

H 1.2 0.7 1.5 1.0 0.5 0.6

Cm

sobre

Iel

TIPODECONTACTO sinzonadeinhibición

H'I'|OI

deinhibición:

IIIII.H._

sinzonadeinhibici

HHHI'

zonadeinhibición: sinzonadeinhibici

I!||IIHzonadeinhibición:

H||HIIsinzonadeinhibici

1.5 2.0 0.7 ón 0.5 6n 0.5 1.0 ón

cm cm cm Cm cm

*Losnúmerosexóresancrecimientoencm.

66

setigerum

p ,

Schizopora carneo-lutea

misiones delta68

Phlebiopsis giganteal frecuencia(%)

m 9Sabncina cinerea

Hypochnicium

l GRAFICO 10Rígidoporus ZOHHLio

— (cont.)

7Subulicystidium

I.“¡I _'I k

69

frecuencias de las especies más frecuentes y con distribuciónmás amplia en función del lugar geográfico y las estacionesdel año para ambos hOSpedantes. Se dibujaron en forma super­puesta las columnas que representan las frecuencias obtenidaspara ambospinos; las blancas correSponden a B.taeda y las ne­gras a B.elliottii. En la parte inferior del gráfico se represen­tó el histograma de lluvias para cada región en cada una de lasestaciones del año. Comolos muestreos se realizaron siempre afin de mes, el histograma de lluvias se realizó sumandolos va­lores de precipitación del mes del muestreo a los valores de los2 meses anteriores al mismo.

Botryobasidium laeve ( gráfico lO-a)

Es un organismo típicamente corticicola que colonizatanto B.taeda como3.elliottii, presentándose con frecuenciasmás altas en el primero de ellos. En Misiones se registró des­de el verano de 1981 hasta el otoño de 1982, con frecuencias altasen todas las estaciones del año, presentando un pico en la prima­vera de 1981. En el Delta apareció en el último muestreo,con fre­cuencia alta. Aparentemente no se correlaciona con los indices delluvias.

Hyphodermasetigerum ( gráfico lO-b)

Es un organismo corticícola que se presenta también so­bre madera descortezada. Coloniza ambos pinos, presentándose confrecuencias más altas sobre B.taeda en Misiones, en donde se re­gistró desde el invierno de 1980 hasta el otoño de 1981 con fre­cuencias más o menos altas en todas las estaciones, con un aumen­to en la primavera de 1980. En el Delta se registró con frecuen­cias bajas, similares para ambospinos, en los 2 últimos muestreos,con un pico en otoño de 1982. En ambos sitios apareció en perio­dos de lluvias intensas.

70

Schiz0pora carneo-lutea (gráfico lO-c)

Es uno de los organismos típicos en ambos sitios, soebre ambospinos, registrándose con mayor frecuencia sobre E.taeda.En Misiones se registró desde otoño de 980 hasta otoño de 1982,con frecuencias altas en primavera y otoño, declina en verano einvierno. En el Delta se presentó en todos los muestreos desde elotoño de 1981, registrando frecuencias moderadamentealtas hastala primavera de 1981, para luego declinar. No exhibe correlaciónevidente con las precipitaciones.

SChiZOpOI‘aparadoxa (gráfico lO-d)

Muyrelacionado con el anterior, es un organismo que sepresenta sobre ambos hOSpedantes en Misiones, y sobre B.taedasolamente en el Delta. Siempre se registró con frecuencias muybajas, siendo su distribución errática en las distintas estacio­nes del año.

Hyphodontia soathulata (gráfico 10-e)

Se trata de un organismo típico de estos bOSques.Se re­gistró tanto sobre corteza comosobre madera descortezada. En Mi­siones apareció regularmente desde el otoño de 1980 hasta el oto­ño de 1981 con frecuencias altas, exhibiendo un pico en primavera;luego declinó ostensiblemente._3n el Delta se registró desde laprimavera de 1980 hasta el último muestreo,con frecuencias muyaltas en todas las estaciones, y declinando en los 2 últimosmuestreos. Se registró con mayor frecuencia sobre E.taeda conexcepción de 2 muestreos del Delta, en que se observó la situacióninversa. Los picos máximosde frecuencia coinciden con los picosde lluvias en ambossitios.

Junnhuhnia complicata (gráfico lO-f)

71

Es un organismo que se presenta asociado en los mues­treos a1 anterior, pero registrándose siempre con frecuenciasmás bajas. En Misiones registró un pico de frecuencia en el in­vierno de 1980, mientras que en el Delta apareció con frecuen­cias más o menos altas en todas las estaciones, con un leve au­mento en otoño e invierno de 1981. No se correlaciona con laslluvias.

PhlebiOpsiS gigantea (gráfico lO-g)

Es un organismo típico del Delta, que se registrócon igual frecuencia sobre ambospinos.Presenta una estaciona­lidad marcada, otoño-invernal.

Sebacina cinerea (gráfico lO-h)

Es, al igual que el anterior, un organismo tipicodel Delta, que se registró desde 1a primavera de 1980 hastael último muestreo, exhibiendo un pico de frecuencia en 1aprimavera de 1981.Se observó mucho más frecuentemente sobreB.taeda. Tampocose correlaciona con las precipitaciones.

Hipochnicium punctulatum (gráfico lO-i)

Es un organismo típico de Misiones, que se registrócon frecuencias muyaltas sobre B.taeda y algo menores sobreB.elliottii. Apareció en el verano de 1981, hasta 'e1 últimomuestreo, con un pico en 1a primavera de 1981, declinando eninvierno y verano. Nopresenta signos marcados de estacionali­dad.

RigidOporus zonalis (gráfico 10-j)

Se trata también de un organismo típico de Misiones,

72

que se registró prácticamente en todos los muestreos. Es unode los pocos que exhibe mayores frecuencias sobre B.elliottiien la mayoría de los censos. Presenta estacionalidad marcada,ya que aparece con frecuencias máximas en otoño y primavera.

SubuliCystidium longisporum (grágico lO-k)

Es un organismo típico de Misiones; se registró confrecuencias bajas sobre ambos hOSpedantes, desde el otoño de1980 hasta el verano de 1981.

Tomentella fulininea (gráfico lO-l)

Es también un organismo típico de Misiones. Al igualque 5.zonalis fué una de las primeras eSpecies que se registró,y es la única que exhibe frecuencias mayores sobre B.elliottiien todos los muestreos. Presenta estacionalidad marcada, setrata de una eSpecie netamente invernal, con frecuencias redu­cidas en las otras estaciones del año.

VIII) CLASIFICACION D_1-:LAS ESPECIES SEGUN a GRADOg II-¡PORTM‘ICIA

E M FUNCIOI-I ECOLÓGICA D_E CADA UNA

Para valorar la importancia de cada especie considera­mos necesario hacer una clasificación según la prOpuesta deOrlós (1965). En nuestro trabajo nos basamos en 3 parámetros:l) la frecuencia obtenida en los muestreos; 2) la permanenciaen los muestreos; 3) 1a acción degradadora “in vitro". En nues­tro criterio, una eSpecie muyvoraz, pero que aparece en muyp0­cos muestreos con frecuencia baja, tendrá, relativamente, la mis­ma importancia que otra, que, aunque medianamente voraz, aparececonstantemente en los muestreos. En la tabla 14 se exponen las3 escalas con que se clasificaron cada uno de los hongos. Una

73

TABLA 14

ESCALAS PARA LA CLASIFICACION DE LAS ESPECIES

1) EÉSfiE’í E95 EEÉEEÉEEEA

1. ESPORADICAS:aparecen en 1 solo censo con menos de 4%de freCuencia.

2. MODERADAS:aparecenen más de un censo con frecuenciasde 4-25%.

3. ABUNDANTES:aparecenen mas de un censo con frecuenciasde 26-50%

4. MUYABUNDANTES:aparecen en mas de un censo con frecuencia

mayor de 50%.

2) 5295.9. 395 BEBE/¿EEE

1. EXCLUSIVAS:aparecen en censos de un mismo tipo (Misiones,Delta, Elliottii o Taeda)

.:aparecen en menos del 10% de los censos.2.:aparecen entre 11-50%de los censos.

.:aparecen entre 51-75% de los censos.4.: aparecen en mas del 75% de los censos.

. DE BAJAOCURRENCIA:aparecen entre 10-40% de los censos.

. INTERMEDIAS:aparecen entre 41-75% de los censos.4. TIPICAS:aparecen en más del 75% de los censos.

3) 559535 325 ACCION DEGRADADORA¿g valgo

1. MUYDEBIL:provocan perdida de peso de 0-16% en 12 meses.2. DEBIL: provocan pérdida de peso de 17-35% en 12 meses.3. MODERADAHENTEALTA: n " 36-50% " "

3. NO SE CONOCE SU ACCION DEGRADADORA.

4. ALTA: provocan pérdida de peso entre 51-70% en 12 meses.5. MUYALTA: provocan pérdida de peso mayor de 70% en 12 meses.

74

vez definido el valor de cada Indice para cada eSpecie, éstosse sumaron para obtener el grado de importancia de la funciónecológica de cada una dentro de la comunidad fúngica que colo­niza B.e11iottii y_3.taeda.

Para 1a acción degradadora "in vitro", comono se pu­do obtener cultivo de todas las eSpecies, a aquellas cuya ac­ción no se pudo probar se les asignó el número 3, valor mediode la escala. En general son eSpecies corticícolas que se supo­ne no poseen mayor importancia por ser eSporádicas y de bajafrecuencia. De cualquier modopuede suceder que el.grado de im­portancia de la función ecológica esté sobreestimado para ellas;en la tabla 15, en donde se puede observar la clasificación delas eSpecies, figuran con un asterisco todas las eSpecies enesta situación.

El grupo de xilófagos que puede considerarse de ries­go, está constituido por: Hyohodontiasoathulata, vahoderma ge­tigerum, Hynhodontiaalutaria, Junghuhnia comolicata, Riqidouo­rus zonalis y SChiZODOFacarneo-lutea, todas muy frecuentes y deprobada acción degradadora, además de Tomentella fuliginea, Hy­pochnicium punctulatum y Botryobasidium laeve, eSpecies muy fre­cuentes, aunque podrían estar sobreevaluadas en cuanto a su ac­ción degradadora, que no se conoce.

De los otros componentes de esta comunidad fúngicahay que vigilar la posible aparición de GymnOpilusceliolepis,Phellinus pilvus, Coriolus villosus, PycnOporussanguíneus yLenzitcs acuta, por su probada acción xilófaga.

Aunque la mayoría de las eSpecies aparecen sobre ma­dera estibada, deben tenerse muyen cuenta las eSpecies quefueron registradas sobre los árboles en pie y que resultaronposeer un elevado grado de importancia de la función ecológica.Ellas son: Hyphodermasetiqerum, Schizonora carneo-lutea, HyphO­dontia alutariá, Dotryobasidiumlaeve, Junchuhnia comnlicata,Rigid0porus zonalis e Hynhodontia Spathulata.

75

TABLA 15

CLASIFICACION DE LAS ESPECIES SEGUN EL GRADO DE IMPORTANCIA

EE ké FUNCION ECOLOGICA

1-4 SIN INCIDENCIA:I.duracinus,Henningsomyces ÏE*; E.gg¿g­Eigglí*; 5.alutacea; Pleurotus 33*; 9.crustulinus*; H.halonata*; S.ochraceum;V.comedens*; Calocera sp*; S.nivea.

5-8 INCIDENCIADEBIL=Eogíginisi: 5-2222522*s I-siiiigi:N.fascicu1are;B.conspersum*;8.parado­ïi; g.longisporum;E.ga1actites*; 9.BilíílEBíi; L-ESEÉE;Ï'gíllïíï B'ÏEE‘QEÉEEEEEÉEÏ*3I-ÍÉEÉEEEEE*3 É'Elíllí‘

yílígigi; g.cinereaa 5.tu1asnelloidea*;P.sanguineus.

9-11 INCIDENCIAALTA=E-isïigsnga: É'SEEEE2“12EEE=I-ígligi­2si*=E-ilaii:ie: E-Bgnsialiïamñ É-lEE‘13*; ¿.complicata; 5.zonalis.

+ 12 INCIDENCIA MUYALTA: 5.58ggggligí.

: las especies marcadas con asterisco podrían estar sobre­evaluadas en Cuanto a su acción degradadora "in vitro",ya que no se pudieron obtener cultivos de ellas.

76

PARTE TAXONOMICA

CLAVE D_ELAS ESPECIES REGISTRADAS SOBRE PINUS ELLIOTTII g

PINUS TAEDA y MISIONES X EL DELTA

1 .Basidiosseptadoso bifurcados...................... 21'.Basidiosno septadosni bifurcados.................. 4

2 . Basidios bifurcados, en horqueta ... Cerinomycescrustulinus2'. Basidiosseptados.............x................. 3

. Basidios septados transversalmente ....... Calocera s2.3'. Basidios septados longitudinalmente .... Sebacina cinerea

4 . Basidiocarpocon himenioporoide ................ 54'. Basidiocarpo COnhimeniono poroide .......:..... 19

5 .Basidiocarpo con laca superficial, eSporas verrugosas,truncadas............................ Ganodermasubamboinense

5'.Sinesascaracterísticas............................ 66 . Basidiocarpo con contexto castaño, con reacción

xantocroicae hifas afibuladas ........ Phellinus cilvus6L.Sinesascaracterísticas........................ 7

.Basidiocarposiempreresupinado..................... 87'.Basidiocarpo pileado, estipitado, sésil, efuso reflejo

u ocasionalmenteresupinado......................... 138 . BasidiOSporasamiloides .............. WrightOporiaavellanea8'. BasidiOSporasinamiloides...............;....... 9

9 .Hifas generativas eon paredes engrosadas irregularmente,BasidiOSporascilíndricas ............... Antrodiaramentacea

9'.Hifas generativas sin pafedes engrosadas irregularmen­te .................................................. 1010 . Hifas eSqueletales diluíbles en KOHal 5% .. Skeletocutis Ei!10'. Hifas eSqueletales no diluíbles en KOHa1 5% ... ll

ll .Sistema hifal monomítico............. RigidOporussanguinolentus11'.Sistemahifal dimitico............................. 12

13

13'

15

15'

1717'

19

19'

21

21'

77

12 . Poros 4-6 por mm. BasidiOSporas subglobosas a an­chamenteelipsoidales, 3.1-4.2 x 2.6-3.1 um ....

SchiZOporacarneo-lutea12'. Poros 2-3 por mm.BasidiOSporas elipsoidales 4.2­

5.2 x 3.6-4.2 umSistema hifal monomítico

SchiZOpora paradoxalo.ooo-IOOOOOOOOOOIOOOOOI0-

Sistemahifal di- o trimítico ...................... 1514 . BasidiOSporasglobosas ........... Rigidgporuszonalis14'. BasidiOSporascilíndricas ........ Tyromycescaesius

Doloonoao¡.tloalnoocoIOOQO-oanSistema hifal dimíticoSistemahifal trimítico............................ 1716 . ESporasalantoides ................ Tyromycesduracinus16'. ESporas globosas a anchamenteelipsoidales ....

.....IOIOCOOIOO.....IOOCIOUIIOOOOOOBasidiocarpo anaranjado ................ PyCDODOPUSsanguíneusBasidiocarpo de colores pálidos, no anaranjados .... 1818 .Basidiocarpo demediado, delgado, corchoso a coriá­

ceo, con bandas hirsutas Coriolus villosus18'.Basidiocarpo ungulado, grueso, leñoso, glabro ...

..................................... LenzitesacutaBasidiocarpocon himenóforolaminar ................ 20Basidiocarpo con himenóforono laminar ............. 2320 . Himenóforo formado por seudolaminillas; bordes

de las laminillas aparentemente hendidos longi­tudinalmente,con los márgenesrevolutOs .......O0.0.00.0..oooooooooooocooool00-000.

20'. Himenóforo formado por verdaderas laminillas .. 21BasidiOSporas truncadas, con poro germinativo

Naematolomafasciculare0.000.000.000.IIOOOOOOO-OOOBasidiOSporas diferentes

22 . BasidiOSporaslisas; pleurocistidios incrustados00.0.0...IOOIOOIO...-ODUGIOOIOOOJOOOOO -S_El

22'. BasidiOSporasverrugosas; pleurocistidios noincrustados.................... Gymn0piluspeliolepis

23

23'

25

25'

27

27'.

29

29'

31

31'.

33

33'

78

Basidiocarpo cilíndrico, con poro apical conSpicuo,himenio tapizando 1a superficie interna del tubo .......................................... Henningsomzces5g.Basidiocarpodiferente............................. 2424 . Basidiocarpo eSpatulado, infundibuliforme, esti­

pitado. Himenóforoliso .......... Cotylidia aurantiaca2524'. Basidiocarporésupinado.......................

Basidiocarpo oscureciéndose en KOHal 5%; eSporas or­namentadascastaño rosadas ............ Tomentellafuliginea

26

26 . Condicofisas .................... Varariapallescens26'. . 27Superficie himenial irpicoide;

Sin esas características

Sin dicofisassistema hifal dimiti­

CO Steccherinum ochraceumSuperficie himenial lisa a odontoide;'sistema hifalmonomítico 2828 .Hifas subiculares anchas, 8-15 um diám, ramifica­

dasenángulorecto ............................ 2928'.Hifas subiculares angostas, 2-6 umdiám ........ 31Hifas fibuladas ....................... Botryobasidiumsubcoron

....00.000....OIOOOOOIOOOOOIOIOOIOO30 . BasidiOSporas_cilíndricas, 7.2-8.3 x 2-3.1 um .

......IÍCOOII.......00.00.00......IBOtryoba-sidium5-7.2 x 2.6-3.1 um

...-......con.o.oooooococccoooncol¡BOtryObaSidj-um30'. BasidiOSporas ovoides,

Basidios urniformes, si olaviformes, las hifas pre­oooonsentan dilataciones ampuliformes en los septos

Basidios claviformes o utriformes; hifas sin dilata­cionesampuliformesen los septos................... 3332 . Basidios urniformes Sistotrema brinkmannii¡nooo-ooooooooo32'. Basidiosclaviformes.............. TrechisnorafarinaceaBasidios utriformes, desarrollándose en un catahime­nio .................................... VuilleminiacomedensPosidios no ntríformes, formandoun euhimenio ...... 34

35

35'

3737'

3939'

4141'

4343'

45

45'

79

34 . Himenóforoliso; con pleurobasidios ...........Xenasmatella tulasnelloidea

34'. Himenóforoliso, meruloide u odontoide; sinpleurobasidios 35

Hifas del subiculo gelatinizándose; dificilmente se­parables............................ PhlebioosisgiganteaHifas del subiculo distinguibles, no se gelatinizan ..3636 . SUperficie himenial pelicular; con rizomorfos

evidentes..................... Phanerochaetegaiactites36'. SUperficie himenial tomentosa o pilosa, no pe­

licular ; sin rizomorfosevidentes ........,... 37BasidiOSporas más pequeñas que 8 x 3 um ............. 38BasidiOSporasmás grandes que 8 x 3 um .............. 4338 . Himenioliso a tuberculado............:....... 3938'. Himenioodontoide............................. 41

Himenioliso; basidiOSporas subcilindricas ..Hyphodontia halonataHimeniofinamentetuberculado....................... 4040 . Conlagenocistidios ........... Hyohodontiaalutaria40'. Sin lagenocistidios ........... Hyphodermasambuci

Sin cistidios; basidiOSporas alantoides .... Hyphodontiaalutacea42Concistidios

42 . Cistidios capitados y moniliformes, con paredesdelgadas...................... EyphodontiaSpathulata

42'. Cistidios de pared gruesa, con numerosos tabiquesseeundarios................... Hyphodontiaabieticola

Congloeocistidios .................. Penionhoracinerea44o.0.0.0UOIOOIOOGOOOOIOIJIOOIOIOOI.

44 . BasidiOSporas ornamentadas en azul de algodón .0' O... OOO.OOOO.0OO0OOlOOI. .0IOO

4544'. BasidiOSporas lisasConcistidios acuminadosincrustados con cristalesplanos............................. SubulicystidiumthRiSDOPUm

46Concistidios diferentes

46 .

46'.

80

Cistidios cilindricos, de pared delgada0.0.0.00.oOOOIOOIOOOOOOIOOOOOOOOOQCistidios de pared engrosada, tabicados, confíbulas en todos los septos ...... Hyphodermasetigerum

81

TABLA 16

usage/gm 9K;gas ÉEEÉSEE 5995€ 51522 ELLIOTTII Y PINus TAEDA

Sub-división BasidiomycotinaClase BasidiomycetesSub-clase HeterobasidiomycetidaeFamilia Tremellaceae- Sebacina cinerea

Familia Dacrymycetaceae- Calasaci EP

Cerinomycescrustulinus

Sub-clase HolobasidiomycetidaeOrden Aphy110phora1esFamilia CorticiaceaeSubfamilia Sistotremoideae- Sistotrema brinkmannii—Trechispora farinaceaSubfamilia Botryobasidiodeaef Botryobasidium conspersum—Botryobasidium laeve— Botryobasidium SubCOPOflatumSubfamilia Athelioideae—Phanerochaete galactitesSubfamilia Phlebioideae—Phlebíopsis giganteaSubfamilia Hyphodermoideae—Hyphoderma definitum—Hyphoderma sambuci—Hyphoderma setigerum—Hyphodontia abicticola- Hyphodontia alutacea- Hyphodontiaalutaria—HyphodOntia halonata- Hyphodontia sbathulata—Hypochnicium punctulatum—PeniOphora cinerea- Subulicystidium longisporumSubfamilia Aleurodiscoideae' Xïillïüíflíí EEPEÉEESSubfamilia Tubulicrinoideae- Xenasmatella tulasnelloidea

Familia Steccherinaceae—Steccherinum ochraceum

Familia Lachnocladiaceae- Vararia pallescens

Familia Thelephoraceae—Tomentella fuliginea

Familia Podoscyphaceae—Cotylidia aurantiaca

Familia Cyphellaceae’ EEEEEEQESEXSEE 32°

Familia SchizOphyllaceae- SchizOphyllum commune

Familia Hymenochgetaceae- Phellinus gilvusFamilia Ganodermataceae- Ganoderma subamboinense

Familia Polyporaceae—Antrodia ramentacea—Coriolus villosus- Junghuhnia cemplicata- Lenzites acuta- FJEHSBSFUS_E5¡guineuS—Rigidoporus sanguinolentus- Rigidoporus zonalis- SchizOpora carneo-lutea- Schizopora paradoxa- Skeletocutis nivea—ïíFSEíEEE"EïeEÏGE_- Tyromyces duracinus- WrightOporia avellanca

Orden AgaricalesFamilia Cortinariaceae- Gymnopiluspeliolepis

Familia Strophariaceae—Nematoloma fasciculare- Pleurotus sp.

82

DESCRIPCION DE LAS ESPECIES

En la tabla 16 se puede observar la clasificaci nde todos los basidiomicetos encontrados sobre ambospinos.La descripción de las eSpecies se realizará siguiendo el or­den de dicha tabla.

SEBACINA CINEREA Bres. FOTO l

Fungi Trid. 2: 99.1892. FIGS. 7-12

BASIDICCARPOresupinado, delgado, adnato. Superficiehimenial cerácea, pruinosa,"beige"grisácea cuando fresca, secán­dose crémeo grisácea; margen definido, concoloro.SISTEMA HIFALmo­nomitico, compuestopor hifas aglutinadas, compactas, diSpuestasen una capa basal más o menos delgada, 2-3.1 um diám. HIMENIOcompuestopor paráfisis simples o ramificadas irregularmente,l-2.5 umdiám; gloeocistidios abundantes, cilíndricos a subclavi­formes, con contenido granular castaño amarillento, 15-40 x 5.2­8.3 um; probasidios obovados a piriformes, 11.9-18.2 x 7.2-10.4 um,bicelulares, con septo longitudinal; esterigmas hasta 3 umde lon­gitud. BASIDIOSPORASoblongas a anchamente elipsoidales, adelgazán­dose en uno de los lados, hialinas, apiculadas, de pared delgada,gutuladas, 8.8-10.5 x 6-7.8 um, germinan por repetición.MATERIALREPRESENTATIVO: BAFC 29340;29390; 29391 y 29392OBSERVACIONES:nuestros materiales coinciden plenamente con lasdescripciones de Martin (1952) y McNabb (1966).Esta es la pri­mera cita para el país.

CALOCERAEB: FIGS. 1-3

BASIDIOCARPOgregario, crémeo amarillento cuando fres­co, oscureciéndose a1 secarse, simple, cilíndrico, atenuado ha­cia el ápice. Consistencia firme, gelatinosa. SISTEMAHIFAL

83

monomítico, con hifas afibul .as, de pared delgada, ramificadas,2.6-4.6 um diám. HIMENIOanfígeno, liso, constituido por basidiosy paráfisis. Prohasidios cilindricos a subclaviformes, con septobasal, bifurcados, 20-35 x 3.1-5.2 um; paráfisis cilíndricas, sim­ples, sin ramificar, 1.5-3.1 um diám. BASIDIOSPORASno se vieron.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29392

OBSERVACIONES:1a determinación genérica se realizó según Mar­tin (1952), Lowy (1955) y Mc Nabb (1965).

CERINOMYCESCRUSTULINUS(Bourd. & Galz.) Martin FIGS.4-6

Mycologia 41:85, 1949.= Ceracea crustulina Rourd.& Galz.,Bu11. Soc. Mycol. Fr. 392266,1924.

BASIDIOCARPOreSUpinado, adnato, delgado, ceráceo. Su­perficie himenial lisa, ocrácea; margen indefinido. SISTEMAHIFALmonomítico, con hifas generativas fibuladas, de pared en­grosada, 2.5-4 um diám. BASIDIOScilíndricos, en horqueta,2-eSpo—rados, con esterigmas muy largos hasta 13 um de longitud, con elápice redondeado a1 principio, luego bien agudo, 18-21 x 4-6 um.BASIDIOSPORASalantoides, lisas, hialinas, de pared delgada, 1e­vemente apiculadas, 9.8-12.5 x 3.6-4.7 um.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29339

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con los descriptos porEriksson y Ryvarden (1973). Esta es 1a primera cita para e1pais.

SISTOTREMABRINKMANNII(Bres.) J. Eriksson FIGS. 13-15

K. FysiOgr. Sállsk. Lund. Fórh. 18:134. 1948.= Grandinia brinkmannii Bres. Ann. Myc. 1265-121. 1903.

BASIDIOCARPOresupinado, pelicular. Superficie hime­nial blanco grisácea, se re5quebraja a1 secarse. SISTEMAHIFALmonomitico, con hifas fibuladas, de pared delgada, 3.1-7.2 umdiám. BASIDIOSen ramilletes, urniformes, con 6-8 esterigmas,4-5um diám. BASIDIOSPORASoblongo elipsoidales, hialinas, lisas,

84

adelgazándose en uno de los lados, 4.1-5.2 x 1.5—2um, inami­loides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29393

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con los descriptospor Christiansen (1960) y Gilbertson (1974). Esta eSpecie fueencontrada y descripta por C. Gómez( en M.S.)

TRECIIISPORAFARINACEA(Pers. : Fr.) Liberta FOTO 2Taxon 15:318. 1966. FIGS.16—18

BASIDIOCARPOefuso, aracnoide, pelicular a submembra­náceo. Superficie himenial pruinosa, lisa a hidnoide, blanqueci—na.SISTEïA HIFALmonomítico, con hifas generativas fibuladas, po­co ramificadas, de pared delgada a levemente engrosada, 2-4 um diám,frecuentemente presentan dilataciones ampuliformes de hasta 5 umdiám. BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados, con esterigmas largos,hasta 4 um de longitud, 15-20 x 5-5.6 um. BASIDIOSPORASelipsoi­dales, equinuladas, hialinas, de pared delgada, 3.1-4.l x 2.6-3.1um, inamiloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29286

OBSERVACIONE: nuestros materiales coinciden con la descripciónde Liberta (1973).

BOTRYOBASIDIUHCONSPERSUHJ. Eriksson FOTO 3

Symb. bot. Ups. 16(1Ï: 133. 1958 FIGS.19-22BASIDIOCARPOmuy delgado y pobre, hipocnoide, blanco

grisáceo. Formaimperfecta ocrácea amarillenta, pulverulenta.SISTEMAHIFALmonomitico, con hifas afibuladas, de pared delga­da, poco ramificadas, 4.3-7.2 um diám. BASIDIOScortamente ci­líndricos, con 6 esterigmas, 11.9-14 x 5.7-7.8 um. BASIDIOSPORAScilíndricas, apiculadas, lisas, de pared delgada, 7.2-8.3 x 2.08 _3.1 um, inamiloides, acianófilas. ESTADOCONIDIALencontradoJunto con la forma perfecta. Conidióforos formados por hifas

85

hialinas, de pared delgada, afibuladas, sin ramificaciones, conregular número de dientes conidiógenos. CONIDIOSelipsoidalesa limoniformes, amarillentos, 7.2-16 x 7.2-10.4 um. El anamor­fo se corresponde con Haplotrichum conSpersum ( Holubová - Je­chová, 1980).MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29338

OBSERVACIONES:la descripción del teleomorfo coincide con 1ade Eriksson y Ryvarden ( 1973). Se cita por primera vez .

BOTRYOBASIDIUXLAEVE (J. Erikss.) Parm. FOTO 4

Eesti NSVtead. akad. toimet. Biol. seer. 142220, 1965. FIGS.23-26= Botryobasidium pruinatum (Bres.) J.Erikss. var. laeve J. Erikss.

sv. bot. tidskr. 52: 10, 1958. 'BASIDIOCARPOdelgado, blanco grisáceo a amarillento cuan­

do seco, reticulado a hipocnoide, de textura muypobre. Formaimperfecta pruinosa, típicamente de color acanelado a ferrugíneoSISTEMAHIFALmonomítico, con hifas generativas afibuladas. En elsubículo son muyanchas, amarillentas a castañas, 9-15 um diám,de pared engrosada y ramificaciones en ángulo recto. Las ramashimeniales están constituidas por hifas más angostas, de pared del­gada, 2.6-7.2 um diám, bien ramificadas, casi hialinas. BASIDIOScortamente cilíndricos, con 6 esterigmas, 15-20 x 8-9 um. BASIDIOS­PORASovoides, apiculadas, lisas, de pared delgada, 5-7.2 x 2.6­3.1 um, inamiloides, acianófilas. ESTADOCONIDIALgeneralmentepresente, correspondería a Haplotrichum, con conidióforos con nu­merosos dientes conidiógenos. CONIDIOSglobosos, castaños, de pa­red engrosada, 10-15 x 9-13 um.MATERIAL REPRESENTATIVO: BAFC 29282; 29288; 29308 y 29394

OBSERVACIONES:la descripción de 1a forma perfecta coincide conEriksson y Ryvarden (1973), pero ellos no encontraron 1a forma im­perfecta , a la que citan comodesconocida. Se describe por prime­ra vez para el país.

86

BOTRYOBASIDIUMSUBCORONATUH(v. Hohn & Litsch.) Donk FOTO 5

Meded. Nederl. mycol. veree. 18-20: 117, 1931. FIGS.27—29= Corticium subcoronatum v. Hohn & Litsch., Sitz.-ber. K. Ak.

Wiss. Wien., Math.-nat. K1. 116z822, 1907.BASIDIOCARPOdelgado, más o menos continuo y subpelicu­

lar, amarillento a ocráceo. SISTEMAHIFALmonomitico, con hifasfibuladas, de pared delgada a levemente engrosada en el subículo,4-8 um diám, bien ramificadas, hialinas. BASIDIOSsubcilindricos,con una constricción más o menos evidente, poseen 6 esterigmas,15.6—19.8 x 6.76-7.2 um. ESPORASnaviculares, apiculadas, de pa­red delgada, 6-7.2 x l.8—2.4 um, inamiloides, acianófilas. ESTA­DOCONIDIALencontrado junto con la forma perfecta, es muy simi­lar a1 de g. lagve, con conidióforos formados por hifas muypo­co ramificadas, con septos simples y regular númeró de dientes

,conídiógenos, hialinas. CONIDIOSesféricos, hialinos, de paredlevemente engrosada, lO.8-l2.6 um.Laforma imperfecta corres­pondería a un Haplotrichum.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29281; 29287 y 29304

OBSERVACIONES:es una eSpecie que se distingue fácilmente deotras del género Botrxobasidium por poseer hifas fibuladas. Losmateriales coinciden con las descripciones de Eriksson y Ryvar­den (1973) y Gilbertson (1974),aunque no la describen junto conel anamorfo. Esta eSpecie fue registrada y descripta por C.Gómez (en M.S.).

PHANEROCHAETEGALACTITES (Bourd. a; Galz.) Erikss. '& Ryv. FOTOS 7-8

The Corticiaceae of North EurOpe Vol.5:1003-1007.Fungiflo— FIGS.30—32flora. 1978.= Corticium galactites Bourd. & Galz., Hym. de France p.189,1928.

BASIDIOCARPOefuso, adnato.Superficie himenial lisa,aterciOpelada brillante cuando seca, ocre anaranjada, margenfibrilloso con rizomorfos amarillentos más claros que la super­cie himenial. SISTEEAHIFALmonomitico, con hifas afibuladas de

87

pared delgada en el subhimenio, 2-3 um diám, engrosada en elsubiculo, 3-6 um diám. CISTIDIOScónicos, incrustados con cris­tales en el ápice, 6-8 umdiám; la incrustación se observa bienen Melzer, ya que en sol. de KOHal 5% se disuelve rápidamente.BASIDIOSsubclaviformes, 4-e5porados, sin fíbula basal, 20-25 x4-5 um. BASIDIOSPORASelipsoidales, apiculadas, hialinas, lisas,de pared delgada, 3.6-4.6 x 2.6-3.l um, inamiloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29275.

OBSERVACIONES:el material coincide plenamente con la descripciónde Eriksson y Ryvarden (1978). Es la primera cita para el pais.

PHLEBIOPSIS GIGANTEA(Fr.) Jülich FIGS. 33-39

Persoonia lO p. 137, 1978. '= Thelephora gigantea Fr., Syst. mycol. I p. 448, 1821.CARACTER'ESDEL BASIDIOCARPO FIGS. 33-35

BASIDIOCARPOresupinado, bien adherido al sustrato,delgado, gelatinoso cuando fresco, ceráceo cuando seco. Super­ficie himenial lisa a levemente tuberculada, ocrácea, margenfimbriado. SISTEMAHIFALmonomítico, con hifas afibuladas, den­samente imbricadas, cilíndricas a torulosas, de pared engrosada,2.1-8 um diám. CISTIDIOSnumerosos, hialinos, cónicos, de paredengrosada, emergentes del himenio, la parte apical densamenteincrustada. BASIDIOScilíndricos con una constricción, 18-30 x4.5 um, 4-eSporados. EASIDIOSPORASelipsoidales, lisas, de pareddelgada, 3.6-4.6 x 2-2.6 um.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29395; 29396; 29397 y 29398

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con los descriptos porEriksson y Ryvarden (1981); C.Gómez(en M.S.) lo describió , co­leccionándolo en numerosas Oportunidades en el país.

CARACTERES DE CULTIVO FOTOS 44-62 FIGS. 36-39

CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento muy rápido, 7 cmen l semana, cubriendo las cajas en alrededor de 9 días. Capa

88

miceliana blanca en el centro, levemente amarillenta en los bor­des. Margendifuso. Reverso inalterado. Olor de frutas maduras.Reacción de oxidasas: con ácido tánico ++++, creciendo 1.3 cm enl semana; con ácido gálico ++++, sin crecimiento; con goma deguayaco +.

CARACTERESMICROSCOPICOS: Micelio aéreo al princi­pio muyescaso, constituido por hifas generativas fibuladas,bienteñidas con floxina, ramificadas, 2.08-3.12 umdiám.; las fíbu­las se hacen escasas hasta desaparecer prácticamente después dela tercera semana. Se observan distintos tipos de hifas: l) hi­fas afibuladas de pared algo engrosada y luz bien teñida con flo­xina, terminan formando hifas con lagunas de citOplasma contraído,2.08-3.6 umdiám; 2) hifas generativas con luz casi ocluída,2.6­3.6 um diám; 3) hifas afibuladas, vacías, con numerosos tabiquessecundarios, 2.08-3.l umdiám. Se observan numerosos cristalesamorfos y rómbicos incrustando las hifas. Micelio sumergido pre­senta hifas fibuladas semejantes a las del micelio aéreo, tor­tuosas y retorcidas, 2.08-3.l umdiám; luego desaparecen las fí­bulas y las hifas se presentan vacías.CLAVEPATRON: 2. 5. 6. 7. 36. 38. 42. 50. 54. 55

CEPA ESTUDIADA: BAFC 699 (correSponde a_BAFC 29395)

HYPHODERMADEFINITUH (Jacks.) Donk FOTO 9

Fungus 27 p. 15, 1957 FIGS.40—43= Corticium definitum Jacks., Canad. Journ. Res. C 26 p.149, 1948.

BASIDIOCARPOresupinado, muy delgado. superficie hime­nial lisa, blanca grisácea, a 1a lupa aparece finamente tomento­sa por la proyección de los cistidios. SISTEMAHIFALmonomítico,con hifas fibuladas, de pared delgada, ramificadas, 2.1-3.6 umdiám. CISTIDIOSregularmente numerosos, cilindricos, de pareddelgada, redondeados y ensanchados en el ápice, 18.2-26 x 7.2­lO.9 um. BASIDIOSsubclaviformes, sinuosos, con una fíbula en labase, 4-eSporados, lS.6-20.2 x 6.2-8.3 um. BASIDIOSPORAScilin­dricas, lisas, de pared delgada, hialinas, con contenido

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granular, 10.3-15.5 x 3.1-4.6 um.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29343

OBSERVACIONES:el material coincide con la descripción deEriksson y Ryvarden (1975).Es la primera cita para el pais.

HYPHODERMASAMBUCI (Pers.) Julich FOTO 10

Persoonia 8 (I):80, 1974. FIGS. 44-46= Thelephora sambuci Pers., Mycol. eur. I p. 152, 1822.

BASIDIOCARPOresupinado, blanco crémeo, ceráceo cuandofresco, con consistencia de tiza cuando seco. Superficie hime­nial lisa a finamente tuberculada; margen pruinoso. SISTEMAHI­FALmonomitico, con hifas generativas fibuladas, muyramificadas,3.1-4.1 um diám.CISTIDIOSen general aparecen comoterminaciones

.hifales capitadas o aguzadas en el ápice de tipo setiforme. Pue­den o no estar incrustados con cristales. BASIDIOSsubclaviformesa cilindricos, 8.3-10.9 x 4.1-4.6 um . BASIDIOSPORASelipsoidales,lisas, de pared delgada, apiculadas, 4.6-5.4 x 3.2-3.6 um , ina­miloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29272; 29303 y 29318OBSERVACIONES:la identificación de esta eSpecie se realizó deacuerdo con Eriksson y Ryvarden (1976) y Jülich (1980). C. Gómezya 1a habia descripto para el pais (en M.S.)

HYPHODERHASETIGERUH (Fr.) Donk FIGS. 47—52

Fungus 27 p. 15, 1957.= Thelephora setigera Fr., Elench. fung. 1 p. 208, 1828.CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 11 FIGS. 47-48

BASIDIOCARPOresupinado, adnato, bastante grueso yconsistente. Himenioliso a irregularmente tuberculado, ocráccoamarillento; al secarse se cuartea notoriamente en algunas zonas;margen grueso, definido, algo fimbriado.SISTEMA HIFALmonomitico,con hifas generativas fibuladas, de pared levemente engrosada,

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regularmente ramificadas, 2.5-4.l um diám. CISTIDIOSmuy numero­sos, de pared engrosada, regularmente septados, con fibulas encasi todos los septos, incrustados con cristales rómbicos, 50­170 x 10-14 um. BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados, con esterig­mas de hasta 3 um, 10-15 x 5.2-7.8 um. BASIDIOSPORAScilíndricasa subalantoides, lisas, hialinas, de pared delgada, con numerosasgútulas oleosas, 7.2-10.8 x 3.6-4.6 um, inamiloides, acianófilas.MATERIALREPRESENTATIVO: BAFC 29319; 29399; 29400; 29401 y 29402

OBSERVACIONES:es una eSpecie muy abundante en diversos ámbitosdel país; fue recogida en numerosas Oportunidades por C.Gómez,quien la identificó y dibujó (en M.S.) Nuestros materiales coin­ciden con los descriptos por Jülich (1974) y Eriksson y Ryvar­den (1975).

ICARACTERES DE CULTIVO FOTOS 45-63 FIGS. 49-52CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento rápido, cre­

ciendo 2 cm en l semana, cubre las cajas en la segunda semana.Capa miceliana subafieltrada, blanquecina, muytranslúcida, enalgunas zonas se forman motas blancas. Reverso inalterado. Olorausente. Reacción de oxidasas: con ácido tánico ++, sin creci­miento; con ácido gálico +++, sin crecimiento; con gomade gua­yaco +.

CARACTERESEICROSCOPICOS:Micelio aéreo constituido

por hifas generativas fibuladas, bien teñidas con floxina, ra­mificadas, 2.6-5.7 um diám.; con el tiempo se van haciendo muytortuosas y l) o se presentan vacías, con numerosos tabiques se­cundarios, conservando una fibula en la base de la ramificacióno 2) persisten las hifas fibuladas con contenido citOplasmáticomuy refringente , con numerosas gútulas, 2.08-7.28 um diám.En la tercera semana aparecen hifas con numerosas ramificacionescortitas, del tipo de las hifas en cornamenta, 2.08-4.5 umdiám,y algunos cistos o hinchazones hifales, terminales o intercala­res. En la cuarta semana se produce una abundante proliferaciónde cristales rómbicos en todo el micelio. Micelio sumergido con

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hifas similares a las del micelio aéreo, aunque menos abundantes.CLAVEPATRON: 2. 3. 11. 26. 32. 36. 38. 42. 53. 55

CEPA ESTUDIADA: BAFC 2040 ( correSponde a BAFC 29319)

HYPHODONTIAABIETICOLA (Bourd. & Galz.) J.Erikss. FOTO 12

Symb. bot. Ups. 16:1 p. 104, 1958. FIGS.53—55= Odontia barba-jovis SSp. abieticola Bourd. & Galz., Hym. de

France p.426, 1928.BASIDIOCARPOresupinado, crémeo a ocráceo oscuro. Su­

perficie himenial odontoide, con agujas pequeñas, apicalmentepeniciliadas en la lupa por la prOyecciónde los cistidios. SIS­TEMAHIFALmonomítico, con hifas generativas fibuladas, de paredengrosada en el subículo, delgada en el subhimenio, 2.6-3.6 umdiám. CISTIDIOSnumerosos, con pared engrosada que se adelgaza enel ápice y numerosos tabiques secundarios, sobresalen notoriamen­te del himenio, 4.6-5.2 um diám. BASIDIOSsubclavados, 4-e5pora—dos, con esterigmas cortos, 8.8-10.4 x 4.1-4.6 um. BASIDIOSPORASanchamenteelipsoidales, lisas, hialinas, de pared delgada, leve­mente apiouladas, 4.1-5.2 x 2.6-3.1 um, inamiloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29269

OBSERVACIONES:el material fue determinado de acuerdo con Eriksson& Ryvarden (1976). Es la primera cita para el país.

HYPIIODONTIAALUTACEA(Fr.) J. Eriksson FOTO 13

Symb. bot. Ups. 16:1 p. 104, 1958. FIGS.56—57= denum alutaceum Fr., Syst. mycol. I: 417, 1821.

BASIDIOCARPOresupinado, ocráceo oscuro. Superficie hi­menial odontoide, con pequeñas agujas cónicas; himenio subicularentre las agujas, poroso reticulado; margen indistinto. SISTEMAHIFALmonomítico, con hifas fibuladas, regularmente ramificadas,

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2.6-3.2 um diám.CISTIDIOS no posee, en el himenio se pueden ob­servar numerosos grupos de fasciculos hifales, 2.5-4.2 umdiám.BASIDIOScilindricos, 4-eSporados, 7.2-lO.4 x 3.1-4.l um. BASI­DIOSPORASalantoides, lisas, de pared delgada, 5.4-6.3 x 0.7­1.08 um.

MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29271 y 29312

OBSERVACIONES:de las Hyohodontia con eSporas alantoides es laúnica especie que no posee cistidios tubulares de pared engro­sada, por lo que resulta fácilmente reconocible. Los materialescoinciden con los descriptos por Eriksson y Ryvarden (1976). Esla primera cita para el pais.

HYPHODONTIAALUTARIA(Burt) Eriksson FIGS. 58-63

Symb. bot. Ups. 16:1 p. 104, 1958.= PeniOphora alutaria Burt, Ann. Miss. Bot. Gard. l2 p.332, 1925.CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 14 FIGS. 58-60

BASIDIOCARPOresupinado, crémeo a ocráceo, subceráceocuando fresco, crustoso cuando seco. Himenio finamente tubercu­lado a grandinoide; margen indeterminado, pruinoso en la perife­ria. SISTEHAHIFALmonomitico, con hifas fibuladas, ramificadas,de pared levemente engrosada, 2.5-4 um diám. CISTIDIOSde 2 ti­pos, l) capitados, proyectándose 25-30 umpor encima del himenio,con numerosas-constricciones o apenas diferenciándose de las hi­fas, 3.1-5.2 x 45-70 um; 2) lagenocistidios escasos, embebidoso proyectándose levemente del himenio, incrustados en el ápicetípicamente aguzado, 3.1-5.2 um diám. BASIDIOSsubclaviformes á ci­lindricos, 4-esporadcs, 10.4-15 x 4.1-5.2 um. BASIDIOSPORASelip­soidales, lisas, de pared delgada, 3.6-5.2 x 2.6-3.1 um, inami­loides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29268 y 29306OBSERVACIONES:el material fue determinado de acuerdo con Erikssony Ryvarden (1976) y Gilbertson (1974). C. Gómeztiene descriptas

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(en M.S.) varios materiales de esta eSpecie.

CARACTERES DE CULTIVO FOTO 65 FIGS.61—63

CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento muy lento, nocubre las cajas en 6 semanas. Capa miceliana afieltrada, blan­quecina; margenirregular, aracnoide. Reverso inalterado. Olorausente. Reacción de oxidasas: con ácido tánico +++, sin creci­miento; con ácido gálico +++, sin crecimiento; con goma de gua­yaco +.

CARACTERESMICROSCOPICOS:Micelio aéreo constituido

por hifas generativas fibuladas, muyramificadas, de pared del­gada, al principio bien teñidas con floxina, luego aparecenvacías, 1.08-3.06 um. Ademásaparecen hifas fibuladas, con con­tenido vacuolar oleoso, muyrefringente, inmersas en numerososcristales amorfos. En la tercera semanaaparecen en el miceliocercano al inóculo, algunas ‘vesículas globosas a claviformes,bien teñidas con floxina, con una fíbula en la base, 17-22 x7-10 um. Al transcurrir las semanas las vesículas se hacen másgrandes y los cristales más abundantes. Micelio sumergido forma­do por hifas generativas fibuladas, de pared delgada, regular­mente tabicadas, con muchas ramificaciones cortas, l.8-3.6 um.CLAVEPATRON: 2. 3. 13. 32. 36. 38. 47. 53. 55

CEPA ESTUDIADA: BAFC 2063 ( correSponde a BAFC 29268).

HYPHODONTIAHALONATAErikss. & Hjortst. FOTO 15

SV. bot. tidskr. 63:2 p. 227, 1969. FIGS.64—67BASIDIOCARPOresupinado, subceráceo, blanco crémeo.

Himenio liso a finamente tuberculado, cuarteándose notoriamenteal secarse. SISTEMAHIFALmonomítico, con hifas generativas fi­buladas, de pared levemente engrosada, 2.08-4.2 um diám, frecuen­temente ramificadas. CISTIDIOSde 2 tipos: 1) capitados, de pa­red delgada en la parte apical y engrosada en la basal, 27-42 x7.2-14.5 um, se proyectan-por encima del himenio; 2) moniliformes

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embebidos en el himenio, con contenido citOplasmático muy re­fringente, densamente teñido, 7-13 um diám. BASIDIOSclaviformessubcilindricos, 4-e5porados, 13-21 x 4.6-5.2 um. BASIDIOSPORASsubcilíndricas, de pared delgada, lisas, apiculadas, 4.4-6.2 x2.08-3.12 um, inamiloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29305; 29309 y 29310.

OBSERVACIONES:según Eriksson y Ryvarden (1976), los cistidiosmoniliformes poseen en el ápice un capuchón resinoso visible ala lupa, que desaparece en la preparación microscópica; en nues­tros materiales esto no se verifica, pero coinciden todos losotros elementos cn la determinación. Esta es la primera cita pa­ra el pais.

.HYPHODONTIASPATHULATA(Fr.) Parm. FIGS.68—75

ConSp. syst. cort. p.123, 1968.= HydnumSpathulatum Fr., Syst. mycol. 1:423, 1821.CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 16 FIGS.68—7O

BASIDIOCARPOresupinado, blanco crémeo a ocráceo. Hi­menio odontoide, con densas agujas de formas variadas, 1a mayo­ría achatadas, a veces cónicas o subcilíndricas, escindidas odenticuladas, apicalmente fimbriadas, hasta 2 mmde longitud.SISTEMAHIFALmonomïtico, ccn hifas generativas fibuladas, depared delgada a levemente engrosada, bien ramificadas, 2.5-4,3um diám. CISTIDIOSde'2 tipos, l) numerosas terminaciones hifa­les capitadas, 10.8-22 x 3.253.6 um; 2) cistidios moniliformescon una o más constricciones y protoplasma teñido fuertemente,3.2-4 um diám; algunas terminaciones hifales poseen el ápice a­guzado, de tipo setiforme. También aparecen grupos aislados defascículos hifales. BASIDIOSsubclavados, con una constricciónsuburniforme, 4-e5porados, 10.8-18 x 4.3-5 um. BASIDIOSPORASsubglobosas a clipsoidales, lisas, hialinas, de pared delgada,(3.6) 4.1—4.7(5.7) x 3.2_4 (4.6) um, inamiloides, acianófilas.MATERIALREPRESENTATIVO:BAFC 29277; 29290; 29317; 29347; 29348;

29349 y 29354.

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OBSERVACIONES:los materiales fueron identificados de acuerdocon Eriksson y Ryvarden (1976). Esta es la primera cita parael pais.

CARACTERES DE CULTIVO FOTOS 46-64 FIGS.71—75

CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento lento, 0.7 cm

en l semanay cubriendo las cajas en la sexta Semana. Capa mice­liana hialina al principio, tornándose luego blanquecina, suba­fieltrada, con algunas motitas afieltradas; margendifuso, arac­noide, prácticamente sumergido. Reverso inalterado. Olor imper­ceptible. Reacción de oxidasas: con ácido tánico 4, sin creci­miento; con ácido gálico ++} sin crecimiento; con goma de guaya­co + .

CARACTERESMICROSCOPICOS:micelio aéreo formado por hi­fas generativas bien fibuladas, ramificadas, 1.4-5.4 umdiám, bienteñidas con floxina, a partir de las cuales se forman vesículassubglobosas a claviformes, 9-15 x 7-13 um, muy abundantes. En al­gunas zonas aparecen hifas con inclusiones refringentes de grantamaño, que se tabican dando lugar a la formación de innumerablesartrOSporas. Ademásse forman conglomerados de cristales de todaforma y tamaño. A partir de la cuarta semana, el micelio se pre­senta totalmente aglutinado por el conjunto de vesículas, artros­poras y cristales. En algunas cajas en la zona cercana al miceliode avance se observa la presencia de hifas con numerosas ramifica­ciones cortas, del tipo de las hifas en cornamenta. Micelio sumer­gido formadopor hifas fibuladas, ramificadas, con inclusionesoleosas de gran tamaño, 2.5-5.4 um diám.CLAVEPATRON: 2. 3. 11. 26. 35. 36. 38. 46. 53. 55

CEPAS ESTUDIADAS: 2297 (BAFC 29349); 2298 (EAFC 29317); 2352

(BAFC 29354); 2407 (BAFC 29290).

HYPOCHNICIUMPUNCTULATUH(Cooke) Eriksson FOTO 17

«ymb. nor. Ups. 16:1 p.101, 1958. FIGS.76—79

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= Corticium punctulatum Cke., Grev. 6 p. 132, 1878.BASIDIOCARPOresupinado, adnato. Superficie himenial

tuberculada a lisa, blanco crémea, margen indiferenciado. SISTE­MAHIFALmonomítico, con hifas generativas fibuladas, de pareddelgada a gruesa, ramificadas, 2.6-4.6 um diám.CISTIDIOSnumero­sos, cilíndricos, hifoides, embebidoso emergiendo del himenio,de pared delgada a levemente engrosada, 50-150 x 5.2-lO.4 um; pre­sentan el protOplasma denso, amarillento, con solución de sulfo­benzaldehído dan reacción negativa. BASIDIOScilíndricos, más omenos sinuosos, 4-eSporados, 15.6—26 x 5.2-7.2 um. BASIDIOSPORASanchamenteelipsoidales a subglobosas, finamente verrugosas,depared gruesa, 1a ornamentación se disuelve en sol. de KOH-flo­xina, pero es bien evidente en azul de algodón, 5,2-6.2 x 4.6­5.2 um, inamiloides, cianófilas.MATERIALREPRESENTATIVO: BAFC 29344; 29350; 29351 y 29352.

OBSERVACIONES:los materiales coinciden plenamente con los des­criptos por Eriksson y Ryvarden (1976) y Jülich (1980). C.Gómez(en M.S.) ya lo había coleccionado e identificado en elpaís.

PENIOPHORA CINEREA (Fr.j Cooke FOTO 18

Grevillea 8 p.20, 1879. FIGS. 80-82= Theleppora cinerea Fr., Syst. mycol. I:453, 1821.

BASIDIOCARPOresupinado, adnato, delgado. Himenio li­so a suavemente tuberculado, ceráceo cuando fresco, firme y du­ro cuando seco, rosado grisáceo; margen indeterminado. SISTEMAHIFALmonomítico, con hifas fibuladas, de pared delgada, 2.1­3.1 um diám; el subículo gelatinoso constituido por una capaancha de hifas diSpuestas horizontalmente, densamente entrelaza­das. CISTIDIOSde 2 tipos, l) metuloides, numerosos, castaños,con pared engrosada, fuertemente incrustados-en el ápice, 7-10umdiám; 2) glococistidíos, escasos, de pared delgada, oblongos,

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20-30 x 5-8.8 um. BASIDIOScilíndricos, 4-eSporados, 25-30 x5.2-6.2 um. BASIDIOSPORAScilíndricas a subalantoides, lisas,hialinas, de pared delgada, 6.2-8.8 x 2.6-3.6 um.MATERIALESTUDIADO: BAFC 29322; 29332; 29353 y 29355.OBSERVACIONE°zlos materiales se identificaron de acuerdo conEriksson y Ryvarden (1978) y Punugu et al. (1980). Esta eSpecieya fue encontrada anteriormente por C.Gómez(en M.S.)

SUBULICYSTIDIUMLONGISPORUM(Pat.) Parm. FIGS.83-87

COnSp.Syst. Cortic.:121, 1968.= Hypochnuslongisgorus Pat., J. Bot. ,Paris (ed. Moret)8:22l, 1894.CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 19 -FIGS.83-84

BASIDIOCARPOresupinado, adnato, membranáceo, fácil­mente separable del sustrato, muydelgado. Superficie himeniallisa, blanco grisácea. SISTEMAHIFALmonomitico, con hifas gene­rativas fibuladas de pared delgada, 2-4.l um diám. CISTIDIOSci­lindricos, acuminados, muyabundantes , incrustados con crista­les planos rectangulares, normalmente acomodadosen hileras,30—60 x 4-5 um, proyectándose hasta 40 um del himenio.BASIDIOS cla­viformes, 4-eSporados, 15-20 x 4-5 um. BASIDIOSPORAScilindricas,rectas a levementecurvadas, hialinas, lisas, bigutuladas, sinapiculo, 6.2-8.2 x 2-2.6 um, inamiloides, acianófilas.MATERIALESTUDIADO: BAFC 29270; 29279; 29356 y 29357.

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con los descriptos porJulich (1975, 1980). Esta eSpecie fue identificada anteriormen­te por C. Gómez(en N.S.).

CARACTERES DE CULTIVO FOTO 47-66 FIGS.85—87

CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento rápido, 6 cm enuna semana, cubriendo las cajas en la segunda semana. Capa mice­liana blanquccina, subafieltrada, con zonas afieltradas cerca delinóculo; margen irregular, sumergido. Reverso inalterado. Olor

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imperceptible. Reacción de oxidasas: con ácido tánico —,sin cre­cimiento, con ácido gálico —, creciendo 0.9 cm; con goma de gua­yaco —. í

CARACTERESMICROSCOPICOS:Micelio aéreo formado porhifas afibuladas, tabicadas, bien teñidas con floxina, 2.08-3.6um diám, con paredes al principio delgadas, luego levementeengrosadas. En la tercera semanaaparecen cristales rómbicos aaciculares, normalmente numerosos. Micelio sumergido, presentalas mismascaracterísticas del micelio aéreo.CLAVEPATRON: l. 6. 7. 32. 36. 38. 42. 53. 55

CEPA ESTUDIADA: BAFC 2347 ( correSponde a BAFC 29356).

XENALHATELLATULASNELLOIDEA(v. Hohn & Litsch.) Oberw.

Sydowia, 19:34, 1965. FIG.88= Corticium tulasnelloideum v.H6hn. & Litsch.,Akad. Wiss. Wien,

Math.—nat. Kl., 11721081.BASIDIOCARPOpOCOconSpicuo, ceráceo a gelatinoso.Su­

perficie himenial lisa a finamente reticulada o hipocnoide, grisceniciento.SISTEHA HIFALmonomítico, con hifas poco diferencia­das, de pared delgada, tortuosamente entrelazadas, 1.04—3.1umdiám.CISTIDIOSno posee. BASIDIOScortamente cilindricos, birra­dicados (pleurobasidios), 4-eSporados,con esterigmas delgados, dehasta 3 um de'longitud, 15.6-18.2 x 5.2-7.3 um. BASIDIOSPORASsubglobpsas a globosas, suavemente aSperuladas, de pared delga­da, 4.1-5.2 x 3.6-4.6 um, inamiloides, acianófilasiMATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29358; 29359 y 29360.

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con los descriptos porGómez (1972).

VUILLEMINIAcozmmms (Nees :Fr.) ï-Iaire FIGS. 89-90

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Bull. Soc. Myc. Fr. 18(app. 1-209), 1902.= Thelephora comedensNesstr.

BASIDIOCARPOresupinado, efuso, ceráceo a algo ge1a—'tinoso. Superficie himenial castaño oscura, con un tinte violá­ceo; margen definido. SISTEMAHIFALmonomitico, con hifas fi­buladas, hialinas, de pared delgada, le3 um diám. HIFIDIOSnume­rosos, hialinos, simples, sin ramificar. BASIDIOSutriformes aclaviformes, 9.3-14.2 um diám, 4-eSporados. BASIDIOSPORAScilin­dricas, curvadas, lisas, de pared delgada, 9.8-15 x 4.1-5.2 um.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29289

OBSERVACIONES:el material fue determinado de acuerdo con JUlich(1980)_y Christiansen (1960).

STECCHERINUMOCHRACEUM(Pers. apud Gme1.:Fr.) S.F.Gray FOTO 2oNat. Arrang. Brit. Pl. 1:651, 1821. FIGS.91—93= sznum ochraceum Pers. apud. Gmel., Syst. Nat. 221440, 1792.

BASIDIOCARPOresupinado, blanco crémeo a ocráceo. Hi­menóforo irpicoide, con eSpinas subuladas de hasta 1.5 mmde lon­gitud. SISTEMAHIFALdimitico, con hifas generativas fibuladas, depared delgada, 2.1-2.88 um diám e hifas eSqueletales de pared en­grosada a casi sólidas, 3-4 um diám. BASIDIOSclaviformes, 4-eSpo­rados, 9-15 x 2-4 um. CISTIDIOS en la trama de los disepimentoso sobresaliendo por fuera del himenio, clavados a fusiformes,fuertemente incrustados en el ápice, 4-6.5 um diám medido sin in­crustación, poseen pared muygruesa y son particularmente abundan­tes hacia 1a porción apical de las eSpinas. BASIDIOSPORASsubglo­bosas a ovoides, apiculadas, lisas, hialinas, 2.1-3.1 x l.5-2.5 um,inamiloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29266 y 29329.

OBSERVACIONES:-e1material coincide con 1a descripción de HaasCeesteranus (1971).

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VARARIA PALLESCENS (Schw.) ROgers & Jacks. FOTO 21

Farlowia 1:309, 1943. FIGS.94—97= Thelephora gallescens Schw., Trans. Amer.Phil.Soc. II 4:167,1832.

BASIDIOCARPOresupinado, muy delgado, poco conSpicuo.Superficie himenial lisa a levemente verrucosa, ocráceo amarillen­ta; margen definido. SISTEMAHIFALmonomítico, con hifas afibula­das, 2-3 um diam. DICOHIFIDIOSabundantes en el himenio, dicotómi­camente ramificados, hasta 2 um diám. CISTIDIOS(gloeocistidios)ci—11ndricos, hifoides, con protOplasma muy denso, 2-5 um diám. BASI­DIOS cilíndricos, 2-eSporados, 3-5 um diám. BASIDIOSPORASsubglo­bosas, finamente aSperuladas, de pared delgada, apiculadas, 5.7­7.3 x 5.2-6.2 um, amiloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29265.

OBSERVACIONES:el material fue determinado de acuerdo con Parmas­to (1970) y Jülich y Stalpers (1980). Es la primera cita para el'país.

TOMENTELLAFULIC-INEA (Burt) Bourd. & Galz. FOTO 22

Bull. Soc. Mycol. France 402153, 1924. FIGS.98—100= Hypochnus fuligineus Burt, Ann. Hissouri Bot. Gard. 32232,1916.

BASIDIOCARPOefuso, débilmente adherido al sustrato, po­bremente construído, suavemente tomentoso; en fresco aparece co­mouna SUperficie aterciOpelada violáceo castaña¡ difícil de ob­servar ya que se confunde con el sustrato. Superficie himenialgranulosa a lisa, oscureciéndose en sol. de KOHal 5%; margen in­definido. SISTEMAHIFALmonomítico,con hifas generativas fibuladas;las del subículo son castañas, de pared engrosada, frecuententeramificadas, 5.2-8.8 um diám; las del subhimenio son de pared del­gada a levemente engrosada, poco ramificadas, 4.1-6.7 um diám.BASIDIOScilíndricos, 4-eSporados, con esterigmas de hasta 4 um,25-34 x 5.2-8.3 um; se desarrollan en grupos a partir de las hi­fas del subhimenio. BASIDIOSPORASglobosas a subglobosas, casta­ño rosadas, con pared levemente engrosada, aculeadas, 7.2-8.3 x6.7-8.3 um, con eSpinas largas de hasta 2.5 um de longitud.

101

MATERIAL REPRESENTATIVO: BAFC 29320; 29361; 29362 y 29363.

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con la descripción deLarsen (1968). Esta es la primera cita para el país.

COTYLIDIA AURANTIACA(Pers.) Welden FOTO 23

L10ydia 21 (l):38—44, 1958. FIGS.101-103= Thelephora aurantiaca Pers., in Gaud. Voy. Uranié Bot. 176, 1821.

BASIDIOCARPOestipitado, membranoso, solitario o en ma­nojos, amarillento brillante cuando seco, 0.4-4 x 0.5-5 cm. Pí­leo eSpatulado, flabeliforme a infundibuliforme. Superficie su­perior estriada, máso menostomentosa; superficie inferior li­sa. Estïpite cilíndrico a achatado, 1-6 x 0.1-4 cm. SISTEMAHIFALmonomítico, con hifas afibuladas, de pared-delgada, ramificadas,3-5.7 um diám. CISTIDIOScilíndricos, largos, con los ápices hin­chados, 5-9 um diám, pueden ser septados; emergen del himeniohasta 100 um. BASIDIOSsubcilindricos a claviformes, 4-e5porados,20-35 x 4-7 um. BASIDIOSPORASelipsoidales, lisas, hialinas, 6.7­7.8(8.8) x 3.6-4.l (4.6) um.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29326 y 29364.

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con los descriptos porWelden (1958). Esta eSpecie fue descripta por C.Gómez(en H.S.),quien la coleccionó e identificó en reiteradas Oportunidades.

HENNINGSOMYCESSB, FIGS.104-106BASIDIOCARPOconsistente en tubOS individuales, se­

parados unos de otros, confluyentes, blanquecinos, finamente pu­bescentes en 1a superficie externa; 500-700 um de longitud x150-200 um diám; con poro apical conSpicuo. SISTEMAHIFAL com­puesto por hifas delgadas, de pared engrosada, dicotómicamenteramificudas en la superficie externa de los tubos, 1.5-2.l um;

102

en la superficie interna de los tubos, las hifas se observantotalmente aglutinadas. BASIDIOSsubcilíndricos, 2-eSporados,7.8-13 x 3.1-5.2 um. BASIDIOSPORASno se observaron.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29299.

OBSERVACIONES:la determinación genérica se realizó de acuer­do con Gilbertson et al.(1976).

SCHIZOPHYLLUNCOHEUNEFr.:Fr. FOTO 24

Syst. Mycol. 1:330, 1821 FIGS.lO7—108= Schizophyllus communeFr., Obs. Mycol. 1:103, 1815.

BASIDIOCARPOflabeliforme, solitario a densamente im­bricado, sésil o adherido al sustrato por una base angosta queen algunos casos puede llegar a ser un estipite elongado; margenfestoneado a levemente escindido o bien hendido. Superficie delpíleo villosa, blanquecina cuando fresca, grisácea cuando seca,1-3 x 1-4 x O.3—O.8cm. Contexto hasta 5 mmde eSpesor, hialinoa castaño. Himenóforo formado por ramas himenoforales (2 a 16),adyacentes, que constituyen pseudolaminillas, blanco grisáceas,hirsutas. SISTEMAHIFALmonomitico, con hifas fibuladas, de pa!red delgada a gruesa, 2.5-6 um diám. BASIDIOScilindricos, 4-eSpO—rados, 15-20 x 3-4 um. BASIDIOSPORASelipsoidales a cilindricas,lisas, apiculadas, 4-7.5 x l.5—2.5 um; eSporada blanca. PESOSABHIMENIALEShialinos a levemente castaños, 3.5-5.5 um diám,conpared gruesa; en el margen son hialinos, de pared delgada,simples o bifurcadoszMATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29323 y 29365.OBSERVACIONES:los materiales se determinaron de acuerdo conBridge Cooke (1961).

PHELLINUSGILVUS (Schw.) Pat. FIGS. 109-117

Essai tax. p. 97, 1900.

103

= Boletus gilvus Schw., Fungi Carol. Super. II:70, 1822.

CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 25 FIGS.109—111

BASIDIOCARPOanual, aplanado demediado, efuso-reflejoo totalmente resupinado, solitario o imbricado, corchoso, 2-8 x2-4 x 0.2-2 cm. Superficie del píleo lisa, aterciOpelada cuandojoven, luego glabra, surcada, concéntricamente zonada, ocrácea acastaño rojiza; margen agudo, algo ondulado, más claro que 1a su­perficie del pileo. Contexto castaño, corchoso, fuertemente xan­tocroico, hasta 2 mmde eSpesor. HIEENOFOROtubular, con tuboshasta 5 mmde longitud; poros 8-9 por mm, concoloros con el con­texto, circulares, enteros. SETASfusiformes, subuladas, con labase inflada, castañas, con pared muygruesa, 20-26 x 4-6 um, amenudo proyectándose sobre el himenio. SISTEMAHIFALdimitico,con hifas generativas afibuladas, delgadas, bien teñidas confloxina, ramificadas y tabicadas regularmente, 2.08-3.l umdiám,e hifas eSqueletales castañas, de pared engrosada y recorridorecto, 3.1-6 um diám. BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados, con es­terigmas cortos, 10.4-14 x 4.1-5.2 um. BASIDIOSPORASelipsoidales,hialinas, lisas, 3.1-3.6 x 2.6-3.1 um, inamiloides, acianófilas.MATERIAL REPRESENTATIVO: BAFC 29295; 29367 y 29371.

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con los descriptos porWright et al. (inédito).

CARACTERESDE CULTIVO FOTOS 48-67 FIGS.ll2—117

CARACTERESEACROSCOPICOS:crecimiento muy lento, 1.5cm en una semana, no llegando a cubrir las cajas en la sexta se­mana. Capa miceliana algodonosa, blanca al principio, tornándoseluego crémeo-amarillenta en algunas zonas. Margenirregular, arac­noide. Reverso castaño. Olor ausente. Reacción de oxidasas: conácido tánico ++++, sin crecimiento; con ácido gálico +++++, sincrecimiento; con goma de guayaco +.

CARACTERESHICROSCOPICOS:Micelio aéreo constituido porhifas generativas afibuladas, bien teñidas con floxina, de pared

104

delgada, 2.08-4.l umdiám, ramificadas frecuentemente, algunasmuyretorcidas y sinuosas; hifas fibrosas de pared engrosada yrecorrido más o menos recto, 2.08-5.4 um diám; vesículas termi­nales o intercalares, de pared engrosada, 5.2-7.7 umdiám, gene­ralmente globosas. Se observan además abundantes cristales róm­bicos. A partir de la cuarta semanalas hifas aparecen inmersasen exudado castaño y se forman zonas de plecténquima laxo, cons­tituido por hifas ramificadas, muytabicadas en segmentos cortos,con paredes engrosadas. Kicelio sumergido formado por hifas afi­buladas de pared delgada a gruesa, 2.08-3.6 um diám, ramificadas,muyretorcidas.CLAVEPATRONz2. 6. 8. ll. 32. 37. 39. 47. 53. 55

CEPAS ESTUDIADAS: 650 (BAE-‘C29295) y 2237 (BAFC 29367).

GANODERMASUBAMBOINENSEP. Henn. FIGS. 118-130

Fungi amazonici I. Hedwigia 432175, 1904. (sub Fomes (Ganoderma)subamboinense).

CARACTERBSDEL BASIDIOCARPO FOTOS 26-27 FIGS. 118-123

BASIDIOCARPOanual, estipitado, flabeliforme, solitarioa varios píleos concrescentes, 3-7 x 2-5 x O.2-1.5 cm. Superficiedel pílco radialmente rugosa, concéntricamente surcada, castañorojiza oscuro; aclarándose hacia el margen; margenestéril, agu­do, con ondulaciones. Pie delgado, castaño oscuro, cilíndrico,lacado, 1.5-3 x O.5—2cm. Cutis delgado, negro brillante. Contex­to hasta 1 cm de eSpesor, blanquecino, corchoso. Himenodermis com­puesta por elementos claviformes de pared gruesa y extremos romos,5-10 um diám, cubierta por una capa de laca que se disuelve ensolución caliente de KOHal 5%, 15-30 um de grosor. Himenóforotubular, con tubos de hasta 4 mmde longitud; poros 4-7 por mm,circulares. SISTEMAHIFALtrimitico, con hifas generativas fibuladas,ramificadas, con pared delgada, 1-3 um diám; hifas e5que1eta1esde pared engrosada, casi sólidas, 3-8 umdiám., e hifas ligadoras

105

hialinas, muyramificadas, con paredes engrosadas, 1-3 um diám.BASIDIOSsubglobosos, 4-eSporados, 9-13 x 7-14 um. BASIDIOSPO­RASanchamente elipsoidales, con el ápice truncado, suavementeaSperuladas,6.7-8.3 x 4.1-5.7 um, con periSporio hialino, del­gado, y endosporio castaño claro, grueso; inamiloides, acianó­filas. GASTEROSPORASabundantes en el contexto y disepimentos;se originan de hifas vegetativas con contenido denso, subesféri­cas, de pared engrosada, lisas, 7-14 x 6-12 um.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29294

OBSERVACIONES:el material fue determinado de acuerdo con

Bazzalo y Wright (1982).

CARACTERESDE CULTIVO FOTOS 49-68 FIGS. 124-130

CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento rápido, 3 cm en.una semana, cubriendo las cajas en 1a segunda semana. Capa mi­celiana blanca al principio, luego aparecen zonas ocráceo ama­rillentas. Textura afieltrada con zonas farinosas al principio;luego se hace totalmente farinosa; margen regular. Reverso inal­terado. Olor imperceptible. Reacción de oxidasas: con ácidotánico +++, sin crecimiento; con ácido gálico ++++, sin creci­miento; con goma de guayáCo + .

CARACTERESEICROSCOPICOs: Kicelio aéreo formado porhifas generativas fibuladas, regularmente ramificadas, 2.08-3.1um diám. A partir de la segunda semana aparecen: l) hifas encornamenta, con ramifiicaciones cortas, generalmente dicotómicas;2) hifas fibrosas, afibuladas, muydelgadas y ramificadas, conpared engrosada, 1-2 umdiám; 3) células cuticulares hialinas,que forman un pseudoparénquima;4) clamidOSporas dextrinoides, glo­bosas a elipsoidales, con pared engrosada, castaña, y contenidooleoso bien teñido con floxina, 9.8-17 x 8.3-14 um; 5) hifas fi­brosas con aSpecto de rosario, con paredes engrosadas y expansio­nes regulares. En las zonas de micelio coloreado, las célulascuticulares poseen las paredes castañas y forman un pseudoparén­quima apretado, reSponsable de la coloración observada. Hicelio

106

sumergido formadopor hifas generativas fibuladas, sinuosas,2-4 um diám; también se observan clamidOSporas y células cuti­culares semejantes a las del micelio aéreo.CLAVEPATRON:2. 3. 8. lO. 34. 36. 37. 39. 42. 53. 55CEPA ESTUDIADA: DAFC 635

ANTRODIARAMENTACEA(Berk. & Br.) Donk FIGS. 131-138

Persoonia 4:339, 1966.= Polyporus ramentaceus Berk. & Br., Ann. Mag. Nat. Hist.5:2lO, 1879.

CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 28 FIGS. 131-133

BASIDIOCARPOanual, resupinado, formando-fructificacio­nes circulares, pequeñas; margendefinido, regular, estéril.Su—perficie himenial blanco crémea cuando fresca, castaña al secar­se. Poros 1-3 por mm, grandes, subpoligonales. Contexto hasta 1 mmde eSpesor. Tubos hasta 5 mmde longitud, enteros o lacerados. Con­sistencia cartilaginosa coriácea. SISTEMAHIFALdimitico, con hi­fas generativas fibuladas, ramificadas, de 2 tipos: l) delgadas,con pared delgada uniforme, 2.1-3.l um diám; 2) anchas, con pare­des engrosadas irregularmente, con luz sinuosa, teñibles con flo­xina, 3.1-10.9 umdiám; e hifas eSqueletales poco frecuentes,2.1-3.1 um diám, con paredes engrosadas o luz totalmente ocluída.BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados, con esterigmas de hasta 5 umde longitud, 13.5-18.7 x 4.1-5.7 um. BASIDIOSPORAScilíndricas,apiculadas, hialinas, lisas, de pared delgada, 6.2;7.8 x 2.1­2.6 um, inamiloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29297

OBSERVACIONES:el material coincide con el descripto por Ryvarden(1976) y Rajchenberg (1982).

CARACTERESDE CULTIVO FOTOS 50-69 FIGS. 134-138

CARACTHRESMACROSCOPICOS:crecimiento lento, 0.5 cm en

107

una semana, apenas cubriendo las cajas en 1a sexta semana. Capamiceliana blanca, con algunas zonas castañas, subafieltrada; mar­gen hialino, regular. Reverso inalterado. Olor ausente. Reacciónde oxidasas: con ácido tánico -, sin crecimiento; con ácido gá­lico -, sin crecimiento; con goma de guayaco - .

CARACTERESHICROSCOPICOS:Micelio aéreo formado porhifas generativas fibuladas, de pared delgada a levemente engro­sada, 2-4 um diám; se observan además hifas fibuladas con paredesirregularmente engrosadas, l.5—4.5 um diám, con luz sinuosa acasi sólidas, e hifas fibrosas afibuladas, poco ramificadas , conpared engrosada, 1.5-2.5 um diám. Aparecen numerosos cristalespoliédricos. En las zonas castañas las hifas fibuladas poseen con­tenido citOplasmático castaño, que le confiere la coloración almicelio. Micelio sumergido formado por elementos similares a los_del micelio aéreo.CLAVEPATRON:l. 3. 8. 9. 32. 36. 38. 47. 50. 55CBPA ESTUDIADA: BAFC 719

CORIOLUSVILLOSUS(Sw.:Fr.) N.Bond. et Herrera FIGS.139—145Novitares Systematicae Plantarum non Vascularium 16:50,1979.= Polyporus villosus Sw:Fr., Syst. dycol. 1:344. 1821.CARACTERESDEL BASIDIOCARPO FOTO 29 FIGS.139-l42

BASIDIOCARPOanual, resupinado a efuso'reflejo con pí­leo demediado, aplanado, incurvado hacia el margen, solitario aimbricado. Superficie del píleo concéntricamente zónada, con ban­das glabras a subhirsutas, crémeas a castaño oscuras; margen re­gular, estéril. Contexto delgado, hasta 10 umde eSpesor, coriá­ceo a corchoso. Himenóforo tubular, con tubos hasta 1.5 mmde lon­gitud; poros 2-3 por mm, angulares. SISTEMAHIFALtrimítico,conhifas generativas fibuladas, de pared delgada, l-3.6 umdiám; hifasesqueletales de pared engrosada, con luz escasa a nula, 1.5-4 umdiám e hifas ligadoras afibuladas, de pared engrosada, 1-4.5 um

108

diám. BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados, 8.8-20 x 2.6-5.7 um,con esterigmas curvos de hasta 5 um de longitud. BASIDIOSPORAScilíndricas, lisas, hialinas, apiculadas, de pared delgada, 5.2­8.3 x 2.1-3.6 um.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29345 y 29366.

OBSERVACIONES:el material fue determinado de acuerdo con Raj­chenberg (1982).

CARACTERES DE CULTIVO FOTOS 51-70 FIGS.143—145

CARACTBRESMACROSCOPICOS:crecimiento rápido, 6 cm

en una semana, cubriendo las cajas en 1a segunda semana. Capa mi­celiana blanca, densamente afelpada, con e1 tiempo adquiere textu­ra de yeso, salvo en el inóculo y el margen, que permanecen afel­pados; margen regular. Reverso blanqueándose desde el inóculo ha­.cia el margen. Olor ausente. Reacción de oxidasas: con ácido tá­nico ++++, creciendo 2 cm; con ácido gálico ++++, sin crecimiento;con goma de guayaco + .

CARACTERESMICROSCOPICOS:Micelio aéreo formado por:1) hifas generativas fibuladas, de pared delgada, poco ramifica­das, delgadas a anchas, l.8—6.3 um diám; 2) hifas fibrosas rami­ficadas, de pared delgada, con luz Visible, 1-3 um diám; 3) hi­fas fibrosas, sin ramificar, casi sólidas, 1-4 umdiám. Miceliosumergido constituifo por los mismoselementos del micelio aéreopero menos abundantes.CLAVE PATRON: ‘2. 3. {3. 32. 36. 4o. 42. 51. 53. 55CEPAS ESTUDIADAS: BAFC 474 (correSponde a BAFC 29345) y BAFC531 (correSponde a BAFC29366). i

JUNGHUHNIACONPLICATASp. nov. FIGS. 146-155CARACTERESDEL BASIDIOCARPO FOTOS 30-31 FIGS. 146-150

BASIDIOCARPOanual, aplanado, muy delgado, demediado aanchamenteadherido al sustrato, solitario a densamenteimbrica­do, flexible, muyliviano. Superficie del píleo glabra, concén­tricamente surcada, azonada, blanquecina cuando fresca, crémeo

109

amarillenta cuando seca, 1-6 x 0.5-3 x O.1—0.2 cm. Margen agudo,liso a corrugado. Contexto corchoso, crémeo amarillento, hasta1 mmde eSpesor. Himenóforo tubular, con tubos cortos, de hastal mmde longitud; poros 4-6 por mm,circulares a angulares, elon­gados en las zonas resupinadas en donde adquieren aspecto deda­1oide. SISTEMAHIFALdimitico, con hifas generativas fibuladas, depared muygruesa en el contexto, levemente engrosada en el subhi­menio, 2-5.7 umdiám, e hifas esqueletales de pared gruesa, conluz casi ocluída, 3-5.7 um diám. CISTIDIOSnormalmente numerosos,embebidos en 1a trama de los disepimentos o proyectándose apenassobre el himenio; poseen paredes engrosadas y la porción apicalincrustada con cristales que se disuelven lentamente en sol. deKOHa1 5%, 3.6-5.2 um diám. BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados,10-15 x 6-8 um, con esterigmas de hasta 3 um de longitud. BASI­DIOSPORASglobosas a anchamente elipsoidales, lisas, hialinas, depared delgada, 3.6-4.6 x 3.1-3.6 um, inamiloides, acianófilas.MATERIALREPRESENTATIVO:BAFC 29333; 29334; 29335; 29337; 29372;

29373; 29374;28949 y 28950.OBSERVACIONES:aunque no se han descripto anteriormente eSpeciespileadas dentro de Junohuhnia Corda, el sistema hifal dimitico,los cistidios incrustados, la pudrición blanca que provoca, son,entre otros, factores que determinaron la inclusión de esta es­pecie en el género según lo define Ryvarden (1972218). Además,un ejemplar pileado estéril fue descripto por Ryvardeny Johan­sen (1980:391)-.

CARACTERESDE CULTIVO FOTOS 52-71 FIGS.151-155CARACTERESHACROSCOPICOS:crecimiento moderadamente

rápido, 2 cm en una semana, cubriendo las cajas en la tercera se­mana. Capa miceliana subafieltrada, con vastas zonas de micelioblanco afieltrado; margen aracnoide. Olor imperceptible. Reversoinalterado. Reacción de oxidasas: con ácido tánico +++, sin cre­cimiento; con ácido gálico ++++, sin crecimiento; con gomadeguayaco +.

110

CARACTERESMICROSCOPICOS:Micelio aéreo constituido

por: 1) hifas generativas fibuladas delgadas, bien teñidas confloxina o hialinas, de pared delgada, 1.5-2.6 umdiám; 2) hifasgenerativas fibuladas gruesas, con contenido vacuolar muyrefrin­gentes, de pared delgada, 2.08-3.6 umdiám; 3) hifas generativassemejantes al tipo 1, pero con muchasramificaciones cortitas;4) hifas eSqueletales de pared engrosada y recorrido recto, 2.08­4,1 um diám. En las zonas de micelio con contenido vacuolar seforman artrOSporas a partir de la tercera semana, en número bas­tante variable según sea 1a caja estudiada. En las zonas de mi­celio blanco densamente afieltrado, se forman numerosísimos cris­tales que cuando se acomodana lo largo de las hifas, éstas pa­recen ser cistidios incrustados. Micelio sumergido formadoporhifas generativas fibuladas, ramificadas, l.8—2.8 umdiám, si­nuosas, predominan aquellas que poseen muchas ramificaciones cor­tas.CLAVEPATROsz. 3. 8. 12. 35. 36. 38. 43. 53. 55CEPAS ESTUDIADAS: 2302 (BAFC 29373); 2438 (BAFC 29337); 2444 (BAFC

29372) y 2453 (BAFC 29372).

LENZITES ACUTA Berk. FIGS.156-164

in Hooker, London, Journ. Bot. 1:146, 1842.= Lenzites submurina Hurr. in Bull. Torr. Bot. Cl. 35:416, 1908.

CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 32 FIGS. 156-159

BASIDIOCARPOanual a perenne, pileado, anchamente adhe­rido al sustrato o demediado con una base más o menos angosta.Pílco semicircular a flabeliforme, 5-10 x 6-8 x 3-4 cm, leñosocuando seco. Superficie del píleo ¿labra, azonada, ocráceo pá­lida a castaño grisácea; margen incurvado, agudo, más oscuro,entero a lobado. Himenóforo tubular, con tubos de hasta 1 cm delongitud, concoloros con la superficie del píleo; poros (4)—5-(6)

111

por mm,angulares, en algunas zonas dedaloides. Contexto cré­meo, leñoso, hasta 1.5 cm de eSpesor. SISTEMAHIFALtrimitico,con hifas generativas fibuladas, 2-3.6 umdiám; esqueletales depared levemente engrosada y recorrido recto, 2.08-4.7 um diám yligadoras profusamente ramificadas, muyabundantes, sólidas,3-5.2 um diám. BASIDIOSanchamente claviformes, 4-eSporados,9.8­13 x 5.2-6.2 um. BASIDIOSPORAScilíndricas, 6.2-7.3(7.8) x 2.08­2.6 (3.1) um, lisas, apiculadas, hialinas, de pared delgada,ina—miloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29342

OBSERVACIONES:esta eSpecie fue determinada de acuerdo con Ry-­varden y Johansen (1980). Es la primera cita para el país.

CARACTERBSDE CULTIVO FOTOS 53-72 FIGS.160-164

CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento moderadamente

rápido, 3 cm en una semana, cubriendo las cajas en la tercera se­mana. Capa miceliana blanca, afieltrada cerca del inóculo, algodo­nosa hacia el margen, bien levantada de la superficie del agar;margen irregular, algodonoso. Reverso inalterado. Olor de frutasmaduras. Reacción de oxidasas: con ácido tánico -, creciendo 4cm; con ácido gálico —, creciendo 2.4 cm; con goma de guayaco -.

CARACTERESMICROSCOPICOS:Micelio aéreo formado porhifas fibuladas, de pared delgada a gruesa, 1.08—2.6 um diám,ramificadas, bien teñidas con floxina al principio, luego hia­linas,e hifas fibrosas, de pared gruesa, l.5—2.9 umdiám, con p0­cas a ninguna ramificación. Las hifas se encuentran rodeadas deabundantes cristales amorfos. Micelio sumergido formado por hi­fas fibuladas, de pared delgada, l.8-3.6 umdiám.CLAVEPATRON: l. 8. 32. 36. 38. 43. 50. 55CEPA ESTUDIADA: BAFC 2435

PYCNOPORUSSANGUINI-IUS(L.:Fr.) Murr. FIGS. 174-183.

112

Bull. Torr. Bot. Club, 31:421, 1904.= Polyporus sanguíneus L: Fr., Syst. Mycol. 12371. 1821.

CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 33 FIGS. 174-175

BASIDIOCARPOanual, solitario a varios pileos super­puestos, demediadoa flabeliforme, adherido al sustrato por unabase angosta o por un pseudOpie, delgado, coriáceo cuando fres­co, duro cuando seco, l.5—3 x 1.5-6 x O.3—O.9cm. Superficie delpileo anaranjado rojizaW frecuentemente zonada, velutina cuandojoven, luego glabra y brillante; margenagudo, sin borde estéril,entero a escotado. Contexto grueso, con zonas con distintos tonosde anaranjado, O.5—7mmde eSpesor, oscureciéndose levemente ensol. de KOHal 5%. Himenóforo tubular, con tubos de hasta 3 mmdelongitud, concoloros con la superficie del pileo; poros redondos,

.4-6 por mm. SISTEMAHIFALtrimitico, con hifas generativas depared delgada, fibuladas, ramificadas, 1.5-3.5 umdiám; esquele­tales no muyabundantes, con paredes engrosadas, 2.6-6.1 um diám;e hifas ligadoras muyfrecuentes, ramificadas, casi sólidas,1—3.lum diám. BASIDIOS claviformes, 4-eSporados, 10.3-13 x 3.1-5.2 um.BASIDIOSPORAScortamente cilindricas a ovoides, lisas, hialinas,4-5.1 x 1.8—2.8um, inamiloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29341

OBSERVACIONES:el material coincide con la descripción de Wrightet a1.( 1976-1977).CARACTERESDE CULTIVO_ FOTOS 54-74 FIGS. 176-188

CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento moderadamenterápido, 3-4 cm en una semana, cubriendo las cajas en la tercerasemana. Capa miceliana algodonosa al principio, luego se hacefarinosa en algunas zonas y algodonosa muyapretada en otras,la diSposición de estas texturas determina una zonación concén­trica radial. Las zonas farinosas son blancas, las algodonosaspueden ser hialinas, blanquecinas, o presentar una amplia gamadeanaranjados, que van desde el anaranjado claro hasta un anaran­jado rojizo casi escarlata; margendifuso. Reverso inalterado.

113

Olor de frutas maduras. Reacción de oxidasas: con ácido tánico+++, creciendo hasta 2 cm; con ácido gálico +++++, sin creci­miento; con goma de guayaco + .

CARACTERESEICROSCOPICOS:Micelio aéreo formado por hi­fas fibuladas, de pared delgada, bien teñidas con floxina, 1.8­5.9 um diám, muy ramificadas; hifas generativas muy delgadas,que forman un denso entrelazado, O.7-1.8 um diám; hifas esque­letales con luz escasa a casi sólidas, 1.08—2.l4 umdiám; artros­poras muyabundantes,elipsoidales, 3.6-4.6 x l.4—2.l um; clamidos­poras muyescasas o ausentes, con pared engrosada, elipsoidalesa ovoides, 6.8-9 x 4.3-7.5 um. En general las artrOSporas y cla­midOSporasaparecen en las zonas de color anaranjado intenso; ade­más se observan numerosos cristales poliédricos a amorfos. Hice­lio sumergido formado por los mismos elementos del micelio aéreo

_pero con menor prOporción de hifas fibrosas.CLAVEPATRON:2. 3. 8. 34. 35. 36. 38. 42. 43. 53. 55CEPA ESTUDIADA: BAFC 2387

RIGIDOPORUS SANGUINOLENTUS(Alb.& Schw.:Fr.) Donk FOTO 34

Perssonia 4(3):34l, 1966. FIGS.165—166= Boletus sanguinolentus A1b.&Schw., ConSp. Fung. nisk.,p.257,1805.

BASIDIOCARPOanual, efuso, levantándose hacia el mar­gen, fácilmente separable del sustrato, membranoSo.Superficie hi­menial castaño clara cuando fresca, oscureciéndose al secarse; con­sistencia leñosa frágil. Tubos hasta 0.8 mmde longitud; poros 5-7por mm, irregulares a isodiamétricos, lacerados. SISTEMAHIFALmo­nomitico, con hifas generativas afibuladas, tabicadas, de pareddelgada a levemente engrosada, regularmente ramificadas, 3.1-6 umdiám. BASIDIOSclaviformes, 4-e5porados, 10.4-13 x 5.2-6.2 um, conesterigmas de hasta 2.6 um de longitud. BASIDIOSPORASglobosas asubglobosas, apiculadas, hialinas, de pared delgada, 3.6-5.7 x3.6-4.6 um, inamiloides, acianófilas.

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MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 28042; 29375 y 29403.

OBSERVACIONES:los materiales fueron identificados por Rajchen­berg (1982).

RIGIDOPORUSZONALIS (Berk.) Imazeki FIGS. 167-173

Bull. Govt. For. Expt. 8ta., Tokyo 57:119, 1952.= Polyporus zonalis Berk., Ann. nat. Hist. 10:375, 1842.

CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 35 FIGS. 167-168

BASIDIOCARPOanual a bianual, solitario a muy imbrica­do, corchoso tenaz cuando fresco, leñoso al secarse. Demediadoaconchado o totalmente resupinado a efuso reflejo, 1-6 x 2-4 x 0.5­2 cm. Superficie del píleo concéntricamente surcada y zonada, condistintos tonos de castaño anaranjado; margen agudo, recurvado ha­cia abajo, con una banda estéril de hasta 2 mm.Contexto castañoclaro, hasta 6 mmde eSpesor. Himenóforo tubular, con tubos hasta5 mmde longitud, asalmonados cuando frescos, castaños cuando se­cos; poros 8-10 por mm, circulares a angulares. SISTEMAHIFAL mo­nomítico, con hifas afibuladas, de pared delgada a levemente en­grosada, 2.08-6.2 um diám. BASIDIOSsubglobosos, 4-eSporados, 11.4­13 x 6.7-8.8 um. CISTIDIOS metuloides, aparecen como terminacio­nes hifales de pared gruesa y luz visible, más o menosincrusta­dos con cristales amorfos a poliédricos que se disuleven en sol.de KOHal 5%, 9.3-12.4 um diám, se los observa en la trama de lostubos o sobresaliendo por encima del himenio. BASIDIOSPORASglobo­sas, apiculadas, lisas, hialinas, de pared delgada, 4.6-5.2 umdiám, inamiloides, acianófilas.MATERIALESTUDIADO: BAFC 29376; 29377; 29324 y 29378.

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con los descriptos porWright et al. (1975).

CARACTPRÚ? DE CULmIVO FOTOS 55-73 FIGS.169—173

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CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento moderadamente

rápido, 2.5 cm en una semana, cubriendo las cajas en la tercerasemana. Capa miceliana blanca, algodonosa alrededor del inóculo,afelpada hacia el margen, formándose zonaciones irregulares co­lor crémeo, bien levantadas del agar, con bordes definidos y li­neas que semejan nervaduras; margen definido. Reverso inalterado.Olor ausente. Reacción de oxidasas: con ácido tánico de —a ++,sin crecimiento; con ácido gálico de - a +, sin crecimiento; congoma de guayaco - ; la reacCión es muy variable según sea 1a ce­pa estudiada , de cualquier modoes bastante débil.

CARACTERESMICROSCOPICOS:Nicelio aéreo constituido

por: 1) hifas afibuladas, tabicadas, de pared delgada, ramifica­das, l.5—3.2 umdiám.; 2) hifas afibuladas gruesas, ramificadas,5.4-7.2 umdiám; 3) hifas con algunas constricciones, de pared

.engrosada y luz bien teñida con floxina, 5.4-7.2 um diám, que da­rán origen a las hifas en rompecabezas; 4) hifas que forman unpseudoparénquima de paredes engrosadas, diSpuestas como en un rom­pecabezas; 5) acantofisas, que se originan de hifas infladas enel ápice, concentradas principalmente en las zonas de micelio cré­meo sobresaliente del agar; son de diferentes tamaños, y están cu­biertos por protuberancias romas, refringentes, no colorables,mientras que el cuerpo de la acantofisa posee contenido que Setiñe bien con floxina. Micelio sumergido formado por hifas afi­buladas, ramificadas, l.5—7.2 um diám, rodeadas de abundantes cris­tales amorfos[CLAVEPATRON:(1). 2. 6. 8. 1o. 13. 32. 36. 38. 43. 53. 55

CEPAS ESTUDIADAS: 654 (BAFC 29376); 2002 (BAFC 293é4); 2011 (BAFC

29377) y 2458 (BAFC 29378).

SCHIZOPORACARNEO-LUTEA(Rodw.& Clel.) Kotl.& Pouz. FIGS.183-190

Ceská Mykol. 33(1) : 21, 1979.= Poria carneo-lutea Rodw.&Clel., Papers Proc. Roy. Soc. Tasmaniap.18, 1929.

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CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 36 FIGS.183—186

BASIDIOCARPOanual, efuso, totalmente adherido al sus­trato; margenestéril, difuso a definido, miceliano a afelpado.Superficie himenial crémea cuando fresca, castaño clara a1 se­carse; consistencia corchosa. Poros 4-6 por mm,circulares, an­gulares o dedaloides. Tubos hasta 3 mmde longitud. Contextohasta 1.5 mmde eSpesor. SISTEMAHIFALdimitico, con hifas gene­rativas fibuladas, ramificadas, de paredes delgadas a ligeramenteengrosadas, 2.08-3.1 um diám; algunas se ensanchan formando ve­sículas esféricas a ovoides, 4.2-6.3 x 4.6-9.8 um; e hifas eSque­letales de pared engrosada y recorrido recto, sin ramificaciones,2.6-4.1 umdiám. Generalmente las hifas están cubiertas por pe­queños cristales en forma de macla. CISTIDIOSfusoides a 1ageni­formes, a veces incrustados, lO.4-16 x 3.6-7.2 um;b extremos hi­

'fa1es fusoides o capitados que sobresalen del himenio. BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados, 10.4-13 x 3.1-4.1 um. BASIDIOSPORASanchamenteelipsoidales a subglobosas, lisas, hialinas, apicula­das, de pared delgada, 3.1-3.6 x 2.6-3.1 um, inamiloides, acianó­filas.MATERIALREPRESENTATIVO:BAFC 29280; 29379; 29380; 29381; 29382;29383; 29383 y 28350.OBSERVACIONES:los materiales fueron determinados de acuerdo conRajchenberg (1982).

CARACTERES DE CULTIVO FOTOS 56-75 FIGS.187—190

CARACTERESúACROSCOPICOS:crecimiento moderadamente

rápido, 2.5 cm en una semana, cubriendo las cajas en la tercerasemana. Capa miceliana blanca, afieltrada, con una tenue zonaciónconcéntrica; margendifuso, aracnoide. Reverso inalterado. Olorimperceptible. Reacción de oxidasas: con ácido tánico +++, sincrecimiento; con ácido gálico +++, sin crecimiento; con gomadeguayaco + .

CARACTERESMICROSCOPICOS:Micelio aéreo formado por

hifas fibuladas, ramificadas, de pared delgada, 1.8-4.3 umdiám.,

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bien teñidas con floxina, algunas muytortuosas; estas hifasdan origen a gran cantidad de vesículas terminales, a modo deramificaciones, subglobosas a globosas, con contenido refringen­te, 7.2-17 x 5.4-9 um; se observan además numerosos cristalesrómbicos a amorfos. Micelio sumergido constituido por hifasfibuladas, 2-4 um diám, muy retorcidas sobre si mismas, con nu­merosas ramificaciones de tipo vesicular.CLAVEPATRON:2. 3. 7. 26. 32. 36. 38. 43. 53. 55

CEPAS ESTUDIADAS: 596 (BAFC 29380) y 2032 (BAFC 28350)

SCHIZOPORAPARADOXA(Schrad.:Fr.) Donk FOTO 37

Persoonia 5:76, 1967. FÏGS.192—193= denum paradoxum Schrad.:Fr., Syst. Mycol. 12424, 1821

BASIDIOCARPOanual, efuso, bien adherido al sustrato;margenirregular, miceliano a farinoso. Superficie himenial blan­co crémea cuando fresca, crémea a castaña cuando seca; consisten­cia corchosa, frágil. Poros irregulares, 2-3 por mm.Contexto has­ta 0.2 mm. Tubos cortos, hasta l mmde longitud. SISTEIA HIFALdimitico, con hifas generativas fibuladas , de pared delgada,ramificadas regularmente, 1.6-3.1 umdiám e hifas eSqueletales derecorrido recto, con paredes levemente engrosadas, 2.08-4.l umdiám. Al igual que en g. carneo-lutea se presentan vesículas glo­bosas formadas por ensanchamiento del extremo apical de algunashifas, 4.2-5.2 x 4.1-4.6 um , y numerosos cristales en forma demacla. CISTIDIOSo extremos hifales fusoides, lageniformes ocapitados, incrustados o no, 13-26 x 2.6-5.2 um, embebidos o emer­giendo del himenio. BASIDIOSclaviformes, 4-esporados, 13-16 x3.6-4.5 um. BASIDIOSPORASanchamente elipsoidales, apiculadas, depared delgada, lisas, hialinas, gutuladas, 4.1-4.6 x 3.1-3.6 um,inamiloides, acianófilas.MATERIALREPRESENTATIVO: BAFC 29296; 29300, 29385 y 29386.

OBSERVACIONES:estrechamente vinculada con É. carneo-lutea, se

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distingue de ella por poseer eSporas más grandes y poros dediámetro mayor. Los materiales fueron determinados por Rajchen­berg (1982).

SKELETOCUTISNIVEA(Jungh.) Keller var. diluta Raj. FIGS.194—202Mycotaxon 16(2) :503, 1983.= Polyporus niveus Jungh., Verh. Batav. Genootsch 17248,1839

CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 38 FIGS.194—197

BASIDIOCARPOanual, resupinado a efuso reflejo; mar­gen estéril, definido. Superficie himenial crémea cuando fresca,castaño amarillenta al secarse;consistencia corchoáo tenaz. Poros5-7 por mm, isodiamétricos. Contexto crémeo, hasta 1 mmde eSpe­sor. Tubos cortos, hasta l mmde longitud, concoloros con la su­perficie himenial. SISTEMAHIFALtrimítico, con hifas generati­vas fibuladas, de pared delgada a engrosada, con luz sinuosa 1.5­4 umdiám.; hifas eSqueletales de recorrido recto, sin ramifica­ciones, 3.5—4.8 um diám., amiloides, se diluyen en sol. de KOHal 5%; e hifas ligadoras profusamente ramificadas, con paredes to­talmente engrosadas, 2.6-3.6 umdiám. Sobre las hifas se deposi­tan grandcs cantidades de cristales amorfos. BASIDIOSclavifor­mes, 4-eSporados, 7-8 x 3.1-3.6 um. BASIDIOSPORASalantoides,hialinas, lisas, de pared delgada, muypequeñas, 2.6-3.6 x 0.3­0.5 um, inamiloides, acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 27657.

OBSERVACIONES:esta eSpecie fue determinada por Rajchenberg (1982)

CARACTERESDE CULTIVO FOTOS 57-76 FIGS.198-202

CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento rápido, 3.5 cmen una semana, cibriendo las cajas en la segunda semana. Capamiceliana blanca a crémea, subafieltrada, muyirregular, con zo­nas de escaso micelio aéreo. Fructifica rápidamente, a partir de

119

la tercera semanase distinguen zonas algodonoso afelpadas blan­co ocráceas, donde se pueden observar a simple vista los porosque incrementan su tamaño en forma notoria al cabo de 6 semanas;margen regular. Reverso inalterado. Olor ácido frutal. Reacciónde oxidasas: con ácido tánico +++, creciendo 2 mm; con ácido gá­lico ++++, sin crecimiento; con goma de guayaco + .

CARACTERESHICROSCOPICOS:Micelio aéreo formado por:l) hifas generativas fibuladas, de pared delgada, l.4—2.5 umdiám.,ramificadas regularmente, que luego dan lugar a hifas fibuladascon engrosamientos irregulares, l.4—3;2 umdiám; 2) hifas fibro­sas, de pared engrosada, l.44-3.6 um diám, que se disuelven ensol. de KOHal 5%y se ven bien evidentes en azúl de algodón; 3)hifas esqueletales anchas, 4.2-7.3 umdiám., sin ramificar, nodiluíbles en sol. de KOHal 5%, con paredes engrosadas; 4) hifasligadoras, 1.6-1.8 um diám, aparecen en las últimas semanas; 5)basidios, cilíndricos a claviformes, 7.8-12 x 2.1-3.6 um, 4-eSpO­rados; 6) basidiOSporas alantoides, 3.1-3.6 x 0.5 um, inamiloides,acianófilas; 7) cistidios incrustados con cristales pequeños,formados por células terminales, esclerificadas, 5-8 umdiám. Enalgunas zonas, las hifas de los diferentes tipos se observan in­crustadas con abundantes cristales pequeños.CLAVEPATRON:2. 3. 8. 9. 12. 14. 32. 36. 38. 43. 48. 50. 55CEPA ESTUDIADA: 2348

TYROMYCESCAESIUS (Schrad. :Fr.) Murrill FIGS.203—207

N. Am. Fl. 9:34, 1907.= Boletus caesius Schrad., Spic. Fl. Germ. p.167, 1794.

CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 39 FIGS.203—204

BASIDIOCARPOanual, aguanoso, eSponjoso cuando fresco,corchoso cuando seco, solitario a imbricado, demediado a efusoreflejo, adherido al sustrato por una base lateral, 3-6 x 2-4 x

120

0.8-2 cm. Superficie del píleo pubescente cuando joven, luegoglabra, al tocarlo adquiere tonalidades azuladas que permanecenal secarse; margen romo a subagudo. Contexto hasta 1.5 cm de es­pesor, blanco a grisáceo. Himenóforotubular, con tubos blancos,hasta 4 mmde longitud. Poros 3-4 por mm,circulares a angulares,lacerados. SISTEÏKH PALmonomítico, con hifas generaitvas fibu­ladas, de pared delgada en la superficie del píleo, 2.8-5 umdiám.,y paredes engrosadas hasta casi sólidas en el contexto, 3.6;9.7 umdiám., diSpuestas en una capa superficial laxa y una capa profun­da más compacta. BASIDIOScilíndricos'a subclaviformes, 4-eSpora—dos, 12.2-13 x 3.6-5 um. BAS_DIOSPORAScilíndricas, ligeramentealantoides, hialinas, lisas, de pared delgada, generalmente gutu­ladas, 3.6-5.4 x l-l.8 um, inamiloides, acianófilas.MATERIAL ESTUEIADO: BAFC 29293 y 29387. '

OBSERVACIOIES:el material coincide con los descriptos por Wrightet al. (1974).

CARACTERES DE CULTIVO FOTO 58 FIGS. 205-”07

CARACTBRESHACROSCOPICOS:crecimiento rápido, 7 cm enuna semana, cubriendo las cajas en la segunda semana. Capa mi­celiana hialina, subafieltrada; margenirregular. Reversoinal­terado. Olor ausente. Reacción de oxidasas: con ácido tánico +++,sin crecimiento; con ácido gálico +++, sin crecimiento; con gomade guayaco + .

CARACTïhísHICROSCOPICOS:Hicelio aéreo constituidopor hifas afibuladas, poco ramificadas, 2.1-5.4 umdiám., bienteñidas con floxina al principio, luego hialinas. Algunaspresen­tan ramificaciones cortas que parecen ser fíbulas abiertas. Enla cuarta semanaaparecen cristales amorfos, bastante numerosos.Micelio sumergido formado por elementos semejantes a los delmicelio aéreo.CLAVEPATRON: 2. 6. 7. 32. 36. 38. 42. 53. 55CEPA ESTUDIADA: EAFC 2283

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TYROMYCESDURACIHUS(Pat.) Murrill FIGS. 208-213

N. Amer. Flora 9:37, 1907= LeptOporus duracinus Pat., Soc. Myc. France Bull. 182174, 1902.

CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 40 FIGS. 208-210

BASIDIOCARPOanual, sésil o adherido a1 sustrato porun pequeño pie, solitario a imbricado, demediado, delgado, rigi­do cuando seco, 3-5 x 3-4 x O,l-O.4 cm. Superficie del píleoglabra, concéntricamente surcada, zonada hacia el margen, ocrá­cea; margen agudo, entero. Contexto tenaz, blanquecino, hasta3 mmde eSpesor. Himenóforo tubular, con tubos de hasta 2 mmdelongitud, concoloros con la superficie del píleo. Poros (4)—6-(8)por mm, circulares a angulares, enteros. SISTEMAHIFALdimitico,con hifas generativas fibuladas, frecuentemente ramificadas,deparedes delgadas a levemente engrosadas, 2.08-3.6 um diám., e hi­fas eSqueletales de pared engrosada y recorrido recto, 2.6-4.6um diám. BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados, con esterigmas cortos,8.7-10.3 x 5.2-6.2 um. BASIDIOSPORASalantoides, lisas, hialinas,gutuladas, de pared delgada, 4.1-5.2 x 1.04—l.6 um, inamiloides,acianófilas.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29307 y 29388.

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con los descriptos porLowe(1975). Esta es la primera cita para la República Argenti­na.

CARACTERESDE CULTIVO FOTOS 59-77 FIGS. 211-213

CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento lento, 1.5 cmen una semana, cubriendo las cajas en 1a tercera semana. Capamiceliana blanquecina, subafieltrada, con algunas zonas de mi­celio afieltrado a argodonoso; margenaracnoide. Reverso inalte­rado. Olor imperceptible. Reacción de oxidasas: con ácido tánico+++, creciendo l cm; con ácido gálico +++, sin crecimiento; congoma de guayaco +.

CARACTERESMICROSCOPICOS:Micelio aéreo formado por

122

hifas fibuladas delgadas, 1.8-2.88 umdiám, al principio bienteñidas con floxina, luego hialinas; e hifas fibuladas gruesas,3.6-5.4 umdiám., con constricciones regulares que les da unaSpecto de "barrilitos", bien teñidas con floxina. Ambostiposde hifas se observan a partir de 1a segunda semana con grancantidad de tabiques secundarios, rodeadas de abundantes cris­tales amorfos, localizados principalmente en las zonas de mice­lio afieltrado a algodonoso. Micelio sumergido constituido porlos mismos elementos del micelio aéreo.CLAVEPATRON: 2. 3. 7. 32. 36. 38. 43. 53. 55

CEPA ESTUDIADA: BAFC 2286 (correSponde a BAFC 29307).

WRIGHTOPORIAAVELLANEA(Bres.) Pouz. FOTO 41

Ceská Mykol. 202173, 1966. FIGS.2l4-215= Poria avellanea Bres. apud v. Hoehnel, K. Akad. Wiss. Math­

Naturw. Klas. Denk 83:14, 1907.BASIDIOCARPOanual, totalmente efuso, débilmente adhe­

rido al sustrato, se deSprende comouna película de goma de mas­car; margen delgado a ancho, miceliano a algodonoso, formandorizomorfos evidentes la mayoría de las veces. Consistencia go­mosa cuando fresco, fibrosa al secarse. Superficie himenial blan­ca cuando fresca, crémea cuando seca. Poros 2-3 por mm, redon­dos a angulares. Contexto hasta 0.5 mmde eSpesor. Tubos hasta2 mmde longitud. SIÉTEMAHIFALdimitico, con hifas generativasfibuladas, de pared delgada, 2.1-3.l um diám. e hifas eSqueleta—les poco ramificadas, de paredes engrosadas, 1.6-3.6 umdiám.,dextrinoides, cianófilas. BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados,7.2-15 x 2.6-3.G um, con esterigmas de hasta 3 um. BASIDIOSPORASelipsoidales, apiculadas, hialinas, con pared levemente engrosa­da y finamente aSperulada, 3.1-3.6 x 2.1 um, amiloides, acianó­filas.MATERIALESTUDIADO: BAFC 28329; 29335; 29336 y 28328.

123

OBSERVACIONES:los materiales fueron determinados por Rajchen­berg (1982).

GYMNOPILUSPELIOLEPIS (Speg.) Sing. FIGS. 216-220Lilloa 22:561, 1951.= Pholiota peliolepis Speg., Bol. Acad. Nac. Ci. Córdoba 232394,1919.

CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 42 FIGS. 216-217

BASIDIOCARPOceSpitoso a solitario. Píleo 2-7 cm diám.,hemisférico a convexo, generalmente umbonado, margen incurvado,glabro, con restos del velo. Superficie del ¿ileo glabra, cas­taño anaranjada cuando fresca, castaño rojizo oscuro cuando se­ca. Sin olor. Sabor levemente amargo. Contexto blanco amarillen­to. LAMINILLASsinuoso-adnatas a adnata-decurrentes, ocráceas.ESTIPITE 2-5 cm de longitud x 2-8 mmde eSpesor, central a 1e­vemente excéntrico. VELOcortinoide, concoloro, deja un anillomarcado en el ápice. BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados, 22-24 x5.5-7.6-um. BASIDIOSPORASelipsoidales, inequiláteras, verrugo­sas, ferruginosas, apiculadas, 6.8-9 x 4.3-5.2 um, de pared del­gada, gutuladas. ESporada castaño ferruginea cuando fresca.QUEILOCISTIDIOSventricosos, 12-32 x 4-6 um. PLEUROCISTIDIOSventricosos, 22-27 x 5-6 um. CAULOCISTIDIOSfilamentosos a sub­claviformes, 33-73 x 5-12 um.MATERIAL ESTUDIADO: ÉAFC 29346 y 29292.

OBSERVACIONES:los materiales coinciden con los descriptos porHesler (1969)1

CARACTERESDE CULTIVO FOTOS 60-78 FIGS. 218-220

CARACTERBSMACROSCOPICOS:crecimiento moderadamente

rápido, 3 cm en una semana, cubriendo las cajas entre la terce­ra y la cuarta semana. Capa miceliana blanquecina, subafieltra­da a levemente afieltrada; margen entero. Reverso inalterado.

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Olor fúngico. Reacción de oxidasas: con ácido tánico +++, cre­ciendo 5 mm; con ácido gálico ++, sin crecimiento; con goma deguayaco +.‘ CARACTERESMICROSCOPICOS:Micelio aéreo constituido

por hifas fibuladas, de pared delgada, l.4—3.6 um diám, ramifi­cadas regularmente, bien teñidas con floxina al principio, lue­go hialinas; e hifas eSqueletales de pared engrosada, algunascon luz casi ocluída, 3.6-5.4 um diám. En la cuarta semana se ob­serva la formación de artrOSporas a partir de las segmentaciónde las hifas fibuladas; también aparecen ocasionalmente vesícu­las intercalares, globosas a subglobosas, 7.2-14.4 x 7.2-lO.8 um.Micelio sumergido formado por hifas fibuladas, de pared delgada,idénticas a las del micelio aéreo, l.4—2.6 um diám.CLAVEPATRON: 2. 3. 8. 26. 35. 36. 38. 44. 53. 55

.CEPA ESTUDIADA: BAFC 265 (correSponde a BAFC 29346).

NAEMATOLOMAFASCICULARE(Huds.:Fr.) Karst. FIGS.224-232

Bidr. Finl. Nat. Folk 322496, 1879.= Agaricus fascicularis Huds.:Fr., Syst. Myc. 1:288, 1821.

CARACTERES DEL BASIDIOCARPO FOTO 43 FIGS.224—225

BASIDIOCARPOgregario a ceSpitoso. Píleo 1-5 cm diám.,obtusamente conico a campanulado, umbonadoa casi plano, margenincurvado. Superficie del píleo glabra, ocráceo anaranjada cuan­do fresca, castaño ferruginea cuando seca. Sin olor. Sabor amar­go. Contexto moderadamente grueso, hasta 4 mmde eSpesor. LAMI­NILLASanexas a emarginado-anexas, densamente aprotadas, gris o­liváceas. ESTIPITE 2-5 cm de longitud x 3-4 mmde eSpesor, cen­tral. BASIDIOSclaviformes, 4-eSporados, 15-20 x 4-5 um. BASIDIOS­PORASovoides, amarillentas, lisas, apiculadas, con poro germi­nativo apical, diferenciado, 5.4-7.2 x 3.9-4.3 um. ESporadacas­taño purpúrea cuando fresca. PLEUROCISTIDIOSventricosos, con el

125

ápice aguzado o mucronado, 25-40 x 6-10 um, embebidos o proyec­tándcse algo del himenio, amarillentos, con un cuerpo centralde material muyrefractivo.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29298.

OBSERVACIONES:el material fue identificado de acuerdo conSmith (1951).

CARACTERESDE CULTIVO FOTOS 61-79 FIGS.226-232

CARACTERESMACROSCOPICOS:crecimiento muy lento, 0.5

cm en una semana, apenas cubriendo las cajas en la sexta semana.Capa miceliana blanca con zonas castaño amarillentas. Texturaafieltrada, concéntricamente zonada, creciendo en abanico; mar­gen irregular, aracnoide. Reverso inalterado. Olor fúngico. Reac­ción de oxidasas: con ácido tánico +++, creciendo 2 mm;con áci­do gálico ++++, sin crecimiento; con gomade guayaco +.

CARACTERESMICROSCOPICOS:Micelio aéreo formado porhifas fibuladas, de pared delgada, 2.1-3.5 umdiám., regular­mente ramificadas, bien teñidas con floxina; en algunas zonas es­tas hifas constituyen un micelio apretado, abarrotado de crista­les rómbicos a amorfos, formando un pseudOparénquima de hifas enrompecabezas. Algunas terminaciones hifales se presentan con pa­redes engrosadas, semejando a los cistidios. En las zonas de mi­celio concéntricamente zonado se observa la presencia de abun­dantes artrOSporas. En la zona cercana al inóculo aparecen hifasfibrosas, afibuladas, de pared delgada, incrustadas con cristalespequeños, 2.8-3.5 um diám. Micelio sumergido constituido por losmismos elementos del micelio aéreo.CLAVEPATRON:3. (8). 10. 35. 36. 38. 46. 53. 55CEPA ESTUDIADA: BAFC 2417.

PLEUROTUSEE. FIGS. 221-223BASIDIOCARPOsemicircular, muy pequeño, hasta l cm

126

de diámetro; margen ondulado, incurvado. Superficie del pileoestriada, castaña. Sin olor ni sabor particulares. LAMINILLASdecurrentes, angostas, concoloras con la superficie del píleo.BASIDIOScilíndricos, 4-eSporados, 20-26 x 4-5.2 um diám. BA­SIDIOSPORASelipsoidales, lisas, hialinas, apiculadas, de pareddelgada, 7.3-7.8 x 3.1-3.6 um, inamiloides, aoianófilas. PLEU­ROCÏSTIDIOSventricosos, abundantes, con el ápice fuertementeincrustado con cristales y pared muy gruesa, 50-70 x 15-20 um.MATERIAL ESTUDIADO: BAFC 29389.

OBSERVACIONES:no se pudo llegar a 1a determinación eSpecíficadebido a la escasez del material, y al tamaño de los basidio­carpos. De acuerdo con Dennis (1953), podría tratarse de unaeSpecie afín a B. subbarbatus (Berk. & Curt.) Saco.

127

CONCLUSIONES

Se han estudiado en su aSpecto ecológico y taxonómicolos basidiomicetos xilófilos de los bosques de Pinus elliottiiy Pinus taeda en las provincias de Buenos Aires y Misiones,tanto en árboles en pie comoen madera estibada.

Nose verificó una incidencia significativa de xiló­fagos sobre árbol en pie; los hongos que se detectaron sobre losmismoso bien son netamente corticicolas o son xilobiontes sa­prófitos que penetran por heridas provocadas generalmente porquiebra de ramas. En Misiones pueden considerarse como eSpeciesde riesgo a: Junghuhnia complicata; SchiZOporacarneo-lutea;Phellinus gilvus y Riqidovorus zonalis . En el Delta : Coriolusvillosus; Hyphodermasetigerum v SChiZOpOPacarneo-lutea . To­v

'das ellas deben ser vigiladas para controlar su frecuencia, yaque son capaces de producir un alto porcentaje de degradación.

En cuanto a las maderas estibadas, se observó unamarcada diferenciación según el lugar geográfico, y, en menorgrado, según el hOSpedante. En Misiones las variaciones involu­cranpuincipalmentecambioscuantitativos y cualitativos; mientrasque en el Delta se detectaron exclusivamente cambios cuantitati­vos. El otoño y 1a primavera resultaron ser las estaciones másfavorables para el desarrollo de los hongos en ambossitios,Misiones y Pinus taeda siempre registraron una mayor frecuenciaacumulada en cada muestreo y una mayor diversidad eSpecífica.

Junghuhnia complicata, Hyphodontia soathulata y Schi­onOra carneo-lutea son las eSpecies típicas de estos bOSques,ya que han llegado a un equilibrio con ambos pinos en ambos si­tios. En la sucesión sobre madera estibada no aparecieron es­pecies de elevada función ecológica asociadas con un tipo depino en particular, lo que verifica la estrecha relación exis­tente entre amboshOSpedantes. E1 porcentaje de ataque globalmenorregistrado para B. elliottii está directamente correla­cionado con el mayor contenido de resinas; esto le confiere al

128

sustrato un grado de acidez tal que disminuye considerablemen­te la velocidad de desarrollo de los hongos lignivoros sobreél. _

Los basidiomicetos que registraron un alto grado deimportancia de 1a función ecológica son: Hyphodermasetigerum,fiyphodontia alutaria, Hyphodontia Spathulata, Hypochniciumpunctulatumt Botryobasidium laeve*, Junghuhnia complicata,Rigid0porus zonalis,SchiZOpora carneo-lutea y Tomentella fuli­¿inga*.( el asterisco indica acción degradadora "in vitro" des­conocida)

En general el proceso de deterioro provocado por lasespecies xilófagas es lo suficientemente marcado compara te­ner muyen cuenta al conjunto de todas ellas, ya que en el trans­curso de 30 meses provocaron una disminución en la'densidad es­pecifica de la madera del orden del 40%al 50%.

La secuencia de organismos en la colonización es tansólo una parte del proceso de pudrición de la madera. Duranteel mismohay una serie de nichos ecológicos que llenar_y la es­pecie que OCUpaun nicho en particular estará determinada prin­cipalmente por las condiciones del sustrato y los factores am­bientales. De este modotodo se reduce a un conjunto de interac­ciones que se verifican de un modotal que eSpecies muy dife­rentes,cumpliendo una función similar, permiten la pudriciónfinal de la madera. Por esto se hace imprescindible además dela identificación tagonómica de las eSpecies, la determinaciónde la reacción fisiológica de cada organismoy la clasifica­ción de los mismos en grupos de actividad asociada.

Se realizó un ensayo para comprobar interacciones,y se verificó una importante acción antagónica de NaematolomaÉgggiculare frente a la mayor parte de los hongos xilófagosestudiados. Considero que es muyimportante continuar con estalinea de trabado Para poder encontrar antagonistas naturalesque actúen comocontrol biológico de los hongos lignivorosmás activos.

129

Con reSpecto a1 estudio taxonómico se describen47 eSpecies de basidiomicetos; 1 eSpecie nueva ; 12 eSpe­cies se citan por primera vez para el pais.

Es muy importante tener en cuenta que 1a implantaciónde estos pinos en el pais es relativamente reciente y, porIo tanto, probablemente todavia no se ha desarrollado'una co­munidad de xilófagos activos lo suficientemente adaptada aestos hOSpedantee.

¿MQ (¿Ogg

FIGURAS

130

Figs.1-3.

Figs.4-6.

Fígs.7-12.

1-3- Eílíiíií seCaracteres del basidiocarpo: 1.basidio bifurcado

_consepto basal; 2.paráfísis simple; 3.hifas afi­buladas.

4-6. CerinomycescrustulinusCaracteres del basidiocarpo: 4.hifas generativasfibuladas; 5.basidios en horqueta en

6.distintos gra­

dos de desarrollo; basidiosporas.

7-12- sikisini 2322252Caracteres del basidiocarpo: 7.gloeocistídios; 8.probasidio; 9. basidio maduro,tabicado; 10. basi­diosporas; 11.paráfisis ramificadas; 12. hifas ge­nerativas fibuladas.

k\2¿y

131

Figs. 13-15. Sistotrema brinkmannii13-15. Caracteres del basidiocarpo: 13.basidio urniforme

con 6 esterigmas; 14.basidiosporas; 15.hifas gene­rativas fibuladas.

Figs. 16-18. Trechispora farinacea16-18. Caracteres del basidiocarpo: 16.hifas con tabiques

ampulíformes; 17.hifas generativas fibuladas; 18.himenio y basidiospras.

Figs. 19-22. Botryobasidium conspersum19-22. Caracteres del basidiocarpo: 19.hifas generativas

afibuladas; 20.basidiosporas; 21.00nidióforos sim­ples, con dientes conidiógenos; 22.conidios.

132

Figs- 23-26- 92321222532322líiïi23-26. Caracferes del basidiocarpo: 23.basidio con 6 es­

terigmas y basidiosporas; 24.basidios colapsados;25.conidióforo y conidios; 26.hifas afibuladas ra­

lmificadas en angulo recto.

Figs. 27-29. Botryobasidium subcoronatum27-29.Caracteres del basidiocarpo: 27.hifas fibuladas ra­

mificadas; 28. basidio con 6 esterigmas y basidios­poras; 29.conidióforos y conidios.

Figs. 30-32. Phanerochaete galactites30-32. Caracteres del basidiocárpo: 30.cistidios_incrus­

tados en Melzer; 31.hifas afibuladas de pared en­grosada en el subículo; 32. himenio y basidiosporas.

133

Figs. 33-39. Phlebiopsis gígantea

33-35.

36-39.

Caracteres del basidiocarpo: 33.himenio,1amprocis­tídio y basidiosporas; 34.1amprocistidios con paredengrosada y algunos tabiques secundarios,sin incrus­tación apical; 35. hifas afibuladas.

Caracteres de cultivo: 36.hifa del micelio aéreocon constricciones citoplasmáticas; 37.hifas delmicelio de avance incrustadas con cristales; 38.hifas del micelio sumergido; 39. hifas del micelioaéreo y cristales.

134

Figs. 40-43. Hyphodermadefinitum

40-43. Caracteres del basidiocarpo: 40.hifas fibuladas depared delgada; 41.himenio;42.basidiosporas; 43.cistídios.

Figs. 44-46. Hyphoderma sambuci

44-46. Caracteres del basidiocarpo: 44.hifas generativasfibuladas; 45.himenio y basidíosporas; 46.cistidios.

135

Figs. 47-52. Hiphoderma setigerum

47-48. Caracteres del basidiocarpo: 47.himenio,cistidios

49-52.

y basidiosporas; 48.0istidio sin incrustaciones,tabicado, con pared levemente engrosada y fïbulasen todos los septos.

Caracteres de CultiVO: 49.hifas en cornamenta delmicelio aéreo; 50.hifas fibuladas del micelio mar­ginal; 51.crístales; 52.hifas del micelio aéreo.

136

Figs. 53-55. Hyphodontia abieticola

53-55. Caracteres del basidiocarpo: 53.himenio y basidios­poras; 54.cistidio; 55.hifas fibuladas con paredlevemente engrosada.

Figs. 56-57. Hyphodontia alutacea

56-57. Caracteres del basidiocarpo: 56.himenio,fascículoshifales y basidiosporas; 57.hifas fibuladas de pareddelgada.

Figs. 58-63. Hybhodontia alutaria

58-60. Caracteres del basidiocarpo: 58.himenio y basidios­poras, con cistidios capitados y lagenocistidios;59.1abenocistidios, con y sin incrustación apical;60.hifas fibuladas con pared levemente engrosada

137

Figs. 58-63._Hyphodontiaalutaria

61-63. Caracteres de cultivo: 61.hífas del micelio margi­nal; 62.hifas del micelio aéreo, con contenido va­cuolar refríngente que dan origen a vescículas cla­viformes; 63.vescícu1as y cristales del micelio aéreo.

Figs. 64-67. Hyphodontia halonata

64-67. Caracteres del basidiocarpo: 64.himenio y basidioá­poras; 65.hifas fibuladas con pared engrosada; 66.cistidios moníliformes; 67.cistidios capitados.

138

Figs.

68-70.

71-75.

68-75. Hyphodontia spathulata

Caracteres del baáidiocarpo: 68.himenio y basidios­poras; 69.cistidios; 70.hifas fibuladas con pareddelgada.

Caraéteres de cultivo: 71.hifas del micelio margi­73.

cornamenta del micelio aéreo; 74.hifas del micelional; 72.hifas del micelio sumergido; hifas en

aéreo,con numerososcristales y vescículas; 75.artrosporas.

139

Figs. 76-79. Hypochnicium punctulatum

76-79. Caracferes del basidiocarpo: 76.himenio; 77.esporasverrucosas en azul de algodón; 78.esporas lisas,con pared engrosada, en sol. de KOHal 5%; 79.cis­tidios.

F193. 80-82. Penicphora cinerea

80-82. Caracteres del basidiocarpo:80.himenio y basidiospo­ras; 81.cistidios metuloides con y sin incrustacíónapical; 92.910eocistidíos.

140

Figs. 83-87. Subulicystidium longisporum

83-84. Caracteres del basidiocarpo: 83.himenio y basidios­poras; 84.cistidio acuminadoincrustado con crista­les en hileras regulares.

35-87. Caracteres de cultivo: 85.hifas del micelio margi­nal; 86.hifas del micelio aéreo, con pared engro­sada y tabiques secundarios; 87.crista1es.

141

Fig. 88. Xenasmatella tulasnelloidea

88 . Caracteres del basidiocarpo: 88.himenio con pleu­robasidios y basidiosporas asperuladas.

Figs. 89-90. Vuilleminia comedens

89-90. Caracteres del basidiocarpo: 89.basidio,basídiolosy basidiosporas; 90.hifidios simples, tabicados,

Figs. 91-93. Steccherinum ochraceum

91-93. Caracteres del basidiocarpo: 91.himenio y basidios­poras; 92.cistidios con y sin incrustación apical;93.hifas generativas fibuladas con pared levementeengrosada, y esqueletales con pared muy gruesa.

142

Figs. 94-97. Vararia pallescens

94-97. Caracteres del basidiocarpo: 94.basidio biesporado;95.basidiosporas; 96.910eocistidios; 97.dicofisas.

Figs. 98-100. Tomentella fuliginea

98-100. Caracteres del basidiocarpo: 98.basidio; 99.basi—diosporas; 100.hifas ramificadas,castañas,con fí­bulas frecuentes y pared levemente engrosada.

Figs. 101-103. Cotylidia aurantiaca

101-103. Caracteres del basidiocarpo: 101.himenio; 102.basidiosporas; 103.hifas afibuladas.

Figs- 104-106- Esnningiamxsii 52o

104-106. Caracteres del basidiocarpo: 104.himenio; 105.basidio biesporado; 106.hifas dicotómicamenteramificadas, con pared engrosada.

143

Figs. 107-108. Schizophyllum commune

107-108. Caracteres del basidiocarpo: 107.himenio y basi­diosporas; 108.hifas generativas fibuladas y es­queletal con pared gruesa.

Figs- 109-117- Ehilliflïi 931123

109-111. Caracteres del basidiocarpo: 109.himenio y basi­diosporas; 110.hifas generativas afibuladas conpared delgada, y esqueletal con pared engrosada.111. seta.

112-117. Caracteres de cultivo: 112.hífas del micelio mar­ginal; 113.hifas del micelio sumergido;114.cris—tales; 115.vescículas del micelio aéreo; 116.hi—fas.de1 micelio aéreo, con pared levemente engro­sada; 117.p1ecténquima e hifas fibrosas del mice­lio aéreo.

144

Figs. 118-130. Ganoderma subamboinense

118-123. Caracteres del basidiocarpo: 118.himenio y basi­diosporas; 119.e1ementos claviformes de la hime­nodermis; 120.hifa ligadora; 121. hifa esqueletalramificada; 122.gasterosporas; 123.hifa generati­va fibulada.

124-130. Caracteres de cultivo: 124.hifas generativas delmicelio aéreo; 125.hifas fibrosas muyramifica­das; 126.cé1u1as cuticulares; 127 -128.clamidosLperas; 129.hifas en cgrnamenta del micelio aéreo;130.hifas en rosario.

128- g“i

145

Figs. 131-138. Antrodia ramentacea

131-133. Caracteres del basidiocarpo: 131.himenio y basi­diosporas; 132.hifa generativa fibulada con pareddelgada e hifa esqueletal. 133.hifa generativacon pared engrosada irregularmente.

134-138. Caracteres de cultivo: 134.hifas generativas concontenido citoplasmático castaño; 135.hifa gene­ratíva con pared engrosada irregularmente y ra­mificación arboriforme; 136.hifa fibrosa; 137.hifa generativa con pared engrosada irregularmep­te; 13fi. cristales.

Figs. 139-145. Coríolus víllosus

139r142.

143-145.

Caracteres del basidiocarpo: 139.himenio y basi­141.hifas li­

gadoras; 142. hifas generativas fibuladas.diosporas; 140.hifas esqueletales;

Caracteres de cultivo: 143.hifa ligadora; 144.hifas del micelio marginal; 145.hifas del mice­lio aéreo.

146

146-155.

146-150.

151-155.

Junghuhnia complicata

Caracteres del basidiocarpo: 146.himenio y basi­diosporas; 147.hifas generativas con pared engro­sada; 148.hifas generativas con pared delgada;149.cístidios con y sin incrustación apical; 150.hifas esqueletales.

Caracteres de cultivo: 151.hifas del micelio mar­ginal; 152.hífas del micelio aéreo, con numerosasramificaciones cohtas; 153.hifas del micelio aéreoincrustadas con cristales; 154.hifas fibrosas;155.ar;rosporas.

147

Figs- 156-164. kinííïsi 12233

156-159. Caracteres del basídiocarpo: 156.himenio y basi­diosporas; 157.hifa generativa fibulada; 158.hifa ligadora con pared muygruesa; 159.hifa es­queletal.

160-164. Caracteres de cultivo: 160.hifas del micelio aéreo;161.hifa fibrosa ramificada; 162.hifa generativafibulada,ancha; 163.crista1es; 164.hifas del mi­celio marginal.

Figs. 165-166. RigídOpOPussanguinolentus

165-166. Carácteres del basidiocarpo: 165.himenio y basi­diosporas; 166.hifas afibuladas con pared leve­mente engrosada.

148

Figs.

167-168.

569-173.

167-173. RigídOporus zonalis

Caracteres del basidiocarpo: 167.himenio y basi­dioSporas; 168.hifas afibuladas con pared leve­mente engrosada.

Caracteres de Cultivo: 169.hifas del micelio mar­ginal; 170.acantofisas; 171.hifas infladas en elápice que darán lugar a les acantofisas; 172.hi­fas del micelio aéreo; 173.hifas en rompecabezas.

149

Figs.

174-175.

176-181.

174-181. PycnOporus sanguíneus

del 174.175.sistema hifal.

Caracteres basidiocarpo: hímenio y a­sidiosporas;

Caracteres de cultivo: 176.hífas fibuladas delmicelio de avance; 177.ciamidosporas; 178-179.artrOSporas; 180.hifas fibrosas ramificadas; 181.hifas del micelio aéreo.

150

Figs. 183-190. Schizopora carneo-lgïgg

183-186. Caracteres del basidiocarpo: 183.himenio y basi­diosporas; 184.3istema hifal; 185.vescículas ter­minales; 186.hifas incrustadas de los disepimen­tos.

187-190. Caracteres de Cultivo: 187.hifas del micelio marginalincrustadas con cristales; 188.vescïculas del mi­celio aéreo; 189. hifas del micelio aéreo; 190.proliferación de vesciculas; 191.crista1es

Figs. 192-193. SchizOpora paradoxa

192-193. Caracteres del basidiocarpo: 192.himenio y basi­diosporas; 193.hifas fibuladas y vescículas ter­minales.

Figs. 194-202. ELQLQEQQEEEE23131

194-197.

198-202.

Figs.

203-204.

205-207.

203-207.

Caracteres del basidiocarpo: 194.himenio y ba­sidiosporas; 195.hifa generatíva con pared del­gada; 196.hifa generativa con pared engrosadairregularmente; 197.hifa esqueletal.

Caracteres de cultivo:luibles en KOHa1

198.hifas esqueletales di­5%; 199.hifa generativa incrus­

tada con cristales pequeños; 200.hifas ligadoras;201.himenic y basídiosporas de 1a fructificación;202.hifas del micelio aéreo.

Tyromyces caesius

Caracteres del basidiocarpo: 203.himenio y basi­diosporas; 204.hifas fibuladas con pared gruesa.

Caracteres de cultivo: 205.hifas del micelio mar­ginal; 206.hifas del micelio aéreo con numerosasramificaciones cortas; 207.hifas del micelio su­mergido.

199

152

Figs. 208-213. Tyromyces duracinus

208-210. Caracteres del basidiocarpo: 208.himenio y ba­sidiosporas; 209.hifa generativa fibulada; 210hifa esqueletal.

211-213. Caracterés de cultivo: 211.hifas'fibuladas, del­gadas y anchas, del micelio aereo; 212.hifasdel micelio marginal; 213;hifas del micelio pú­mergido.

Figs. 214-215. WrightOporia avellanea

214-215. Caracteres del basidiocarpo: 214.basidiosporas;215.sistema hifal.

153

Figs. 216-220. Gymnopilus peliolepis

216-217. Carácteres del basidiocarpo: 216.basidio y basi­diosporas; 217.cistidios.

218-220. Caracteres de cultivo: 218.hifas del miceliomarginal; 219.hifas del micelio aereo y artros­poras; 220.hifas esqueletales.

Figs. 221-223. Eleurotus sp;

221-223. Caracteres del basididcarpo: 221. himenio y basi­diosporas; 222. pleurocistidio; 223. hífas gene­rativas y esqueletal.

154

Figs. 224-232.-Naematolomafasciculare

224-225.

226-232.

Caracteres del basidiocarpo:225.cistidios.

224.basidiosporas;

Caracteres de cultivo:226.hifas en rompecabezasmicelio aéreo; 227.terminaci6n hifal incrustada

228.hifas del micelio aéreo in­229.

230.artrosporas;

con cristales;crustadas intercalarmente con cristales;hifas del micelio marginal;231.vescículas del midelio aéreo; 232.hifa in­crustada con cristales planos.

FOTOGRAFIAS

155

Aspecto de los basidiocarpos (2 x ) de :

1.293.4.

gigígiflí sigsgsg Bres. (BAFC29283)ex Fr.) Líberta (BAFC29286)

Botryobasidium conspersum J.Erikss.(BAFC 29338)Egïggggggígigg ¿3323 (J.Erikss.) Parm. (BAFC29285)

Trechispora farinacea (Pers.

156

Aspecto de los basidiocarpos (2 x ) de:

5. Botryobasidium subcoronatum (v.H6hn. & L1tsch.)Donk(BAFC 29287)

6. Phlebiopsis gigantea (Fr.)JUl. (BAFC29330)7. Phanérochaete galactites (Bourd. & Galz.) J.Erikss.& Ryv.

(BAFC 29275)8. :detalle de los rizomorfos sub­

corticales que forma esta especie.

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s4

157

Asbecto de los basidiocarpos (2 x ) de:

9.1o.11.12.

Hyphoderma definitum (Jacks.)Donk (BAFC29343)(BAFC 29272)

Hiphoderma sbtigerum (Fr.) Donk (BAFC29274)Hyphodermasambuci (Pers.) Jül.

Hyphodontia abieticola (BouÉd. a Galz.) J.Erikss. (BAFC29269)

Aspecto de los basidiocarpos (2 x ) de:

13.'14.15.16.

HyphodontiaHyphodontia

alutacea (Fr.) J.Erikss. (BAFC29271)alutaria (Burt.) J. Erikss. (BAFC29268)

HyphodontiaHyphodontia

halonata J.Erikss. & HJortst. (BAFC29284)Spathulata (Fr.) Farm. (BAFC29290)

tw... .,7#.A¡.42.5

,..r.

A.a...J,,b..A

.._ r.(34.213.

159

Aspecto de los basidiocarpos (2 x ) de:

17.18.19.20.

Hypochnicium punctulatum (Cooke)J.Erikss. (BAFC29344)Peniophora cinerea (Fr.) Cooke (BAFC29332)

(BAFC 29279)

Steccherinum ochraceum (Pers. apud Gmelin ex. Fr.)Gray(BAFC 29266)

Subulicystidium longisporum (Pat.)Parm.

fi...

160

Aspecto de los basidiocarpos (2 x ) dq:

21.22.23.24.

Vararia pallescens (Schw.) ngers & Jacks. (BAFC29265)Tomentella fuliginea (Burt.) Bourd.&Galz. (BAFC29276)Cotylidia aurantiaca (Pers.) Welden (BAFC29326)

(BAFC 29323)2222222212222 2222222 FP-=FP­

161

Aspecto de los basidíocarpos (2 x ) de:

25.26.

Engllíggí g¿¿¿gg (Schw.) Pat. (BAFC29295)Ganoderma subamboinense P.Henn. (BAFC29294)

superficie del píleo.27. " "28.

superficie himenoforal.Antrodia ramentaceae (Berk. & Br.)Donk (BAFC29297)

Aspecto de los basidiocarpos (2 x ) de!

29. Coriolus villosus (Sw. ex. Fr.)M.Bond. et Herrera(BAFC 29345)

30. Junghuhnia complicata Blumenfeld & Wright (BAFC29334)superficie del píleo.

31. " " superficie himenoforal.32. Lenzites 52233 Berk. (BAFC29342) superficie himenoforal.

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k .A_,..¿{un.

4,!r p..

163

Aspecto de los basidiocarpos (2 x ) de:

33.

34.

35.36.

Pycnoporus sanguíneos (L. ex. Fr.) Murr. (BAFC29341)superficie del píleo.

Rigidoporus sanguinolentus (Alb. & Schw.:Fr.) Donk(BAFC 28042Ï

Rígidoporus zanalis (Berk.) Imazeki (BAFC29324)& Pouz.

(BAFC 29280)

Schizopora carneo-lutea (Rodw.& Clel.) Kotl.

164

ASpecto de los basidiocarpos (2 x ) de:

37.38.39.40.

Schizopora paradoxa (Schrad.:Fr.) Donk (BAFC29296)Skeletocutis nivea (Jungh.) Keller (BAFC27657)

(BAFC 29293)

(BAFC 29307)Tyromyces caesius (Schrad. ex Fr.) Murr.TyPOmycesduracinus (Pat. ) Murr.

superficie himenoforal.

Aspecto de los basidiocarpos (2 x) de:

41. Wrightoporia avellanea (Bres.) Pouz. (BAFC28328)42. Gymnopilus peliolepis (Speg.) Singer (BAFC29346)43. Naematoloma fasciculare (Huds. ex Fr.) Karst. (BAFC29298)

166

Aspecto de los cultivos (2/3 x) de:

44.45.46.47.48.49.

Phlebiopsis gigantea (BAFC699)Hyphoderma setigerum (BAFC2040)Hyphodontia spathulata (BAFC2352)Subulicystídium longisporum (BAFC2347)finallingi gáixgi (BAFC65°)Ganoderma Subamboinense (BAFC 635)

s:—\ ar‘t:f¿:x‘..x

167

Aspecto de los cultivos (2/3 x) de:

50.51.52.53.54.55.

Antrodia ramentaceae (BAFC719)Coriolus villosus (BAFC531)Junghuhnia complicata (BAFC2302)

(BAFC 2435) '

PycnOporus sanguíneus (BAFC2387)Quizas EL“

Rigidoporus zonalis (BAFC654)

168

Aspecto de los Cultivos (2/3 x) de:

56.57.58.59.60.61.

Schizopora carneo-lgggg (BAFC2032)Skeletocutis nívea (BAFC2348)Tiromyces caesius (BAFC2283)Tyromyces duracinus (BAFC2286)Gimnopilus peliolepis (BAFC265)Naematoloma fasciculare (BAFC2417)

169

Reacción gg oxidasas: aspecto de los Cultivos(1/2 x) en ácido tánico

62.Ph1ebiopsis gigantea (BAFC699)63.64.65.66.67.

Hyphoderma setigerum (BAFC 2040)Hyphodontia spathulata (BAFC2352)Hyphodontia alutaria (BAFC2063)Subulicystidium longisporum (BAFC2347)Ensllingi gillïï (BAFC65°)

170

68.69.70.71.72.73.

Reacciáfl gg gïidasiïz aspecto de los cultivos(1/2 x) en ácido tánico

Ganoderma subamboinense (BAFC 635)Antrodia ramentacea (BAFC719)Coriolus villosus (BAFC531)Junghuhnia complicata (BAFC2302)

¿ggííggg ggggg (BAFC2435)Rigidoporus zonalis (BAFC654)

171

Reacción gg oxidasas: aspecto de los cultivos

74.75.76.77.78.79.

(1/2 x) en ácido tánico

Picnoporus sanguíneas (BAFC2387)Schizopora carneo-lgïsg (BAFC596)ghglgïgggïíg gívea (BAFC2348)Tyramyces duracinus (BAFC2286)Gymnopilus peliolepis (BAFC265)Naematoloma fasciculare (BAFC2417)

172

52212 22 221:: 1921322 222 221411Aspecto de los cultivos (2/3 x) de:

80-82:

33-85}

Coriolus villosus (BAFC531), 6 dias decrecimiento. 80: testigo; 81: concentración1%; 82: concentración 2%.

Rigidoporus zonalis (BÁFC2002), 1o dias decrecimiento. 83: testigo; 84: concentración1%; 85: concentñación 2%.

173

Egáexa ss masia ¿sisáaaieg 222 agita: 2135332­¿22:222­Aspecto de los cultivos*(2/3 x) de:

86-87:

88-89:

90-91:

Coriolus villosus (BAFC531).86: pH 5.8;87: pH 4.6

Lenzites acuta (BAFC2435). 88: pH 5.8;

Pycnoporus sanguíneas (BAFC2387).

90: pH 5.8 i 91: pH 4.6

#todas las cajas fueron fotografiadas.a 103'10 dias

_174

EEEEEEESEÉE (2/3 x)Aspecto de les enfrentamientos con Naegïïgígmíigggíggíggg (BAFC2417,cepa izquierda en todaslas cajas) de los cultivos de:

92: Hyphoderma setigerum (BAFC 2040)93: Hyphodontia spathulata (BAFC2297)94: Hyphodontia alutaria (BAFC2063)95: Subulicystidium longisporum (BAFC2347)96: Enellinïi gilvus (BAFC650)

r

*'“‘8*"1“?W“"'M=

175

Enzsnzssián (2/3 x)Aspecto de los enfrentamientos con Naematglgmífasgígglígs (BAFC2417, cepa izquierda en todaslas caJas) de loe cultivos de:

97: Coriolus villosus (BAFC531)98: Junghuhnia complicata (BAFC2444)99: ¿3253333.55231 (BAFC2435)

100: Plenoporus sanguíneus (BAFC2387)101: Rigidoporus zonalis (BAFC2002)

176

Lgïgggggiág (2/3 x)Aspecto de los enfrentamientos con Eígmíïgígflifascicglígg (BAFC2417, cepa izquierda en todaslas cajas) de los cultivos de:

102: Schizopora carneo-lutea (BAFC596)103: Skeletocutis nivea (BAFC2348)104: Gymnopilus peliolepis (BAFC265)

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