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1 Diversidade e Composição de Odonata (Insecta) dos Lagos do Baixo Rio e checklist para o Espírito Santo Keyla Vieira da Cruz Dissertação de Mestrado em Biodiversidade Tropical (Ecologia) Mestrado em Biodiversidade Tropical (Ecologia) Universidade Federal do Espírito Santo São Mateus, julho de 2016

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Diversidade e Composição de Odonata (Insecta) dos Lagos do Baixo Rio

e checklist para o Espírito Santo

Keyla Vieira da Cruz

Dissertação de Mestrado em Biodiversidade Tropical (Ecologia)

Mestrado em Biodiversidade Tropical (Ecologia)

Universidade Federal do Espírito Santo

São Mateus, julho de 2016

2

Àqueles que acreditaram em mim estimulando-me ainda mais; A minha amada família e amigos que sempre estiveram dotados de paciência, compreendendo minha ausência resultante dos compromissos acadêmicos.

Dedico

3

“Imagino-me como uma borboleta, onde o crescimento é notável e sua metamorfose é algo deslumbrante. Esses dois anos significaram em minha vida mais uma fase, em que com certeza muitas transformações ocorreram. Assim como a borboleta, que não está totalmente formada no primeiro instar, também necessito de tempo e esforço para meu desenvolvimento. Uma vez ouvi dizer que o conhecimento era a única coisa que eu poderia ter sem correr o risco de que me tirassem, hoje me considero uma pessoa com um pouco mais de “posses”. Mais um ciclo se encerra, dando início a novas expectativa, pois ainda não sei de que cor serão minhas asas e nem quando poderei voar”.

Keyla Vieira da cruz

4

AGRADECIMENTOS

Na realização deste trabalho contei o com o apoio de diversas pessoas que

foram fundamentais para que tudo desse certo. Alguns me deram um pouco de

seu conhecimento, outros cederam a mão de obra, e teve aqueles que até

mesmo apenas estiveram por perto e que nos momentos de nervosismo me

apoiaram e no mínimo me fizeram sorrir.

Agradeço primeiramente aos meus queridos Orientador e Co-orientadora,

Frederico Falcão Salles e Karina Schmidt Furieri, que se dispuseram a me

orientar e sempre me atenderam com grande paciência e compreensão, sendo

como verdadeiros pais para mim, pela responsabilidade, disciplina e experiência

que me proporcionaram.

Ao Dr. Leandro Juen e a Drª. Thatianna por terem aceitado fazer parte da banca

examinadora.

Agradeço a FAPES, pelo financiamento de dois anos de pesquisa.

Ao programa de Pós Graduação em Biodiversidade Torpical.

A equipe do Labsei (Laboratório de Sistemática e Ecologia de Insetos) Daniel,

Evandro, Fabiana, Kamila, Maísa, Rayner e Taís, por me ajudarem nas infinitas

coletas de Odonada.

Daniel e Maísa pela descontração no Lab, Daniel imitando fielmente o Silvio

Santos e os caras da manutenção do ar condicionado entre outros, e Maísa com

suas danças estranhas (rs), Maisinha, também sou grata por me acolher por

vários dias em sua casa, ou até mesmo ir para minha, não me deixando ficar

sozinha e com medo.

Evandro, por sua imitação não tão boa quanto a do Daniel, mas talvez até mais

engraçada (justamente por isso), e por conceder momentos de “povo de

humanas” com nossos papos de “miçangueiros”, sobre religião, política, ética,

direitos humanos e tantos outros assuntos pertinentes.

Às “irmãs” Fabiana e Kamila, as mais corajosas e felizes no campo, terei boas

recordações de vocês, sempre com alguma dica para os trabalhos científicos e

até mesmo conselhos pessoais.

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Taís, que me cativou, sempre dotada de atenção e cuidados para comigo nos

momentos de descontração e nas horas em que mais precisei, muito obrigada

amiga, você só não pode juntar com Maísa, vocês são muito sapecas juntas,

mas eu amo vocês.

E em especial ao Rayner, que levarei para sempre em meu coração, um irmão

que escolhi, que dividir tudo, campos, coletas, Odonatas, comida, água, cama,

casa, felicidade, tristeza, festas, ressacas... Que esteve presente em cada

momento, e com certeza iremos dividir muitas lembranças, e histórias. Eu viveria

com você no mínimo, por mais uma década sem ter problema algum, e

continuaríamos com a nossa “família tradicional brasileira”.

Agradeço ao Marx, por me ajudar a cuidar do Rayner (risos), por estar em quase

todas as etapas deste trabalho, por me acompanhar em 70% dos meus campos,

por produzir vários mapas lindos para este trabalho, por me aturar quando estou

de mau humor, e sempre levantar o meu astral. Muito obrigada amigo, sem você

tudo seria mais difícil.

Aos meus pais que me apoiaram em toda a trajetória mesmo diante de

momentos difíceis em suas vidas, e aos demais amigos não citados, mas que de

alguma forma estiveram presentes.

A conclusão desse trabalho não resulta somente em uma dissertação que ficará

disponível para aqueles que se interessam pelas belas libélulas, mas eu também

o classifico como um registro ambiental, histórico e social, sendo um marco em

minha vida, por poder explorar as áreas que sempre vi a necessidade de serem

estudadas, e por isso sinto-me lisonjeada por ter tido a oportunidade de

pesquisar e conhecer um pouco mais sobre a região em que cresci. Lisonjeada

por poder contribuir, através da ciência, para que saibamos um pouco mais sobre

situação desta região que vem sendo cada vez mais castigada pelo

desenvolvimento desordenado. A conclusão deste trabalho também é um marco

numa família que veio da nascente do Rio Doce (MG) e hoje mora onde ele

encontra o mar (Linhares-ES), uma família de trabalhadores rurais em que os

chefes não concluíram o Ensino Fundamental, mas hoje por meio das políticas

públicas da última década, e do Programa de Pós Graduação em Biodiversidade

Tropical terá um de seus membros com um título jamais imaginado, Mestra!

6

Desta forma, sou muito grata a todos, de coração, meu muito obrigada!

7

SUMÁRIO

INTRODUÇÃO GERAL ............................................................................................................... 15

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ............................................................................................... 18

CAPÍTULO 1 REVISÃO DA DIVERSIDADE E DISTRIBUIÇÃO DE ODONATA (INSECTA) DO ESTADO

DO ESPÍRITO SANTO.................................................... 21

Introdução ............................................................................................................................. 22

Objetivo Geral ....................................................................................................................... 23

Objetivos Específicos ............................................................................................................ 24

Material e Métodos .............................................................................................................. 24

Área de Estudo .................................................................................................................. 24

Coleta e Deposição do Material ........................................................................................ 25

Resultados ............................................................................................................................. 25

Discussão ............................................................................................................................... 36

Referências Bibliográficas ..................................................................................................... 39

CAPÍTULO 2. DIVERSIDADE E COMPOSIÇÃO DE ODONATA NAS LAGOAS DO BAIXO RIO DOCE, COM

NOTAS SOBRE A FAUNA DO ESPÍRITO SANTO ............................................................................... 48

Introdução ............................................................................................................................. 49

Objetivo Geral ....................................................................................................................... 50

Objetivos Específicos ............................................................................................................ 51

Material e Métodos .............................................................................................................. 51

Área de Estudo .................................................................................................................. 51

8

Coleta e Deposição do Material ........................................................................................ 52

Análises Estatísticas........................................................................................................... 52

Resultados e Discussão ......................................................................................................... 53

CONCLUSÕES GERAIS ............................................................................................................... 61

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ............................................................................................... 62

ANEXO – Material Depositado ................................................................................................ 80

9

INTRODUÇÃO GERAL

Os trópicos são altamente diversificados, comportando variáveis ambientais que

correlacionadas com a latitude levam a biodiversidade tropical ser considerada

maior que a diversidade biológica das outras zonas climáticas (BOYERO, 2011).

O processo lento e gradual de formação geológica da região está,

intrinsecamente, relacionado com os altos índices de diversidade de espécies

que atualmente são encontrados em países como Brasil, Colômbia Peru e

Equador, denominados megadiversos (JOLY et. Al., 2011)

No Brasil se encontra a maior cobertura de florestas tropicais do mundo,

especialmente concentrada na Região Amazônica, fator que, aliado a sua

extensão territorial, diversidade geográfica e climática, faz dele o principal entre

os países megadiversos do Planeta, englobando de 15% a 20% das 1,5 milhão

de espécies descritas na Terra (LEWINSOHN&PRADO, 2000).

Lamentavelmente, essa grandiosa diversidade tem sido destruída,

comprometendo a sustentabilidade do meio ambiente, a disponibilidade de

recursos naturais e, assim, a própria vida na Terra. Para Boyero (2011) as áreas

tropicais, normalmente localizadas em países em desenvolvimento,

desempenham um papel de destaque nesse cenário, pois seus índices de

degradação de habitat e perda de biodiversidade são excepcionalmente altos.

Para reverter esse problema um dos maiores obstáculos para a conservação da

biodiversidade tropical, segundo Pimm et al. (2001), é a falta de informações que

permitam o estabelecimento de prioridades e a concentração de esforços em

ações práticas.

Para a Mata Atlântica há estimativas de 10.000 espécies vegetais e milhares de

espécies animais, sendo muitas delas talvez ainda desconhecidas pela Ciência,

da Mata Atlântica brasileira restam apenas de 11,4 a 16% da cobertura vegetal

original (Ribeiro et al., 2009), sendo que, este bioma encontra-se no limite

máximo de fragmentação, onde menos de 8% são fragmentos com mais 100

hectares (Inpe & SOS Mata Atlântica, 2008) o que reflete no risco de extinção de

espécies (269 espécies ameaçadas neste ecossistema de acordo com o IBAMA,

2003).

10

O Estado do Espírito Santo, se encontra na região sudeste do Brasil, em sua

porção oriental, delimitado ao norte pela Bahia, a oeste por Minas Gerais e ao

sul pelo Rio de Janeiro. Segundo o IPEMA (2005), o Espírito Santo abrange uma

área de 45.597Km², sendo que aproximadamente 90% desta área originalmente

já foi ocupada por Mata Atlântica, e ecossistemas como brejos, restingas,

manguezais, campos de altitude e campos rupestres, ocupavam a área restante,

da cobertura original atualmente restam apenas 9%, consequência de alterações

ambientais que o estado vem sofrendo desde sua colonização

O Estado possui alta diversidade em relevo, geomorfologia e redes hidrográficas,

apresentando altitudes que variam desde o nível do mar até 2.897m, 3 grupos

morfoestruturais (Depósitos Sedimentares, Dobramentos Remobilizados e

Maciços Plutônicos), e número variável de ottobacias, sendo que esse número

pode chegar a 20 ottobacias, em nível mais detalhado (PAULA, 2006).

Incorporada à região hidrográfica do Atlântico Sudeste, a Bacia do Rio Doce

ganha destaque por possibilitar atividades econômicas bastante diversificadas.

Localizando-se entre os paralelos 17°45’ e 21°15’ de latitude sul e os meridianos

39°55’ e 43°45’ de longitude oeste, com uma área de drenagem de

aproximadamente 86.715 km², entre os estados de Minas Gerais (86%) e

Espírito Santo (14%), é portanto uma bacia de domínio federal (PLANO

INTEGRADO DE RECURSOS HÍDRICOS DA BACIA HIDROGRÁFICA DO RIO

DOCE, 2010), sendo para o território capixaba a área de drenagem com maior

volume de vazão em metros cúbicos por segundo (COELHO, 2007).

Com grande proporção para o estado, e ocupando cerca de 1/3 da sua área, o

Rio Doce, na porção mais baixa do seu curso, no centro-leste do Estado, no

município cidade de Linhares, reúne um conjunto lacustre formado por dezenas

de lagos. Estes lagos são distribuídos em domínios geomorfológicos diferentes,

podendo ser classificados em lagos externos e internos, estando os externos

localizados entre o platô terciário e a planície costeira quaternária, com

comprimento que varia de 1 a 10 km, e os internos, na margem esquerda do rio,

sobre tabuleiros da Formação Barreiras, sendo estes, de dimensões maiores

(Hatushika et al., 2007)

11

Pouco se sabe acerca da origem e evolução destes corpos lacustres, Suguio &

Kohler (1992) mostram que, estes, podem ser o produto da dissecação de

antigos vales fluviais, na última Transgressão (5100 anos AP), e posteriormente

inundados no Holoceno, com o amento do nível do mar. Para Hatushika (2005),

esta formação se deu a partir da atuação de movimentações neotectônicas e

variações do nível do mar ao longo do quaternário, ideia compartilhada em

estudos realizados por Mello et a. (2005), ao apontar a reativação tectônica como

responsável pela orientação das redes de drenagem. Segundo o autor, Os lagos

da região de Linhares apresentam suas margens orientadas por feixes de

lineamentos na direção NW-SE (noroeste- sudeste), sendo este feixe de

lineamento, o mesmo que se estende ao longo do trecho final do curso do rio

Doce até ao mar de Regência, estando o rio, fortemente associado a formação

dos lagos.

A bacia do Doce é dividida em três subunidades, Alto, Médio, e Baixo Rio Doce

sendo as duas primeiras em Minas Gerais e a última no Espírito Santo, onde a

bacia integra 21 municípios em uma área de aproximadamente 14.500 km2 (ANA

2001), e subdividida dividida em um número variável de sete a dez subbacias,

conforme a classificação utilizada (Instituto Jones dos Santos Neves, 2009). Das

três subunidades, o Baixo Rio Doce, é considerada a área mais conservada,

contemplando áreas de mata ciliar, remanescentes de Floresta Atlântica e

fragmentos de manguezais junto à foz. Contudo, além dos problemas

ambientais desencadeados no próprio estado, recebe toda carga de sedimentos

e poluentes vindos de Minas Gerais (ANA 2001).

A situação do rio Doce foi agravada com o rompimento das barragens de Fundão

e Santarém, em 5 de novembro de 2015. Foram liberados 62 milhões de metros

cúbicos de rejeitos de mineração no rio Doce, sendo considerado o maior

desastre, deste tipo, da história mundial em cem anos, equivalente à soma de

dois eventos ocorridos nas Filipinas, em 1982 e 1992 com 28 e 32,2 milhões de

m³ de lama respectivos, que até então eram os maiores acontecimentos do

gênero registrados no mundo (ICMBio & MMA, 2016). Diante dessas condições,

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o maior manancial de água doce do Estado do Espírito Santo apresenta

atualmente, uma situação crítica com efeitos socioambientais irreparáveis.

Cerca de 97,5% da água disponível na Terra são salgadas e 2,49% estão

concentrados em geleiras ou regiões subterrâneas, e 0,007% de água doce

disponível em rios, lagos e na atmosfera (SHIKLOMANOV, 1998). O Brasil detém

cerca de 12% de toda a água doce disponível no planeta, sendo esta, destinada

ao consumo humano, irrigação e atividades industriais, o que gera graves

problemas relacionados à distribuição irregular dos recursos hídricos e o

desperdício presente em todos os níveis da sociedade (AGÊNCIA NACIONAL

DE ÁGUAS - ANA, 2002).

A análise dos corpos d’água é necessária, pois os recursos hídricos mesmo

quando associados às atividades humanas apresentam-se capazes de sustentar

uma alta diversidade de espécies (Williams et al., 2003). Os trópicos também

apresentam uma enorme diversidade de espécies de insetos, sendo estes, de

grande valor para aquisição de conhecimento em biologia tropical, diversidade

de comunidades e conservação de habitats (Edwards, May & Webb 1993). O

estudo do grupo, além de oferecer dados a respeito da qualidade de seu habitat,

propicia benefícios como o baixo custo, facilidade de coleta e menos tempo em

comparação a estudos realizados com vertebrados (Corbet, 1999; Freitas et

al.,2003; Vane-Wright & Ackery, 1984).

Desta forma, a utilização de bioindicadores vem se tornando uma estratégia de

avalição de mudanças ambientais, e para isso, é importante que os organismos

envolvidos no estudo sejam abundantes, diversificados e com valor ecológico,

pois de acordo com BROWN (1997) a alteração da abundância, diversidade e

composição dos indicadores define o grau de perturbação do meio.

A classe Insecta, além de ser a mais numerosa do reino animal, é um grupo

diverso e com alta densidade populacional, ampla capacidade de dispersão, e

possui grande importância na cadeia trófica de ecossistemas naturais, gerando

respostas à qualidade e quantidade de recursos disponíveis (Ehrlich et al., 1980;

Rosenberg et al., 1986; Souza & Brown, 1994; Schoereder, 1997), sendo assim,

13

uma análise faunística baseada em espécies de insetos, possibilita avaliar a

qualidade ambiental (SILVEIRA NETO et al. 1995).

Dentre a grande diversidade de insetos, encontram-se os classificado como

insetos aquáticos, até o momento estão registrados no mundo cerca de 60.000

espécies de insetos aquáticos, estes, são assim definidos por colonizarem

ambientes dulciaquícolas ou até mesmo marinhos em pelo menos um de seus

estágios de desenvolvimento, encontrando nestes ambientes, abrigo e alimento

(Corbet, 1983).

Alguns organismos com ciclo de vida complexo, como a ordem Odonata,

(libélulas), podem oferecer boas respostas para estudos em sistemas aquáticos.

Por viverem a fase de ovo e ninfa em ambiente aquático, e serem

ontogeneticamente forçados a habitarem ambientes terrestres na fase adulta,

ambos ambientes acabam influenciando e sofrendo influência destes insetos

(McCoy et al., 2009).

Com cerca de 5680 espécies escritas, e uma estimativa de 7000 espécies para

o mundo (Kalkman et al., 2008), a ordem é dividida em duas subordens,

Anisiptera e Zygoptera, e suas diferenças se dão principalmente pela forma e

tamanho dos indivíduos. O interesse em estudar este grupo se dá pelo fato de

ser um componente importante na cadeia trófica dos ecossistemas aquáticos,

sendo predadores generalistas, considerados topo da cadeia trófica do litoral de

lagos e riachos, assim como os peixes. Essas espécies, por serem topo de

cadeia, geralmente são as primeiras afetadas nos processos de impacto

ambiental, e a perda desses organismos pode ocasionar efeitos cascata na

comunidade, com redução da riqueza de espécies (Ricklefs, 2003).

Deste modo, juntando-se seus hábitos e as peculiaridades de seus estágios

larvais, que apresentam estrita dependência com os ambientes dulcícolas,

sendo fortemente afetadas pelas condições físico-químicas dos corpos d’água,

os representantes deste grupo podem ser utilizados como indicadores da

qualidade ambiental e de água (Carvalho & Nessimian, 1998).

Assim, partindo-se do pressuposto que a única lista de espécies de Odonata

para o Estado do Espírito Santo foi publicada a mais de uma década, e além de

14

incompleta, encontra-se desatualizada, e considerando que, da mesma forma

que o Espírito Santo carece de informações básicas a respeito da distribuição

das espécies de Odonata que nele ocorrem, poucos são os estudos que

abordam aspectos ecológicos do grupo, conhecer a diversidade e composição

de Odonata do Baixo Rio Doce é relevante. Tal que, os objetivos gerais deste

trabalho são: a) integrar o conhecimento a respeito da composição e distribuição

da fauna de Odonata do Espírito Santo; b) Avaliar como determinadas variáveis

ambientais influenciam na riqueza, composição e distribuição da fauna

de Odonata nas lagoas do baixo Rio Doce. Para essas finalidades gerais, a

pesquisa vale-se de objetivos específicos como: a) Integrar os dados constantes

na literatura com dados de exemplares coletados nos últimos 15 anos

no ES pela Dra. Karina Furieri, e recentemente, no baixo Rio Doce pela equipe

do LabSEI (Laboratório de Sistemática e Ecologia de Insetos); Ampliar a

informações com relação à distribuição geográfica dos gêneros e espécies;

Georeferenciar dados para a confecção de mapas de distribuição para gêneros e

espécies; Apresentar catálogo da fauna de Odonata do ES com a integração

entre informações e mapas referentes a cada uma das espécies. E b) Realizar

amostragens qualitativas (busca ativa); Realizar amostragens quantitativas

(Protocolo de Coleta Rápida ou RAP); Estimar riqueza de espécies e interagir

resultados com variáveis ambientais.

15

CAPÍTULO 1

Revisão da Diversidade e Distribuição de Odonata (Insecta) do

Estado Do Espírito Santo

Revista escolhida para a apresentação: ZOOKEYS

Em preparação

16

Revisão da Diversidade e Distribuição de Odonata (Insecta) do Estado Do

Espírito Santo

Keyla V. Cruz 1,6, Rayner P. Constantino 2,6, Paulo De Marco 3, Frederico F.

Salles 4,6, Karina S. Furieri 5

1Universidade Federal do Espírito Santo. São Mateus, Espírito Santo, Brasil.

[email protected]

2Universidade Federal do Espírito Santo. São Mateus, Espírito Santo, Brasil.

[email protected]

3Universidade Federal de Goiás. Goiânia, Goiás, Brasil. [email protected]

4Universidade Federal do Espírito Santo. São Mateus, Espírito Santo, Brasil.

[email protected]

5Universidade Federal do Espírito Santo. São Mateus, Espírito Santo, Brasil.

[email protected]

6 Laboratório de Sistemática e Ecologia de Insetos, Centro Universitário Norte do

Espírito Santo/UFES, São Mateus, ES - BRAZIL

Autor correspondente: Keyla V. Cruz ([email protected])

Resumo

Após mais de uma década de publicação da única lista de espécies de Odonata

para o Estado Espírito Santo, apresentamos uma lista atualizada, integrando o

conhecimento a respeito da composição e distribuição da fauna no estado. Um

banco de dados foi montado com dados obtidos em 15 anos, estes foram

devidamente georeferenciados, sendo a base para a confecção de mapas de

distribuição de gêneros e espécies. Desta forma, gerou-se uma lista de 217

espécies, pertencentes a 72 gêneros e 11 famílias foram registradas para os

municípios do Espírito Santo, incluindo 40 novos registros para a lista do Espírito

Santo e 10 espécies ameaçadas de extinção, contribuindo para o conhecimento

sobre as espécies de Odonata da região.

17

Palavras chave: Fauna Neotropical, Libélula, Mata Atlântica, Espécies

Ameaçadas.

Abstract

Key words: Neotropical Fauna, Dragonfly, Atlantic, Endangered Species.

Introdução

A ordem Odonata segundo Trueman (2007) conta com aproximadamente 6000

espécies, contudo, Kalkman et al.(2008) estima uma riqueza de 7000 espécies

distribuídas mundialmente, já para a região Neotropical cerca de 1.727 espécies

são conhecidas (VON ELLENRIEDER, 2009). No Brasil, o conhecimento sobre

a fauna de Odonata tem aumentado de forma relevante, levando a registros que

atualmente contam com cerca de 800 espécies de libélulas (SOUZA et al.,2007),

entretanto o grupo foi amostrado em apenas 29% do território brasileiro (De

MARCO & VIANA 2005; GALVÃO et al., 2014).

A partir da literatura, pode se encontrar inventários para o Brasil, De Marco

(2005), reuniu vários deles em um trabalhado, mostrando a distribuição

geográfica da riqueza de espécies de Odonata em todo país. Para a região

sudeste todos os estados contam com listas de espécies, que cronologicamente

se organizam por Minas Gerais, elaborada por MACHADO (1998); Rio de

Janeiro, por Costa & Mascarenhas (1998); São Paulo, feita por COSTA et al.

(2000); e Espírito Santo COSTA & OLDRINI (2005). Esses trabalhos têm

contribuído para reduzir as lacunas no conhecimento da distribuição de

Odonatas no Brasil.

Há uma necessidade de aprofundar o conhecimento sobre as faunas regionais,

pois dados gerados a cada estudo vão se aproximando cada vez mais do modelo

real de distribuição das espécies no Brasil (COSTA et al., 2000), pois grande

parte da distribuição de espécies descritas são desconhecidas, gerando assim,

o déficit Wallaciano. Outro ponto que impulsiona essa necessidade, são os

problemas ambientais em decorrência do crescimento contínuo das populações

18

humanas em todo o mundo, que vem promovendo a expansão dos centros

urbanos (McKinney, 2006; Lal, 2007).

Corpos d’água naturais, frequentemente são influenciados pela degradação

ambiental por atividades humanas, relacionadas principalmente ao crescimento

demográfico (BARRETO et al., 2014). Dada a complexidade do seu ciclo de

vida dos odonatos, onde suas formas imaturas habitam ecossistemas aquáticos,

e a adulta é terrestre, vários autores têm apontado a importância do grupo em

estudos de avaliação e monitoramento de recursos hídricos (Oertli 2008; Silva et

al 2010), ademais, a presença dessas formas são de grande importância para

equilibrar os ecossistemas, já que as mesmas, são predadoras generalistas

(KIRK & PERRY 1994).

O Estado de São Paulo, maior centro industrial da América do Sul, é um exemplo

de como o desenvolvimento vem comprometendo os ambientes naturais da

Região Sudeste (COSTA et al., 2000). Posicionado nessa região e inserido

integralmente no bioma Mata Atlântica (um dos hotspot mundial), estudos no

Estado do Espírito Santo ampliam o conhecimento das espécies de Odonata

deste bioma (COSTA & OLDRINI, 2005), e considerando que a única lista de

espécies de Odonata para o Espírito Santo foi publicada há mais de 10 anos

(Costa & Oldrini, 2005), questiona-se sobre a ocorrência de novos registros de

espécies para o estado e a distribuição das mesmas por municípios.

Material e Métodos

Área de estudo

O estado do Espírito Santo possui uma área de 45.597Km², e está localizado na

região sudeste, na porção oriental do Brasil, sua posição geográfica se define

pelas coordenadas 17º59’29”S e 40º31’27”W, seus limites se encontram ao norte

com a Bahia, a oeste com Minas Gerais e ao sul com o Rio de Janeiro (Figura

x). Segundo o IPEMA (2005), o Espírito Santo apresentava originalmente uma

área aproximada de 90% com cobertura de Mata Atlântica, sendo que

ecossistemas como brejos, restingas, manguezais, campos de altitude e campos

19

rupestres, ocupavam a área restante. Desta cobertura original atualmente

restam apenas 9%.

Segundo (Paula, 2006), seu relevo é montanhoso, com altitudes variando desde

o nível do mar até 2.897m de altitude no sul do Estado (Fig. 2). O Espírito Santo

pode ser dividido geomorfologicamente em três tipos morfoestruturais, sendo

eles classificados como Depósitos Sedimentares, Dobramentos Remobilizados

e Maciços Plutônicos, equivalentes à 34; 51; e 12% do território, respectivamente

(Coelho et al. 2012).

Cortado por vários rios, o estado apresenta grande diversidade de rede

hidrográfica. O Rio Doce é o mais importante, nascendo em Minas Gerais e

desaguado no Atlântico, no norte do Espírito Santo, mais precisamente no distrito

de Regência – Linhares, percorrendo cerca de 977km de curso. Além disso, o

Espírito Santo possui duas regiões hidrográficas, onde ao norte se encontra a

Região Hidrográfica Atlântico Leste e ao sul a Atlântico Sudeste.

O estado apresenta um número variável de ottobacias, sendo relativo ao nível

de detalhamento considerado, neste trabalho se optou pelo nível 03 (Fig.X), onde

são evidenciadas 17 ottobacias, sendo elas: Bacia dos rios Itaúnas, São Mateus,

Doce, Riacho, Piraquê-Açu, Fundão ou reis Magos, Baía de Vitória, Jucu, Chury,

Uma, Perocão, Jabuti, Meaípe, Benavente, Novo, Itapemirime Itabapoana

(GEOBASES, 2002).

Coletas, identificações e deposição

Algumas campanhas foram feitas entre outubro de 2014 a janeiro de 2015, e

Outubro de 2015 a fevereiro de 2016, onde exemplares adultos de Odonata

foram coletados em 13 pontos nos lagos do Baixo Rio Doce, mais precisamente,

no município de Linhares, norte do Espírito Santo (Fig.x).

Para a coleta de adultos de odonata, foi utilizada rede entomológica (puçá) com

haste feita em alumínio, cabo retrátil, comprimento do cabo com cerca de 100

cm, comprimento da cesta aproximadamente 90cm, e diâmetro da cesta de

40cm.

20

Os espécimes foram colocados, ainda vivos, em envelopes entomológicos para

terem tempo de esvaziar seus intestinos, e assim possibilitar uma melhor

conservação, posteriormente, no laboratório, eles foram imersos em acetona,

onde descansaram por 48h, para fixação da coloração dos exemplares, e então

colocados para secar e finalmente postos em envelopes definitivos sobre uma

ficha de papel cartão, onde todos seus dados foram registrados, como sugerido

por Lencione (2006).

A identificação dos espécimes foram realizadas com base em Lencioni (2005;

2006), Heckman (2006) e Garrison et al. (2006; 2010), e uma série de artigos

pertinentes a cada táxon, além da comparação com exemplares previamente

identificados por outros especialistas.

O material analisado encontra-se depositado na Coleção Zoológica Norte

Capixaba (CZNC - Universidade Federal do Espírito Santo).

3.3. Distribuição geográfica, material examinado e fotos

A Lista foi organizada em ordem alfabética de famílias, integrando dados

existentes na literatura sobre distribuição geográfica, hábitat e hábitos. Para a

elaboração da distribuição geográfica das espécies foram utilizados os dados

provenientes de Lencioni (2005; 2006), Heckman (2006) e Garrison et al. (2006;

2010; 2013;), o Catálogo Taxonômico da Fauna do Brasil disponível em

http://fauna.jbrj.gov.br/, vários artigos relacionados a fauna de Odonata, e ainda

o material examinado.

As siglas utilizadas para a “Distribuição geográfica” seguem o padrão para

abreviação dos estados: Região Sul - PR, Paraná; RS, Rio Grande do Sul;

SC, Santa Catarina; Região Sudeste - ES, Espírito Santo; MG, Minas Gerais;

RJ, Rio de Janeiro; SP, São Paulo; Região Nordeste - AL, Alagoas; BA,

Bahia; CE, Ceará; MA, Maranhão; PE, Pernambuco; PI, Piauí; RN, Rio Grande

do Norte; SE, Sergipe; Região Centro Oeste - GO, Goiás; MT, Mato Grosso;

Região Norte - AC, Acre; AM, Amazonas; PA, Pará; RO, Rondônia; RR,

Roraima.

Mapas

21

Os mapas de relevo, bacias, biomas e distribuição dos gêneros no estado foram

confeccionados utilizando os dados de distribuição no programa QGIS – Versão

2.8.4 “Wroclaw’ (SHERMAN, 2016).

O mapa de riqueza (quadrícula) foi confeccionado no programa DIVA-GIS 7.5.0

(HIJMANSETAL.2005).

As fotos de alguns exemplares aqui apresentadas, foram fornecidas pelo

Pesquisador Frederico Falcão Salles.

Banco de dados

Foi construído um banco de dados a partir de literatura especializada e registros

na Coleção Zoológica Norte Capixaba (CZNC - Universidade Federal do Espírito

Santo), e coleção do Laboratório de Ecologia Teórica e Síntese (LETS –

Universidade Federal de Goiás). Neste banco de dados, foram incluídas as

seguintes informações (sempre que disponíveis): nome da família; gênero;

espécie; estado (ES); município; localidade (nome da região da cidade ou da

reserva/parque, rio/lago); latitude e longitude; altitude; e a fonte (coleção onde o

espécime se encontra ou citação bibliográfica.

Resultados

Com base na atual lista de Odonatas, literatura disponível, e nos espécimes

contidos no banco de dados montado, a lista das espécies de Odonata

registradas para o Espírito Santo, conta com 217 espécies, 72 gêneros e 11

famílias (Tabela X). Para cada família são acrescidas informações sobre a

distribuição geográfica de seus gêneros.

Lista de Odonatas (SUBORDEM/ FAMÍLIA/ Gênero/ Espécie)

ANISOPTERA Selys, 1854(27 gêneros),

AESHNIDAE Leach in Brewster, 1815

Anax Leach in Brewster, 1815

22

Anax amazili (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Equador, Guiana Francesa, Paraguai,

Peru, Uruguai, Venezuela, Brasil: ES, SP

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); GARRISON et al. (2006); HECKMAN

(2006).

Anax concolor Brauer, 1865

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Caribe, Colômbia, Equador,

Guiana Francesa, México, Suriname, Venezuela, Brasil: AM, ES, MT, SC, SP

Registros para o ES: Linhares.

Bibliografia: GARRISON et al. (2006); HECKMAN (2006); SOUZA et al. (1999).

Comentários: Apesar de registrada para o estado a espécie não consta na lista

de Odonatas do Espírito Santo até o momento.

Castoraeschna Calvert, 1952

Castoraeschna castor (Brauer, 1865)

Distribuição geográfica: Argentina, Suriname, Brasil: ES, MG, RJ, SP

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); GARRISON et al. (2006); HECKMAN

(2006).

Castoraeschna januaria (Hagen, 1867)

Distribuição geográfica: Argentina, México, Paraguai, Brasil: ES, MG, SC, SP

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); GARRISON et al. (2006); HECKMAN

(2006).

Comentários: Espécie ameaçada de extinção no Brasil, na categoria VU, de

acordo com a Portaria N° 444 de 17 de dezembro de 2014.

Coryphaeschna Williamson, 1903

Coryphaeschna adnexa (Hagen, 1861)

Distribuição geográfica: Argentina, Caribe, Colômbia, Equador, Guiana

Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: AM, ES, MT, MS, RJ

23

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); GARRISON et al. (2006); HECKMAN

(2006).

Coryphaeschna perrensi (McLachlan, 1887)

Distribuição geográfica: Argentina, México, Paraguai, Peru, Uruguai,

Venezuela, Brasil: ES, MG, MS PR, RJ, RS, SC, SP

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); GARRISON et al. (2006); HECKMAN

(2006).

Coryphaeschna viriditas Calvert, 1952

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Registros para o ES: Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); GARRISON et al. (2006); HECKMAN

(2006).

Gynacantha Rambur, 1842

Gynacantha auricularis Martin, 1909

Distribuição geográfica: Bolívia, Equador, Guiana, Guiana Francesa, Peru,

Suriname, Venezuela, Brasil: AM, ES, MT, PA

Registros para o ES:

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); GARRISON et al. (2006); HECKMAN

(2006); JUEN (2011).

Gynacantha bifida Rambur, 1842

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Peru, Venezuela, Brasil: AM, ES,

MG, RJ, SC, SP

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); GARRISON et al. (2006); HECKMAN

(2006); JUEN (2011).

Gynacantha chelifera McLachlan, 1895

Distribuição geográfica: Brasil: ES.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

24

Gynacantha croceipennis Martin, 1897

Distribuição geográfica: Bolívia, Peru, Brasil: ES

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Gynacantha gracilis (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Peru, Venezuela, Brasil: AM, ES, RJ.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Gynacantha laticeps Williamson, 1923

Distribuição geográfica: Venezuela, Brasil: ES, MG.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Gynacantha membranalis Karsch, 1891

Distribuição geográfica: Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, PA.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Gynacantha mexicana Selys, 1868

Distribuição geográfica: Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, México, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, PA.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Gynacantha nervosa Rambur, 1842

Distribuição geográfica: Bolívia, Caribe, Colômbia, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, MT.

Registros para o ES:

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Neuraeschna Hagen, 1867

Neuraeschna costalis (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Equador, Guiana, Guiana Francesa, Suriname,

Venezuela, Brasil: AM, ES, PA, SP.

25

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Remartinia Navás,1911

Remartinia luteipennis (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Paraguai, Venezuela, Brasil: ES,

MG, MT, PA, RJ, RS, SC, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Rhionaeschna Förster, 1909

Rhionaeschna planaltica (Calvert, 1952)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Paraguai,

Peru, Uruguai Venezuela, Brasil: ES, MG, MS, MT, PR, RJ, RS, SP, SC.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Rhionaeschna punctata (Martin, 1908)

Distribuição geográfica: México, Brasil: ES, MG, RJ, RS, SC, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Staurophlebia Brauer, 1865

Staurophlebia reticulata (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Uruguai, Venezuela, Brasil: ES, MT.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Triacanthagyna Selys, 1883

Triacanthagyna caribbea Williamson, 1923

Distribuição geográfica: Bolívia, Caribe, Colômbia, Guiana Francesa,

Suriname, Venezuela, Brasil: ES, RJ.

Registros para o ES: Conceição da Barra e Linhares.

26

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); VON

ELLENRIEDER & GARRISON (2003).

Triacanthagyna nympha (Navás, 1933)

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Brasil: ES

Registros para o ES: Conceição da Barra e Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); VON

ELLENRIEDER & GARRISON (2003).

Triacanthagyna septima (Selys in Sagra, 1857)

Distribuição geográfica: Bolívia, Caribe, Colômbia, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, México, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: BA, ES, MG, MT, RJ.

Registros para o ES: Baixo Guandú, Cariacica, Conceição da Barra, Jacaraípe,

Linhares, Santa Teresa, São Mateus, Vitória.

Bibliografia: CALIL & CARVALHO (1999); COSTA & OLDRINI (2005);

HECKMAN (2006).

CORDULIIDAE Selys, 1850

Aeschnosoma Selys, 1870

Aeschnosoma forcipula Hagen in Selys, 1871

Distribuição geográfica: Guiana, Guiana Francesa, Peru, Suriname,

Venezuela, Brasil: AM, ES, PA.

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Bibliografia: SANTOS (1981); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Lauromacromia Geijskes, 1970

Lauromacromia melanica Pinto & Carvalho, 2010

Distribuição geográfica: Brasil: ES, MS.

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Bibliografia: PINTO & CARVALHO (2010); HECKMAN (2006).

27

Comentários: Apesar de registrada para o estado a espécie não consta na lista

de Odonatas do Espírito Santo até o momento.

GOMPHIDAE Rambur, 1842

Aphylla Selys, 1854

Aphylla theodorina (Navás, 1933)

Distribuição geográfica: Argentina, Guiana, Peru, Venezuela, Brasil: ES.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Archaeogomphus Williamson, 1919

Archaeogomphus infans (Ris, 1913)

Distribuição geográfica: Brasil: ES, SP.

Registros para o ES:

Bibliografia: COSTA et al. (2000); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Gomphoides Selys, 1854

Gomphoides infumata (Rambur, 1842)

Distribuição geográfica: Brasil: ES.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Idiogomphoides Belle, 1984

Idiogomphoides ictinia (Selys, 1878)

Distribuição geográfica: Brasil: ES.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Phyllocycla Calvert, 1948

Phyllocycla diphylla (Selys, 1854)

28

Distribuição geográfica: Argentina, Venezuela, Brasil: AM, ES

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Phyllocycla viridipleuris (Calvert, 1909)

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Brasil: ES, RJ, RS, SC, SP.

Bibliografia: COSTA et al. (2000); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Progomphus Selys, 1854

Progomphus adaptus Belle, 1973

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Progomphus complicatus Selys, 1854

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Brasil: BA, ES, RJ, SP.

Bibliografia: COSTA et al. (2000); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Progomphus dorsopallidus Byers, 1934

Distribuição geográfica: Guiana, Guiana Francesa, Venezuela, Brasil: ES.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Progomphus intricatus Hagen in Selys, 1858

Distribuição geográfica: Bolívia, Venezuela, Brasil: ES, MG, MT, PA, SP.

Bibliografia: COSTA et al. (2000); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Zonophora Selys, 1854

Zonophora campanulata (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica:

Guiana, Suriname, Brasil: ES, GO, MG, PR, RJ, SC, SP.

Bibliografia: BELLE, J.(1983); COSTA et al. (2000); COSTA & OLDRINI (2005);

HECKMAN (2006).

29

LIBELLULIDAE Leach in Brewster, 1815

Anatya Kirby, 1889

Anatya januaria Ris, 1911

Distribuição geográfica: Brasil: ES, RJ, SP.

Bibliografia: COSTA et al. (2000); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Brachymesia Kirby, 1889

Brachymesia furcata (Hagen, 1861)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Caribe, Chile, Colômbia, Equador,

Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, RJ, SP.

Registros para o ES: Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Brachymesia herbida (Gundlach, 1889)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Caribe, Colômbia, Equador,

Guiana, Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, MT,

MS, RJ, SP.

Registros para o ES: Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Brechmorhoga Kirby, 1894

Brechmorhoga nubecula (Rambur, 1842)

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Equador, Paraguai, Peru,

Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, MT, RJ, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Brechmorhoga praedatrix Calvert, 1909

30

Distribuição geográfica: Argentina, Guiana Francesa, Trinidade, Venezuela,

Brasil: ES, MT, RJ, SP.

Registros para o ES: Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Dasythemis Karsch, 1889

Dasythemis mincki (Karsch, 1890)

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Uruguai, Brasil: ES, GO, MG, RJ,

RS, SC, SP.

Registros para o ES: Guarapari, Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Dasythemis venosa (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Brasil: BA, ES, MG, MT, RJ, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Diastatops Rambur, 1842

Diastatops obscura (Fabricius, 1775)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Guiana, Guiana

Francesa, Paraguai, Peru, Venezuela, Brasil: BA, ES, MA, MS, MT, PA, RJ, SP.

Registros para o ES: Alegre, Aracruz, Baixo Guandú, Barra de São Francisco,

Colatina, Conceição da barra, Jacaraípe, Linhares, Santa Teresa, São Mateus.

Vila Velha.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); MONTGOMERY

(1940); PUJOL-LUZ (1995).

Diastatops pullata (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: AM, ES, MT, PA, PE.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Dythemis Hagen, 1861

31

Dythemis nigra Martin, 1897

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Registros para o ES: Conceição da Barra, Governador Lindemberg e Santa

Maria de Jetibá.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO e. al. (2014); HECKMAN

(2006); MACHADO (1954).

Elasmothemis Westfall, 1988

Elasmothemis cannacrioides (Calvert, 1906)

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Equador, Guiana Francesa,

Peru, Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, MT, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Santa Maria de Jetibá e Santa

Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Elasmothemis constricta (Calvert, 1898)

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Brasil: ES, SP.

Registros para o ES: Divino de São Lourenço e Santa Maria de Jetibá.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Elasmothemis schubarti (Santos, 1945)

Distribuição geográfica: Brasil: ES, SP.

Registros para o ES: Divino de São Lourenço.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Comentários: Espécie ameaçada de extinção no Brasil, na categoria EN, de

acordo com a Portaria N° 444 de 17 de dezembro de 2014.

Elga Ris, 1909

Elga leptostyla Ris, 1909

Distribuição geográfica: Colômbia, Equador, Guiana, Guiana Francesa, Peru,

Suriname, Venezuela, Brasil: ES, GO, MG, MT, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra.

32

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005);

HECKMAN (2006).

Elga newtonsantosi Machado, 1992

Distribuição geográfica: Brasil: ES, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Bibliografia: DAEHLER & STRONG (1996).

Erythemis Hagen, 1861

Erythemis attala (Selys in Sagra, 1857)

Distribuição geográfica:

Argentina, Bolívia, Caribe, Colômbia, Equador, Guiana, Guiana Francesa,

Paraguai, Peru, Suriname, Uruguai, Venezuela, Brasil: ES, MT, MS, PA, RJ, SP

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythemis carmelita Williamson, 1923

Distribuição geográfica: Colômbia, Peru, Venezuela, Brasil: AM, ES, MS.

Registros para o ES: Presidente Kennedy.

Bibliografia: HECKMAN (2006).

Comentários: Primeiro registro para o estado.

Erythemis credula (Hagen, 1861)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Caribe, Colômbia Guiana, Guiana

Francesa, Panamá, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, MS, MT, SP.

Registros para o ES: Guarapari.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythemis haematogastra (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica:

Argentina, Caribe, Colômbia, Equador, Guiana, Guiana Francesa, Panamá,

Paraguai, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, MS, MT, PA.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Linhares e Guarapari.

33

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythemis mithroides (Brauer in Therese, 1900)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Guiana, Guiana

Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, RJ.

Registros para o ES: Guarapari.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythemis peruviana (Rambur, 1842)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Caribe, colômbia, Equador,

Guiana, Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES,

MS, MT, PA, RJ, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Guarapari, Linhares, Presidente

Kennedy e São Mateus.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythemis plebeja (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica:

Argentina, Bolívia, Caribe, colômbia, Equador, Guiana, Guiana Francesa,

Paraguai, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, MS, RJ, SP.

Registros para o ES: Ecoporanga e Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et al. (2014); HECKMAN

(2006).

Erythemis vesiculosa (Fabricius, 1775)

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Registros para o ES: Aracruz, Conceição da Barra, Guarapari, Linhares,

Presidente Kennedy, São Mateus e Serra.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythrodiplax Brauer, 1868

Erythrodiplax anomala (Brauer, 1865)

Distribuição geográfica: Argentina, Brasil: ES, RJ, SP.

34

Registros para o ES: Conceição da Barra, Guarapari, Linhares, Presidente

Kennedy e São Mateus.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythrodiplax basalis (Kirby, 1897)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Caribe, Colômbia, Equador,

Guiana, Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Suriname Venezuela, Brasil: AM, ES,

MS, MT, PA, RJ, RO, SP.

Registros para o ES: Ecoporanga

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et. al. (2014); HECKMAN

(2006).

Erythrodiplax castanea (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Venezuela, Brasil: AM, ES, MT, PA, RO, RJ,

SC, SP.

Registros para o ES: Santa Leopoldina.

Bibliografia: BORROR (1942); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythrodiplax clitella Borror, 1942

Distribuição geográfica: Chile, Venezuela, Brasil: ES

Registros para o ES: Santa Teresa.

Bibliografia: BLANKE (2008), HECKMAN (2006).

Comentários: Apesar de registrada para o estado a espécie não consta na lista

de Odonatas do Espírito Santo até o momento.

Erythrodiplax famula (Erichson in Schomburgk, 1848)

Distribuição geográfica: Argentina, Guiana, Guiana Francesa, Peru, Suriname,

Venezuela, Brasil: ES, MG, PA, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythrodiplax fervida (Erichson in Schomburgk, 1848)

Distribuição geográfica: Colômbia, Equador, Guiana, Guiana Francesa,

Venezuela, Suriname Brasil: ES

35

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythrodiplax fusca (Rambur, 1842)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Uruguai, Venezuela, Brasil: AM,

BA, ES, MG, MS, MT, PA, RJ, RN, RO, RS, SC, SP.

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Santa Leopoldina, Santa Teresa e São

Roque do Canaã.

Bibliografia: BORROR (1942); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythrodiplax juliana Ris, 1911

Distribuição geográfica: Bolívia, Colômbia, Peru, Venezuela, Brasil: AM, ES,

MG, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythrodiplax longitudinalis (Ris, 1919)

Distribuição geográfica: Guiana Francesa, Suriname, Venezuela,Brasil: AM,

ES, MS.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythrodiplax media Borror, 1942

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Paraguai, Brasil: ES, MG, RS, SC,

SP.

Registros para o ES: Santa Leopoldina.

Bibliografia: BORROR (1942); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythrodiplax melanorubra Borror, 1942

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Paraguai,

Peru, Venezuela, Brasil: ES, SP.

Registros para o ES: Santa Leopoldina e Santa Teresa.

Bibliografia: BORROR (1942); HECKMAN (2006).

Comentários: Apesar de registrada para o estado a espécie não consta na lista

de Odonatas do Espírito Santo até o momento.

36

Erythrodiplax ochracea (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Guiana, Guiana

Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Brasil: BA, ES, MS, MT, RJ, SP.

Registros para o ES: Aracruz, Conceição da Barra e Guarapari.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Erythrodiplax umbrata (Linnaeus, 1758)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Uruguai, Venezuela, Brasil: AM,

ES, MS, MT, PA, RJ, RO, RS, SP.

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Conceição da Barra, Ecoporanga,

Guarapari, Linhares, Presidente Kennedy, Santa Leopoldina, Santa Maria de

Jetibá, São Roque do Canaã e Vila Velha.

Bibliografia: BORROR (1942); COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et. al.

(2014); HECKMAN (2006).

Gynothemis Calvert in Ris, 1909

Gynothemis venipunctata Calvert in Ris,1909

Distribuição geográfica: Venezuela, Brasil: ES, MT, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Idiataphe Cowley, 1934

Idiataphe amazonica (Kirby, 1889)

Distribuição geográfica: Bolívia, Colômbia, Guiana, Guiana Francesa, Peru,

Venezuela, Brasil: AM, ES, PA, SP.

Registros para o ES: Linhares e Vila Velha.

Bibliografia: HECKMAN (2006).

Comentários: Primeiro registro para o estado.

Idiataphe longipes (Hagen, 1861)

Distribuição geográfica: Colômbia, Guiana, Guiana Francesa, Peru, Paraguai,

Venezuela, Brasil: ES, MG, PA, RJ, SP.

37

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Libellula Linnaeus, 1758

Libellula herculea Karsch, 1889

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Venezuela, Brasil: ES, MS, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Macrothemis Hagen, 1868

Macrothemis extensa Ris, 1913

Distribuição geográfica: Guiana Francesa, Peru, Venezuela, Brasil: ES, PA.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Macrothemis hemichlora (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Equador, Guiana Francesa

Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, MT, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Macrothemis heteronycha (Calvert, 1909)

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Macrothemis imitans Karsch, 1890

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia Guiana, Paraguai, Uruguai,

Venezuela, Brasil: ES, MT, SC, SP.

Registros para o ES: Divino de São Lourenço.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Macrothemis musiva Calvert, 1898

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Francesa, Paraguai, Peru, Venezuela, Brasil: ES, MS, MT, RJ, RS, SP,

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

38

Macrothemis polyneura Ris, 1913

Distribuição geográfica: Argentina, Guiana, Peru, Suriname, Brasil: ES, SP.

Registros para o ES: Santa Teresa.

Bibliografia: HECKMAN (2006).

Macrothemis pseudimitans Calvert, 1898

Distribuição geográfica: Colômbia, Equador, Venezuela, Brasil: ES, MT, RJ.

Registros para o ES: Muniz freire.

Bibliografia: CALVERT (1909); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Macrothemis rupicola Rácenis, 1957

Distribuição geográfica: Guiana Francesa, Venezuela, Brasil: ES

Registros para o ES: Santa Teresa.

Bibliografia: HECKMAN (2006).

Comentários: Primeiro registro para o estado.

Miathyria Kirby, 1889

Miathyria marcella (Selys in Sagra, 1857)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Uruguai, Venezuela, Brasil: ES, MS, MT, RJ,

SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Linhares, São Mateus, Serra e

Vitória.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); SOUZA et al.

(1999).

Miathyria simplex (Rambur, 1842)

Distribuição geográfica: Equador, Guiana, Guiana Francesa, Peru, Venezuela,

Brasil: ES, MS, RJ, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra e Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); SOUZA et al.

(1999).

39

Micrathyria Kirby, 1889

Micrathyria almeidai Santos, 1945

Distribuição geográfica: Brasil: ES, DF, GO, MG, RJ, SP.

Registros para o ES: Santa Maria de Jetibá.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Micrathyria artemis Ris, 1911

Distribuição geográfica: Argentina, Guiana, Guiana Francesa, Suriname, Peru,

Venezuela, Brasil: ES, AM, AP, MG, MT, PA.

Registros para o ES: Pedro Canário e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA et al. (2002); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006); SANTOS (1945).

Micrathyria atra (Martin, 1897)

Distribuição geográfica: América Central, Argentina, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Peru, Suriname, Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, AM, AP, BA, MG,

PA, PE, RJ.

Registros para o ES: Conceição da Barra e Linhares.

Bibliografia: COSTA et al. (2002); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Micrathyria borgmeieri Santos, 1947

Distribuição geográfica: Brasil: ES, PR, RJ, SP.

Registros para o ES: Jacaraípe.

Bibliografia: ASSIS & COSTA (1994); COSTA et al. (2002); COSTA & OLDRINI

(2005); HECKMAN (2006).

Micrathyria catenata Calvert, 1909

Distribuição geográfica: América Central, Argentina, Equador, Guiana

Francesa, Peru, Suriname, Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, AM, BA, DF, MA,

MG, MS, MT, PA, RJ, SC, SP.

40

Registros para o ES: Aracruz, Conceição da Barra, Guarapari, Jacaraípe Santa

Maria de Jetibá e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA et al. (2002); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Micrathyria didyma (Selys in Sagra, 1857)

Distribuição geográfica: América Central, Caribe, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, PE, RJ.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Jacaraípe e Linhares.

Bibliografia: COSTA et al. (2002); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Micrathyria hesperis Ris, 1911

Distribuição geográfica: Argentina, Venezuela, Brasil: ES, BA, CE, GO, MG,

MS, MT, PA, PI, PE, PR, RJ, RS, SP.

Registros para o ES: Baixo Guandú, Colatina, Ecoporanga, Governador

Lindemberg, Itaguaçú, Santa Teresa, São Mateus e São Roque do Canaã.

Bibliografia: ASSIS & COSTA (1994); COSTA et al. (2002); COSTA & OLDRINI

(2005); DAMACENO et. al. (2014); HECKMAN (2006).

Micrathyria hypodidyma Calvert, 1906

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Paraguai, Uruguai, Brasil: ES, BA,

DF, GO, MG, PR, RJ, RS, SC, SP.

Registros para o ES: Baixo Guandú, Conceição da Barra, Colatina, Jacaraípe,

Linhares, Muniz freire e Santa Teresa.

Bibliografia: CALVERT (1909); COSTA et al. (2002); COSTA & OLDRINI

(2005); HECKMAN (2006); SANTOS (1955).

Micrathyria iheringi Santos, 1946

Distribuição geográfica: Equador, Brasil: ES, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra e Linhares.

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005);

HECKMAN (2006).

41

Micrathyria laevigata Calvert, 1909

Distribuição geográfica: América Central, Colômbia, Equador, Peru, Trinidade,

Venezuela, Brasil: ES, MS, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Micrathyria mengeri Ris, 1919

Distribuição geográfica: América Central, Colômbia, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Peru, Suriname, Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, GO, MA, MG, RJ.

Registros para o ES: Linhares.

Bibliografia: ASSIS & COSTA (1994); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006); SOUZA & COSTA (2002).

Micrathyria ocellata Martin, 1897

Distribuição geográfica: América Central, Argentina, Bolívia, Colômbia, Guiana

Francesa, Peru, Suriname, Trinidade, Brasil: ES, AC, BA, CE, MG, MS, PA, PE,

PR, RJ, SC SP.

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Conceição da Barra, Muniz freire e Santa

Teresa.

Bibliografia: ASSIS & COSTA (1994); CALVERT (1909); COSTA & OLDRINI

(2005); HECKMAN (2006); SANTOS (1949)

Micrathyria pirassunungae Santos, 1953

Distribuição geográfica: Brasil: ES, DF, GO, MG, MT, RJ, SP.

Registros para o ES: Santa Teresa e Vitória.

Bibliografia: ASSIS & COSTA (1994); COSTA et al. (2002); COSTA & OLDRINI

(2005); HECKMAN (2006).

Micrathyria pseudeximia Westfall, 1992

Distribuição geográfica: América Central, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana

Francesa, Paraguai, Suriname, Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, AM, GO, MA,

MG, MT, PA, PR, RJ.

Registros para o ES: Conceição da Barra e Linhares.

42

Bibliografia: COSTA et al. (2002); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Micrathyria spinifera Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Bolívia, Equador, Guiana Francesa, Peru, Suriname,

Venezuela, Brasil: ES, AM, AP, DF, PA, RJ.

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Bibliografia: COSTA et al. (2002); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Micrathyria stawiarskii Santos, 1953

Distribuição geográfica: Brasil: ES, DF, GO, MG, PR, RJ, RS, SC, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Linhares, Santa Maria de Jetibá e

Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA et al. (2002); COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA

& OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); SANTOS (1953).

Nephepeltia Kirby, 1889

Nephepeltia flavifrons (Karsch, 1889)

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Guiana Francesa, Paraguai,

Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, MS, RJ, RS, SP.

Registros para o ES: Ecoporanga.

Bibliografia: DAMACENO et. al. (2014); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006).

Nephepeltia phryne (Perty, 1833)

Distribuição geográfica: América Central, Argentina, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, MS, RJ, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Oligoclada Karsch, 1890

43

Oligoclada abbreviata (Rambur, 1842)

Distribuição geográfica: Equador, Guiana, Guiana Francesa, Peru, Suriname,

Venezuela, Brasil: ES, AM, BA, MG, PA, PE, RJ, RO, RR, SP.

Registros para o ES: Colatina, Linhares e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005);

HECKMAN (2006).

Oligoclada walkeri Geijskes, 1931

Distribuição geográfica: Equador, Guiana, Guiana Francesa, Peru, Suriname,

Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, PA, MT.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Orthemis Hagen, 1861

Orthemis ambinigra Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Argentina, Brasil: ES, BA, MG, PE, RJ, RS, SC.

Registros para o ES: Colatina e Santa Teresa.

Bibliografia: BLANKE (2008); SANTOS (1967); HECKMAN (2006).

Orthemis attenuata (Erichson in Schomburgk, 1848)

Distribuição geográfica: Jamaica, Guiana, Guiana Francesa, Peru, Suriname,

Venezuela, Brasil: ES.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Orthemis concolor Ris, 1919

Distribuição geográfica: Equador, Guiana, Guiana Francesa, Peru, Suriname,

Trinidade, Venezuela, Brasil: ES.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Orthemis cultriformis Calvert, 1899

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: AM, ES, MT RJ,

SP.

44

Registros para o ES: Ecoporanga.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et. al. (2014); HECKMAN

(2006).

Orthemis discolor (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Chile, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Uruguai, Venezuela, Brasil: ES,

MG, MS, MT, RJ, SP.

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Guarapari e Santa Maria de Jetibá.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Orthemis ferruginea (Fabricius, 1775)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Chile, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Paraguai, Peru; Suriname, Uruguai, Venezuela, Brasil: ES,

MG, MS, RJ, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Orthemis levis Calvert, 1906

Distribuição geográfica: México, Venezuela Brasil: ES

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Pantala Hagen, 1861

Pantala flavescens (Fabricius, 1798)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Chile, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Uruguai, Venezuela, Brasil: ES

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Conceição da Barra. Ecoporanga,

Linhares e São Roque do Canaã.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et. al. (2014); HECKMAN

(2006); SOUZA et al. (1999).

Perithemis Hagen, 1861

Perithemis capixaba Costa, De Souza & Muzón, 2006

45

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Registros para o ES: Baixo Guandú.

Bibliografia: COSTA et al. (2006); COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN

(2006); SOUZA et al. (1999).

Perithemis electra Ris, 1930

Distribuição geográfica: Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana Francesa,

Paraguai, Peru, Venezuela, Brasil: ES, MT.

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); SANTOS (1970).

Perithemis icteroptera (Selys, in Sagra, 1857)

Distribuição geográfica: Argentina, Brasil: ES, RJ, SP.

Registros para o ES: Alfredo chaves e Santa Teresa.

Bibliografia: MUZON & VON ELLENRIEDER (1999); HECKMAN (2006).

Comentários: Apesar de registrada para o estado a espécie não consta na lista

de Odonatas do Espírito Santo até o momento.

Perithemis lais (Perty, 1833)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Peru, Venezuela, Brasil: AM, ES, MS, PA, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Ecoporanga, Governador

Lindemberg e Linhares

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Perithemis mooma Kirby, 1889

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Uruguai, Venezuela, Brasil: ES, MG, MS, MT,

RJ, SC, SP.

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Conceição da Barra, Guarapari,

Governador Lindemberg, Linhares, Presidente Kennedy, Santa Maria de Jetibá,

Santa Teresa e São Roque do Canaã.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

46

Perithemis thais Kirby, 1889

Distribuição geográfica: Argentina, Costa Rica, Equador, Trinidade, Guiana,

Guiana Francesa, Paraguai, Peru, Venezuela, Brasil: ES, MS, MT, RJ, SP.

Registros para o ES: Aracruz e Conceição da Barra.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); MUZON & VON ELLENRIEDER

(1999); SPINDOLA et al. (2001); HECKMAN (2006).

Planiplax Muttkowski, 1910

Planiplax erythropyga (Karsch, 1891)

Distribuição geográfica: Argentina, Uruguai, Brasil: ES, RS.

Registros para o ES: Guarapari.

Bibliografia: HECKMAN (2006).

Comentários: Primeiro registro para o estado.

Planiplax phoenicura Ris, 1912

Distribuição geográfica: Guiana, Guiana Francesa, Suriname, Trinidade,

Venezuela, Brasil: ES, MG, RJ, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra e Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Rhodopygia Kirby, 1889

Rhodopygia cardinalis (Erichson in Schomburgk, 1848)

Distribuição geográfica: Equador, Guiana, Guiana Francesa, Peru, Suriname,

Venezuela, Brasil: AM, ES, MT, PA, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Rhodopygia hollandi Calvert, 1907

Distribuição geográfica: Peru, Trinidad, Venezuela, Suriname, Brasil: ES, MT,

SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

47

Tauriphila Kirby, 1889

Tauriphila argo (Hagen, 1869)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Paraguai, Peru, Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, MS, RJ, SP.

Registros para o ES: Governador Lindemberg e Santa Maria de Jetibá.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Tauriphila xiphea Ris, 1913

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Brasil: ES

Registros para o ES: Conceição da Barra e Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Tholymis Hagen, 1867

Tholymis citrina Hagen, 1867

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Chile, Equador, Guiana, Guiana

Francesa México, Paraguai, Peru, Venezuela, Brasil: ES

Registros para o ES: Ituanas, Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Tramea Hagen, 1861

Tramea abdominalis (Rambur, 1842)

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Equador, Paraguai, Peru,

Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, MS, RJ, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006).

Tramea binotata (Rambur, 1842)

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Equador, Guiana Francesa,

Paraguai, Peru, Suriname, Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, MT, RJ, SP.

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Guarapari, Linhares e Vila Velha.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); SOUZA et al.

(1999).

48

Tramea calverti Muttkowski, 1910

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Peru, Suriname, Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, SP.

Registros para o ES: Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); SOUZA et al.

(1999).

Tramea cophysa Hagen, 1867

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Trinidade, Equador, Galápagos,

Guiana, Paraguai, Peru, Uruguai, Venezuela, Brasil: ES, MS, MT, RJ, SP.

Registros para o ES: Guarapari, Linhares, Santa Leopoldina, Serra e Vila Velha.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DeMARMELS & RÁCENIS (1982)

HECKMAN (2006).

Zenithoptera Selys, 1869

Zenithoptera anceps Pujol-Luz, 1993

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Registros para o ES: Aracruz, Conceição da Barra, Linhares e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005);

HECKMAN (2006); PUJOT-LUZ (1993); PUJOL-LUZ & FONSECA (1997).

Zenithoptera fasciata (Linnaeus, 1758)

Distribuição geográfica: Colômbia, Equador, Guiana, Guiana Francesa, Peru,

Suriname, Trinidade, Venezuela, Brasil: ES, MT.

Registros para o ES: Ecoporanga.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et. al. (2014); HECKMAN

(2006).

Zenithoptera lanei Santos, 1941

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Peru, Venezuela, Brasil: ES, SP.

Registros para o ES: Conceição da barra e Linhares.

49

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); PUJOL-LUZ &

FONSECA (1997).

Zenithoptera viola Ris, 1910

Distribuição geográfica: Guiana Francesa, Paraguai, Venezuela, Brasil: ES,

MT, SP.

Registros para o ES: Aracruz, Conceição da Barra e Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); HECKMAN (2006); PUJOL-LUZ &

FONSECA (1997).

ZYGOPTERA Selys, 1854 (45 Gêneros)

CALOPTERYGIDAE Selys, 1850

Hetaerina Hagen in Selys, 1853

Hetaerina auripennis (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Brasil: PA, RO, MT, SP, ES

Registros para o ES: Conceição da barra, Ecoporanga, Guarapari, Linhares,

Muniz Freire, Santa Leopoldina, Santa Teresa e Viana.

Bibliografia: CALVERT (1909); COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et. al.

(2014); LENCIONI (2005).

Hetaerina brightwelli (Kirby, 1823)

Distribuição geográfica: Brasil: ES, PA, RJ, SP

Registros para o ES: Atílio Vivácqua e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2005).

Hetaerina caja Hagen in Selys, 1853

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Registros para o ES: na literatura não constam detalhes sobre a distribuição no

estado.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2005).

50

Hetaerina curvicauda Garrison, 1990

Distribuição geográfica: Peru, Brasil: ES, RO

Registros para o ES: Linhares.

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Bibliografia: LENCIONI (2005).

Hetaerina erythrokalamus Garrison, 1990

Distribuição geográfica: Venezuela, Brasil: ES, RO

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Bibliografia: LENCIONI (2005).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Hetaerina hebe Selys, 1853

Distribuição geográfica: Brasil: ES, SP

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2005).

Hetaerina longipes (Hagen in Selys, 1853)

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Brasil: ES, RJ, SC, SP

Registros para o ES: Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2005).

Hetaerina mendezi Jurzitza, 1982

Distribuição geográfica: Argentina, Brasil: ES, SC

Registros para o ES: Atílio Vivácqua e Conceição da Barra.

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Bibliografia: LENCIONI (2005).

Hetaerina proxima Selys, 1853

Distribuição geográfica: Argentina, Brasil: ES, PA, RJ, SP

Registros para o ES: Santa Maria de Jetibá, Santa Teresa e São Roque do

Canaã.

Bibliografia: LENCIONI (2005).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

51

Hetaerina rosea Selys, 1853

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Paraguai, Peru, Uruguai, Brasil:

BA, ES, MG, MT, RJ, RO, RS, SP

Registros para o ES: Conceição da Barra, Divino de São Lourenço, Linhares,

Santa Leopoldina e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2005).

Hetaerina simplex Selys,1853

Distribuição geográfica: Paraguai, Brasil: ES, MG

Registros para o ES: Divino São Lourenço e Domingos Martins.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2005).

COENAGRIONIDAE Kirby, 1890

Acanthagrion Selys, 1876

Acanthagrion cuyabae Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Bolívia, Brasil: ES, MT, RS, SP

Registros para o ES: Muniz Freire e Ecoporanga.

Bibliografia: CALVERT (1909); DAMACENO et al. (2014); LENCIONE (2006);

Comentários: haviam registros, no entanto, até o momento não estava presente

na lista do Espírito Santo.

Acanthagrion gracile (Rambur, 1842)

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Paraguai, Uruguai, Brasil: BA, ES,

MT, RJ, RS, SP

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Ecoporanga, Santa Leopoldina, Santa

Teresa e São Roque do Canaã.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et al. (2014); LENCIONE

(2006).

Acanthagrion lancea Selys, 1876

52

Distribuição geográfica: Argentina, Equador, Paraguai, Peru, Brasil: ES, RS,

SC, SP

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Santa Leopoldina, Santa Teresa e São

Roque do Canaã.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2006).

Acanthagrion minutum Leonard, 1977

Distribuição geográfica: Bolívia, Peru, Venezuela, Brasil: ES, SP

Registros para o ES: Guarapari e Linhares.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Acanthagrion temporale Selys, 1876

Distribuição geográfica: Argentina, Venezuela, Brasil: BA, ES, MG, MT, RO,

SP

Registros para o ES: Guarapari.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2006).

Aceratobasis Kennedy, 1920

Aceratobasis cornicauda (Calvert, 1909)

Distribuição geográfica: Brasil: BA, ES

Registros para o ES: Conceição da Barra, Guarapari, Jacaraípe, Linhares,

Pedro Canário, Santa Teresa, Serra e Vitória.

Bibliografia: COSTA (1971); COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONE (2006);

VON ELLENRIEDER & GARRISON (2008).

Comentários: Espécie ameaçada de extinção no Brasil, na categoria VU, de

acordo com a Portaria N° 444 de 17 de dezembro de 2014.

Aceratobasis mourei (Santos, 1970)

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Registros para o ES: Conceição da Barra e Guarapari.

53

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005);

LENCIONI (2004); LENCIONE (2006).

Comentários: Espécie ameaçada de extinção no Brasil, na categoria EN, de

acordo com a Portaria N° 444 de 17 de dezembro de 2014.

Argia Rambur, 1842

Argia lilacina Selys, 1865

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Paraguai, Uruguai, Brasil: ES, MG,

MT, SP.

Registros para o ES: Atílio Vivácqua e São Roque do Canaã.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Argia modesta Selys, 1865

Distribuição geográfica: Brasil: ES, MG, RJ, SP.

Registros para o ES: São Roque do Canaã.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Argia mollis Hagen in Selys, 1865

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Paraguai, Brasil: ES, AM, MG, MT,

RO, SP.

Registros para o ES: São Roque do Canaã.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Argia smithiana Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Bolívia, Brasil: ES, GO, MG, MT.

Registros para o ES: São Roque do Canaã.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Argia sordida Hagen in Selys, 1865

54

Distribuição geográfica: Brasil: ES, MG, RJ, SP.

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Guarapari e Santa Teresa.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Argia tamoyo Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Bolívia, Brasil: ES, MG, MT, RJ.

Registros para o ES: São Roque do Canaã.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Cyanallagma Kennedy, 1920

Cyanallagma interruptum (Selys, 1876)

Distribuição geográfica: Argentina, Chilie, Uruguai, Brasil: ES, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Comentários: Sem registro de localização.

Enallagma Charpentier, 1840

Enallagma cheliferum (Selys, 1876)

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Registros para o ES: Colatina e Vitória.

Bibliografia: SANTOS (1956).

Comentários: Haviam registros, no entanto, até o momento não estava presente

na lista do Espírito Santo.

Enallagma coecum (Hagen, 1861)

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Comentários: Sem registro de localização.

Enallagma novaehispaniae Calvert, 1907

55

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Equador, Peru, Trinidade &

Tobago, Venezuela, Brasil: ES, SP.

Registros para o ES: Ecoporanga, Santa Teresa e Viana.

Bibliografia: DAMACENO et al. (2014); LENCIONE (2006).

Comentários: haviam registros, no entanto, até o momento não estava presente

na lista do Espírito Santo.

Epipleoneura Williamson, 1915

Epipleoneura machadoi Rácenis, 1960

Distribuição geográfica: Brasil: ES, MG.

Registros para o ES: Baixo Guandú.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2006).

Epipleoneura metallica Rácenis, 1955

Distribuição geográfica: Brasil: ES, MG.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Comentários: Sem registro de localização.

Epipleoneura Venezuelensis Rácenis, 1955

Distribuição geográfica: Venezuela, Brasil: ES, RO.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Comentários: Sem registro de localização.

Forcepsioneura Lencioni, 1999

Forcepsioneura lucia Machado, 2000

Distribuição geográfica: Brasil: ES, MG.

Registros para o ES: Santa Tereza.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Forcepsioneura sancta (Hagen in Selys, 1860)

Distribuição geográfica: Colômbia, Guiana Francesa, Brasil: ES, MG, RJ, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Comentários: Sem registro de localização.

56

Homeoura Kennedy, 1920

Homeoura chelifera (Selys,1876)

Distribuição geográfica: Argentina, Venezuela, Uruguai, Brasil: ES, BA, MG,

RJ, RS, SP.

Registros para o ES: Linhares e Santa Tereza.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); VON ELLENRIEDER (2008).

Idioneura Selys, 1860

Idioneura ancilla Selys, 1860

Distribuição geográfica: Brasil: ES, BA, RJ, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Guarapari, Ibiraçu, Jaguaré,

Linhares, Pedro Canário e Sooretama.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2006); SANTOS (1962).

Idioneura sp. n

Distribuição geográfica: Brasil: ES

Registros para o ES: Conceição da Barra, Pedro Canário e Sooretama.

Comentários: Espécie sem descrição até o momento.

Ischnura Charpentier, 1840

Ischnura capreolus (Hagen, 1861)

Distribuição geográfica: Argentina, Colômbia, Equador, Guiana, Guiana

Francesa, Paraguai, Peru, Suriname, Trinidade & Tobago, Venezuela, Brasil:

ES, BA, MT, PA, PE, RJ, RS, SP.

Registros para o ES: Muniz Freire, Conceição da Barra, Linhares, Presidente

Kennedy, Santa Leopoldina, Santa Maria de Jetibá, Santa Teresa e São Roque

do Canaã.

Bibliografia: CALVERT (1909); COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2006).

Ischnura fluviatilis Selys, 1876

57

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Chile, Guiana Francesa, Paraguai,

Uruguai, Venezuela, Brasil: ES, MT, PA, RJ, RS, SP.

Registros para o ES: Aracruz, Guarapari e Linhares.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2006).

Ischnura ramburii (Selys, 1850)

Distribuição geográfica: Chile, Colômbia, Equador, Guiana Francesa,

Paraguai, Peru, Suriname, Trinidade & Tobago, Venezuela, Brasil: ES.

Registros para o ES: Linhares.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Havia registro, no entanto, até o momento não estava presente

na lista do Espírito Santo.

Leptagrion Selys, 1876

Leptagrion aculeatum Santos,1965

Distribuição geográfica: Guiana Francesa, Venezuela, Brasil: ES, AP, PA.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2006).

Comentários: Sem registro de localização.

Leptagrion acutum Santos, 1961

Distribuição geográfica: Brasil: ES.

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Bibliografia: COSTA & GARRISSON (2001); FURIERI (2008); LENCIONI

(2006).

Comentários: a) Haviam registros, no entanto, até o momento não estava

presente na lista do Espírito Santo. b) Espécie ameaçada de extinção no Brasil,

na categoria CR, de acordo com a Portaria N° 444 de 17 de dezembro de 2014.

Leptagrion capixabae Santos, 1965

Distribuição geográfica: Brasil: ES.

Registros para o ES: Atílio Viváqua, Ecoporanga, Ibiraçu, Santa Teresa, São

Mateus e São Roque do Canaã.

58

Bibliografia: COSTA et al. (2009); DAMACENO et al. (2014); FURIERI et al.,

(2004); LENCIONE (2006).

Comentários: a) Haviam registros, no entanto, até o momento não estava

presente na lista do Espírito Santo. b) Espécie ameaçada de extinção no Brasil,

na categoria VU, de acordo com a Portaria N° 444 de 17 de dezembro de 2014.

Leptagrion dispar Selys, 1876

Distribuição geográfica: Brasil: ES, BA.

Registros para o ES: Conceição da barra, Linhares, Pedro Canário, Santa

Teresa, São Mateus, Sooretama e Vila Velha.

Bibliografia: LENCIONE (2006).

Comentários: Haviam registros, no entanto, até o momento não estava presente

na lista do Espírito Santo.

Leptagrion elongatum Selys, 1876

Distribuição geográfica: Brasil: ES, RJ, SP.

Registros para o ES: Aracruz e Conceição da Barra.

Bibliografia: COSTA et al. (2009); COSTA & GARRISSON (2001).

Comentários: Haviam registros, no entanto, até o momento não estava presente

na lista do Espírito Santo.

Leptagrion macrurum (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Brasil: ES, RJ, SC, SP.

Registros para o ES: Conceição da barra, Jacaraípe, Linhares, Santa Maria de

Jetibá e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & GARRISSON (2001); COSTA & OLDRINI (2005);

LENCIONI (2006); SANTOS (1962).

Leptagrion perlongum Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Brasil: ES, BA, MG, RJ, SP.

Registros para o ES: Aracruz, Castelo, Conceição da barra, Guarapari,

Itaguaçu, Jacaraípe, Presidente Kenedy e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA et al. (2009); COSTA & GARRISSON (2001). DeMARCO

& FURIERI (2000);

59

Comentários: Haviam registros, no entanto, não estava presente na lista do

Espírito Santo até o momento.

Leptagrion porrectum Selys, 1876

Distribuição geográfica: Brasil: ES.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Jaguaré, Linhares e Sooretama.

Bibliografia: COSTA et al. (2009); COSTA & GARRISSON (2001); FURIERI et

al., (2004).

Comentários: a) Haviam registros, no entanto, não estava presente na lista do

Espírito Santo até o momento. b) Espécie ameaçada de extinção no Brasil, na

categoria EN, de acordo com a Portaria N° 444 de 17 de dezembro de 2014.

Mecistogaster Rambur, 1842

Mecistogaster amalia (Burmeister, 1839)

Distribuição geográfica: Argentina, Brasil: ES, RJ, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Linhares e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2006).

Mecistogaster asticta Selys, 1860

Distribuição geográfica: Brasil: ES, MG, SP.

Registros para o ES: Santa Maria de Jatibá.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2006).

Metaleptobasis Calvert, 1907

Metaleptobasis selysi Santos, 1956

Distribuição geográfica: Brasil: ES, BA, RJ, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Linhares, Nova Almeida e Santa

Teresa.

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005);

GARRISON & ELLENRIEDER (2009); LENCIONI (2006); WAGNER & WISE

(1996).

Minagrion Santos, 1965

60

Minagrion canaanense Santos, 1977

Distribuição geográfica: Brasil: ES, MG.

Registros para o ES: Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005);

SANTOS (1967).

Nehalennia Selys, 1850

Nehalennia minuta selysi Kirby, 1890

Distribuição geográfica: Guiana Francesa, Suriname, Trinidade & Tobago,

Venezuela, Brasil: ES, BA, MA, MG, SP.

Registros para o ES: Vila Velha.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).]

Neoneura Selys, 1860

Neoneura bilinearis Selys, 1860

Distribuição geográfica: Bolívia, Colômbia, Guiana, Guiana Francesa, Peru,

Venezuela, Brasil: ES, PA, SP.

Registros para o ES: Muniz Freire.

Bibliografia: CALVERT (1909); COSTA & OLDRINI (2005).

Neoneura ethela Williamson, 1917

Distribuição geográfica: Bolívia, Paraguai, Brasil: ES, RS.

Registros para o ES: Linhares, Santa Maria de Jetibá e Santa Teresa.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Haviam registros, no entanto, não estava presente na lista do

Espírito Santo até o momento.

Neoneura sylvatica Hagen in Selys, 1886

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Venezuela, Brasil: ES, BA, MG,

MT, RJ, RO, SP.

Registros para o ES: Governador Lindemberg e Santa Teresa.

61

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Haviam registros, no entanto, não estava presente na lista do

Espírito Santo até o momento.

Oxyagrion Selys, 1876

Oxyagrion basale Selys, 1876

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Brasil: ES, GO, MG, MT.

Registros para o ES: Baixo Guandú, Conceição da Barra, Itaguaçu e Santa

Teresa.

Bibliografia: COSTA (1977); COSTA et al. (2000); COSTA & OLDRINI (2005).

Oxyagrion brevistigma Selys, 1876

Distribuição geográfica: Argentina, Brasil: ES, MG, PR, SC, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Comentários: Sem registro de localização.

Oxyagrion evanescens Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Argentina, Brasil: ES, GO, MG, MT, PR, RJ, SP.

Registros para o ES: Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA (1977); COSTA & OLDRINI (2005).

Oxyagrion hempeli Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Uruguai, Brasil: ES, GO, MG, RJ,

SP.

Registros para o ES: Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA (1977); COSTA & OLDRINI (2005).

Oxyagrion pavidum Hagen, 1876

Distribuição geográfica: Brasil: ES, AL, MG, MT, RJ, RS, SP.

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Baixo Guandú, Ecoporanga e Santa

Teresa.

Bibliografia: COSTA (1977); COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et al.

(2014).

62

Oxyagrion simile Costa, 1978

Distribuição geográfica: Brasil: ES, GO, MG, RJ, SP.

Registros para o ES: Baixo Guandú, Itaguaçú e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005).

Oxyagrion sulinum Costa, 1978

Distribuição geográfica: Brasil: ES, RS, SP.

Registros para o ES: Linhares.

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005).

Oxyagrion terminale Selys, 1876

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Paraguai, Uruguai, Brasil: ES, AM,

GO, MG, PA, RJ, RS, SC, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Comentários: Sem registro de localização.

Peristicta Hagen in Selys, 1860

Peristicta aeneoviridis Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Argentina, Paraguai, Brasil: ES, MG, SP.

Registros para o ES: Colatina e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); SANTOS (1968).

Peristicta jalmosi Pessacq & Costa, 2007

Distribuição geográfica: Brasil: ES.

Registros para o ES: Santa Teresa.

Bibliografia: LENCIONI (2006).

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Telagrion Selys, 1876

Telagrion longum Selys, 1876

63

Distribuição geográfica: Brasil: ES, BA, MG, MT, PA, PE, RJ, RS, SP.

Registros para o ES: Colatina, Conceição da barra, Linhares e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005);

SANTOS (1957).

Telebasis Selys, 1865

Telebasis corallina (Selys, 1876)

Distribuição geográfica: Venezuela, Brasil: ES, BA, MG, PA, RJ, RS, SP.

Registros para o ES: Atílio Vivácqua, Conceição da Barra, Ecoporanga,

Guarapari, Linhares e São Roque do Canaã

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et al. (2014); GARRISON

(2008).

Telebasis filiola (Perty, 1833)

Distribuição geográfica: Colômbia, Venezuela, Brasil: ES, BA, MT, PA, PE, RJ.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Linhares e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); GARRISON (2008).

Tigriagrion Calvert, 1909

Tigriagrion aurantinigrum Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Paraguai, Brasil: ES, MG, MT, SP.

Registros para o ES: Conceição da barra, Linhares, Presidente Kennedy, Santa

Teresa e Viana.

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Tuberculobasis Machado, 2009

Tuberculobasis costalimai (Santos, 1958)

Distribuição geográfica: Brasil: ES.

Registros para o ES: Conceição da barra e São Mateus.

Bibliografia: COSTA & MASCARENHAS (1998); COSTA & OLDRINI (2005);

MACHADO (2009); SANTOS (1958).

64

DICTERIADIDAE Montgomery, 1959

Heliocharis Selys, 1853

Heliocharis amazona Selys, 1853

Distribuição geográfica: Argentina, Bolívia, Colômbia, Equador, Guiana,

Guiana Francesa, Peru, Suriname, Venezuela, Brasil: ES, GO, MG, MT, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra.

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

HETERAGRIONIDAE Rácenis, 1959

Heteragrion Selys, 1862

Heteragrion aurantiacum Selys, 1862

Distribuição geográfica: Brasil: ES.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Jaguaré, Linhares e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); SANTOS (1970).

Heteragrion beschkii Hagen in Selys, 1862

Distribuição geográfica: Brasil: ES, RJ, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005).

Comentários: Sem registro de localização.

Heteragrion consors Hagen In Selys, 1862

Distribuição geográfica: Brasil: ES, BA, RJ, SP.

Registros para o ES: Cariacica, Conceição da Barra, Ecoporanga, Linhares e

Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DAMACENO et al. (2014); SANTOS

(1970).

Heteragrion dorsale Selys, 1862

Distribuição geográfica: Brasil: ES, RJ, SP.

Registros para o ES: Santa Teresa.

65

Comentários: Primeiro registro para o Espírito Santo.

Heteragrion petiense Machado, 1988

Distribuição geográfica: Brasil: ES, MG.

Registros para o ES:

Bibliografia: BLANKE (2008).

Comentários: Apesar de registrada para o estado a espécie não constava na

lista do Espírito Santo até o momento.

LESTIDAE Calvert, 1901

Lestes Leach in Brewster, 1815

Lestes bipupillatus Calvert, 1909

Distribuição geográfica: Argentina, Venezuela, Brasil: ES, MT, RJ, RS, SP.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005);

Comentários: Sem registro de localização.

Lestes forficula Rambur, 1842

Distribuição geográfica: Argentina, Caribe, Guiana Francesa, Peru, Trinidade,

Venezuela, Brasil: ES, MG, MT.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Ecoporanga, Guarapari, Presidente

Kennedy e Serra.

Bibliografia: BLANKE (2008); DAMACENO et al. (2014).

Comentários: Apesar de registrada para o estado a espécie não constava na

lista do Espírito Santo até o momento.

Lestes pictus Hagen in Selys, 1862

Distribuição geográfica: Argentina, Peru, Brasil: ES, MT, RJ, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra e Jacaraípe.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); SANTOS (1972).

Lestes tricolor Erichson in Schomburgk, 1848

Distribuição geográfica: Argentina, Guiana, Brasil: ES, RJ, SC.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005);

66

Comentários: Sem registro de localização.

MEGAPODAGRIONIDAE Calvert, 1913

Allopodagrion Förster, 1910

Allopodagrion contortum (Hagen in Selys, 1862)

Distribuição geográfica: Argentina, Brasil: ES, SC.

Registros para o ES: Alegre, Santa Leopoldina, Santa Maria de Jetibá, São

Roque do Canaã e Santa Teresa.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); DeMARMELS (2001).

PERILESTIDAE Kennedy, 1920

Perilestes Hagen in Selys, 1862

Perilestes fragilis Hagen in Selys, 1862

Distribuição geográfica: Brasil: ES, MG, RJ, SP.

Registros para o ES: Conceição da Barra, Linhares e Santa Maria de Jetibá.

Bibliografia: COSTA & OLDRINI (2005); LENCIONI (2005).

Discussão

Com a realização deste trabalho o Espírito Santo passou a contar com 217

espécies, 72 gêneros e 11 famílias. Algumas alterações foram feitas na lista já

existente para o estado (Costa & Oldrini, 2005), sendo responsáveis pelo

decréscimo de 180 para 176 espécies. As principais alterações constam para

nomenclaturas diferentes, porém, que correspondem a mesma espécie, indicada

com um asterisco (*) para nomenclatura vigente, neste caso temos:

Acanthagrion cuneatum Selys, 1876 e Acanthagrion gracile (Rambur, 1842) *;

Leptagrion auriceps San Quentin, 1960 e Leptagrion macrurum (Burmeister,

1839)*; Zenithoptera americana (Linnaeus, 1758) e Zenithoptera fasciata

(Linnaeus, 1758)*; Nephepeltia phryne tupyensis Santos, 1950, Nephepeltia

phryne phryne (Perty, 1834) e Nephepeltia phryne (Perty, 1833)*. E para as

67

espécies que mudaram de gênero, dois asterisco (**) indicam a Nomenclatura

vigente: Gynothemis heteronycha (Calvert, 1909) e Macrothemis heteronycha

(Calvert, 1909)**; Gynothemis musiva Calvert, 1909 e Macrothemis musiva

Calvert, 1898**; Leptobasis costalimai Santos, 1957 e Tuberculobasis costalimai

(Santos, 1957)**; Telagrion cornicauda (Calvert, 1909) e Aceratobasis

cornicauda (Calvert, 1909)**; Telagrion mourei Santos, 1970 e Aceratobasis

mourei (Santos, 1970)**. As modificações foram feitas a partir da lista de

sinonímias de Garrison (2016).

Apresentamos 39 espécies que não estavam presentes na lista anterior sendo

elas representadas por 17 Anisopteros (Anax concolor Brauer, 1865;

Brachymesia furcata (Hagen, 1861); Elga newtonsantosi Machado, 1992;

Erythemis carmelita Williamson, 1923; Erythrodiplax clitella Borror, 1942;

Erythrodiplax melanorubra Borror, 1942; Idiataphe amazonica (Kirby, 1889);

Idiogomphoides ictinia (Selys, 1878); Lauromacromia melanica Pinto & Carvalho,

2010; Macrothemis polyneura Ris, 1913; Macrothemis pseudimitans Calvert,

1898; Micrathyria almeidai Santos, 1945 ; Oligoclada abbreviata (Rambur, 1842);

Orthemis ambinigra Calvert, 1909; Planiplax erythropyga (Karsch, 1891); Tramea

calverti Muttkowski, 1910 e Zenithoptera lanei Santos, 1941) e por 22

Zygopteros (Acanthagrion cuyabae Calvert, 1909; Acanthagrion minutum

Leonard, 1977 ; Argia mollis Hagen in Selys, 1865; Argia smithiana Calvert, 1909;

Argia tamoyo Calvert, 1909; Enallagma cheliferum (Selys, 1876); Enallagma

novaehispaniae Calvert, 1907; Epipleoneura Venezuelensis Rácenis, 1955;

Forcepsioneura lucia Machado, 2000; Hetaerina curvicauda Garrison, 1990;

Hetaerina erythrokalamus Garrison, 1990; Hetaerina mendezi Jurzitza, 1982;

Hetaerina proxima Selys, 1853; Heteragrion dorsale Selys, 1862; Heteragrion

petiense Machado, 1988;Ischnura ramburii (Selys, 1850); Leptagrion porrectum

Selys, 1876; Lestes forficula Rambur, 1842; Neoneura ethela Williamson, 1917;

Neoneura sylvatica Hagen in Selys, 1886; Peristicta jalmosi Pessacq & Costa,

2007 e Tigriagrion aurantinigrum Calvert, 1909), além de uma espécie nova,

representada por Idioneura sp. n*.

Dentre as duas subordens, Anisoptera obteve maior número com 62,67% das

espécies listadas, sendo as famílias Libellulidae, Aeshnidae, e Gomphidae as

mais representativas, com 45.16%, 11.06% e 4.61% respectivamente. Para a

68

subordem Zygoptera (37,33%) as famílias com maior proporção foram

Coenagrionidae e Calopterygidae com 26.73% e 4.61% do total. As famílias se

distribuem amplamente pelo território do Estado (fig.X).

Das 180 espécies previamente registradas para o estado, 60 não estão

contempladas nas coleções utilizadas para este estudo, e nem foram capturadas

e coletas recentes realizadas pela equipe LabSei. Além disso, várias espécies

listadas na atual lista carecem de informações geográficas, dessa forma, os

mapas de famílias não contemplam a distribuição de todas as espécies listadas.

Apesar de ser um dos menores estados brasileiros, o Espírito Santo apresenta

uma grande diversidade de Odonata, com base no banco de dados organizado

no presente trabalho e referências bibliográficas, muitas das espécies

registradas para o Estado do Espírito Santo são distribuídas pelo território

nacional, no entanto, a diversidade do ES (27,12% da diversidade do Brasil) se

aproxima mais à diversidade de outros estados do sudeste com proporções

maiores, como Minas Gerais e São Paulo. Baseando em seu acervo pessoal,

Machado (1998) obteve um total de 218 espécies para o Estado de Minas Gerais,

correspondendo a 27,25% das espécies brasileiras com número de 800 espécies

de libélulas, de acordo com Souza et al.(2007). Costa et, al. (2000) registrou 251

espécies para o Estado de São Paulo, equivalentes a 31% das espécies

registradas para o Brasil.

O fato da fauna de libélulas do Espírito Santo ser semelhante a de outros estados

do sudeste, pode ser explicado por apresentarem de biomas parecidos, sendo

Mata Atlântica predominante no Espírito Santo, estando este, também presente

nos outros estados. Para o Estado em questão, as Zonas Naturais do bioma

Mata Atlântica, estabelecidas no Atlas do Espírito Santo (2013), podem

esclarecer algumas questões sobre a distribuição de Odonata, pois há uma

maior concentração de espécies se dá em áreas classificadas como: terras

quentes, acidentadas e chuvosas, e área de terras de temperatura amenas,

acidentadas e chuvosas/secas (figura. X).

Um mapa de riqueza foi gerado, mostrando claramente a distribuição dos

odonatos, os pontos mais quentes podem ser explicados por estarem

principalmente nas áreas pesquisadas pela Doutora Karina Furieri em suas

69

expedições e projetos desenvolvidos no estado, como o Projeto Leptagrion

(figura. X). Os pontos frios, evidenciam a falta de conhecimento sobre este grupo

no Estado, a maioria das areas amostradas apresentam a ocorrencia de 1 a 5

espécies, sendo que ainda há grande parte do territorio que não foi amostrado.

Região com a do Alto Caparaó é um exemplo da carencia de estudos da fauna

odonatológica no Estado. O Parque Nacional do Caparaó, a segunda maior

Unidade de Conservação do Espírito Santo, só tem registro de um ponto de

coleta, que se refere a somente 2 individuo para o local (Hetaerina rosea e

Oligoclada abbreviata) isso indica a falta de estudos sobre a diversidade e a

distribuição de libélulas no Estado.

A atual lista vermelha do Brasil conta com 18 espécies de Odonata

ameaçadas de extinção, destas, nove são encontradas no presente trabalho,

sendo elas: Aceratobasis cornicauda; Aceratobasis mourei; Castoraeschna

januaria; Elasmothemis schubarti; Micrathyria borgmeieri; Leptagrion acutum;

Leptagrion capixabae ; Leptagrion porrectum e Heteragrion petienses.

A lacuna existente no conhecimento da fauna e da distribuição de espécies

Odonata no ES a avaliação do risco de extinção desse grupo que para (Cardoso

et al. 2011a, 2011b) essa dificuldade ocorre devido a quatro deficiências, o

déficit Linneano, no que diz respeito a muitas espécies serem descritas; o déficit

Wallaciano, onde se desconhece a distribuição das espécies descritas; déficit

Prestoniano, em que são desconhecidas as alterações no espaço e tempo e

abundâncias das espécies; e o déficit Hutchinsoniano, onde não se sabe a

sensibilidade das espécies às mudanças de habitat.

Para Silva et al. (2007) a espécie Leptagrion capixabae só foi incluída na lista de

espécies ameaçadas de extinção do Estado do Espírito Santo devido a sua

redescoberta na Estação Biológica de Santa Lúcia (Furieri et al., 2004), desta

forma, os autores mostram que locais não estudados escondem informações

relevantes sobre a fauna, e podem contribuir em adição às listas de espécies

70

ameaçadas e vulneráveis. Assim, o presente trabalho contribui para que essas

lacunas sejas fechadas.

71

REFERENCIAS

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82

CAPÍTULO 2

Diversidade e Composição de Odonata (Insecta) dos lagos do

Baixo Rio Doce

83

Introdução

A ordem Odonata representa um dos grupos mais antigos entre os seres alados,

que junto da ordem Ephemeroptera compõem um grupo de insetos primitivos em

que as formas adultas são incapazes de curvar as asas sobre o abdômen,

possuindo ainda, asas caracteristicamente dotadas de muitas nervuras

(MERRITT & CUMMINS, 1996).

O desenvolvimento destes indivíduos é hemimetabólico, ou seja, formado por

três fases: ovo, larva e adulto, sendo que em sua fase larval, os odonatos

dependem obrigatoriamente dos ambientes aquáticos dulcícolas, apresentando

necessidades específicas quanto às condições do habitat que ocupam, como

ambientes lóticos ou lênticos, perenes ou temporários, características físico-

químicas da água, o tipo de substrato, entre outras, para seu desenvolvimento (.

Já os adultos, popularmente conhecidos como libélulas, lava bunda, lavandeira,

entre outras denominações regionais, são terrestres, com machos defensores

ativos de seus sítios selecionados, mostrando-se territorialistas (BEDÊ &

MACHADO, 2002; CARVALHO & NESSIMIAN, 1998).

A estimativa é que mundialmente existem cerca de 7000 espécies de odonatas

(Kalkman et al., 2008), para o Brasil, aproximadamente 800 espécies de libélulas

são calculadas (Souza et al.,2007), e na região sudeste do país, no Estado do

Espírito Santo, de acordo com a lista de Odonata (Costa e Oldrini, 2005) contam-

se o equivalente a 180 espécies de Odonata com registros para 23 municípios

capixabas, dentre eles o município de Linhares.

Alguns trabalhos já registraram a ocorrência de odonatos em Linhares, como

Souza et. al. (1999); Costa & Garrisson (2001); Costa & Mascarenhas (1998);

Costa et al. (2002) e Pujol-Luz (1995). A região conta com dezenas de lagos,

distribuídos em domínios geomorfológicos distintos Hatushika (2007), que de

acordo com a Prefeitura municipal de Linhares, o número chega a 69.

Não há muitas informações sobre a origem e evolução destes corpos d’água

Hatushika (2007), no Brasil a gênese da maioria dos ecossistemas lacustres é

associada à dinâmica de rios (Bozzelli et al.,1992; Esteves, 1988), e a região do

baixo rio Doce é um destes ecossistemas mais característicos, principalmente

84

pelos processos geomorfológicos que lhes deram origem (BOZZELLI et

al.,1992).

Contando com toda sua diversidade em ambientes, processos de origem,

morfometria e a grande importância regional, o Vale do Rio Doce possui um dos

mais importantes sistemas de lagos do Brasil, no entanto, mesmo com grande

relevância, sendo fonte de abastecimento para populações das proximidades,

estes ecossistemas são pouco conhecidos cientificamente, principalmente em

Ecologia, embora, ainda no século XlX, naturalistas chamassem a atenção para

beleza da região (BOZZELLI et al.,1992; SAINT – HILAIRE, (1974).

Portanto, diante do contexto, estudos voltados para o conhecimento da ordem

Odonata nos Lagos do Baixo Rio Doce são importantes, pois a região vem sendo

extremamente explorada, havendo um grande desenvolvimento nas áreas da

agricultura, agropecuária, industrial e agroindustrial contribuindo para grande

impacto ambiental na região. Desta forma, o conhecimento da odonatofauna,

não se limita a descrição e compreensão da fauna do Vale do Baixo Rio Doce,

mas contribui na ampliação de informações tanto sobre a diversidade de

espécies, quanto à ecologia deste grupo em relação ao cenário em que se

encontram.

Assim, este estudo teve como objetivo Avaliar como algumas variáveis

ambientais influenciam na diversidade e composição da fauna de Odonata nos

lagos do baixo rio Doce. Para essa finalidade geral, a pesquisa vale-se de

objetivos específicos como: Realizar amostragens qualitativas (busca ativa);

Realizar amostragens quantitativas (Protocolo de Coleta Rápida ou RAP);

Estimar riqueza de espécies e interagir resultados com variáveis ambientais.

MATERIAL E MÉTODOS

Área de estudo

Essa pesquisa foi desenvolvida nos lagos do baixo rio Doce, no município de

Linhares, no Estado do Espírito Santo, Brasil (Figura 1), onde 13 lagos foram

escolhidos para serem estudados (Figura 2). Todo esse sistema lacustre é

85

chamado popularmente de lagoas, em alguns trabalhos e até mesmo nos mapas,

também são assim tratados. No entanto, nessa pesquisa foi adotada a

terminologia lagos, pois, as dimensões e características geomorfológicas que

possuem, assim os classifica (HATUSHIKA, 2007).

Os lagos pesquisados estão localizados em domínios geomorfológicos distintos,

entre o Platô Terciário e a Planície Costeira quaternária, encontram-se aqueles

que podem ser chamados de lagos externos (Hatushika, 2007; Suguio et

al.,1982), nesse domínio os lagos estudados foram: Cacimbas, Parda, Nova de

Povoação, e Salgada. Os chamados lagos internos são maiores, e estão

presentes em área de Planície de Tabuleiros, sobre sedimentos quaternários da

Formação Barreiras, sendo limitados pela planície aluvial do rio Doce (Bozzelli

et al., 1992; Hatushika, 2007), neste trabalho são representados pelos lagos

Juparanã, Nova, Palmas, Palminhas, Aguiar, de Dentro, Durão, Delfino, e do

Brás. Adotou-se a substituição dos nomes dos lagos por códigos como mostra a

Tabela I.

Há poucos estudos sobre a formação destes lagos, porém algumas pesquisas

realizadas nessa área revelam uma diversidade em seus processos de

formação, sendo o produto da dissecação de antigos vales fluviais, na última

Transgressão, e inundados no Holoceno com o amento do nível do mar Suguio

& Kohler (1992), onde o surgimento desses vales são devidos a reativação

tectônica ocorridas com a evolução do Rift Continental, com o evento de ruptura

do supercontinente Gondwana e abertura do oceano Atlântico (MELLO et al.,

2005).

A barragem dos lagos se dão principalmente pela sedimentação de rios afluentes

antigos (por ação marinha e fluvial) Bozzelli et al. (1992), e ainda movimentações

neotectônicas responsável pela estruturação do relevo na região (HATUSHIKA,

2007). Feixes de lineamentos na direção NW-SE (noroeste- sudeste) que

orientam o curso final do rio Doce, associa-se também, ao alinhamento das

desembocaduras dos corpos lacustres da região de Linhares (Mello et al., 2005).

Coletas, identificação e deposição

86

As campanhas foram feitas entre outubro de 2014 a janeiro de 2015 e Outubro

de 2015 a fevereiro de 2016. A primeira visita a cada lago foi para o

reconhecimento, observações sobre uso da terra, e uso e manutenção dos lagos,

e amostragem qualitativa por meio de busca ativa. Após as expedições de

reconhecimento da área, amostragens quantitativas foram feitas por meio de

Protocolo de Coleta Rápida de Odonata (RAP), que consistiu na contagem visual

do número de indivíduos de cada espécie presente em 300 m de corpos d’águas,

divididos em 60 segmentos de 5 m, os indivíduos de difícil identificação foram

coletados para confirmação taxonômica.

Este método de varredura (scan) foi definido de acordo com o protocolo de

De Marco (1998), o qual tem sido aplicado em estudos de Libélulas, gerando

estimativas pontuais em várias regiões do Brasil (Juen & De Marco 2011; Reis

et al. 2011; Pinto et al. 2012)

Para a coleta de adultos de Odonata, foram utilizadas redes entomológica

(puçás) com haste feita em alumínio nas seguintes dimensões: cabo retrátil com

cerca de 100 cm de comprimento, e cesta com aproximadamente 90cm de

comprimento e 40cm diâmetro.

Os espécimes foram colocados, ainda vivos, em envelopes entomológicos para

terem tempo de esvaziar seus intestinos, e assim possibilitar uma melhor

conservação. Posteriormente, no laboratório, eles foram imersos em acetona,

onde descansaram por 48h, para fixação da coloração dos exemplares, e então

colocados para secar, e finalmente postos em envelopes definitivos sobre uma

ficha de papel cartão, onde todos seus dados foram registrados, como sugerido

por Lencione (2006).

A identificação dos espécimes foram realizadas com base em Lencioni (2005;

2006), Heckman (2006) e Garrison et al. (2006; 2010), e uma série de artigos

pertinentes a cada táxon, além da comparação com exemplares previamente

identificados por outros especialistas.

O material analisado encontra-se depositado na Coleção Zoológica Norte

Capixaba (CZNC - Universidade Federal do Espírito Santo).

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Mata ciliar

Para cada lago foram escolhidos dois pontos, com maior e menor área de

vegetação ripária, assim, mediu-se a área total dessa vegetação que se estendia

pelos 300 m previamente escolhidos para os segmentos com o auxílio do

programa Google Earth®.

Vegetação aquática

Para cada ponto do lago, foram medidas a área de vegetação aquática , assim,

mediu-se a área total dessa vegetação que se estendia pelos 300 m previamente

escolhidos para os segmentos com o auxílio do programa Google Earth®.

Área dos lagos

A área total de cada lago foi medida a partir de arquivo shape do GEOBASES

(2002), banco de dados com informações geográficas do Espírito Santo,

utilizando-se o programa QGIS – Versão 2.8.4 “Wroclaw’ (SHERMAN, 2016),

selecionando a função medir área.

Transparência da água

As imagens dos lagos foram pré-processadas individualmente, onde tiveram

seus tons de cinza realçados, e posteriormente foi feita a composição colorida

RGB (bandas 5;4;3).

Para Florenzano (2008), a composição colorida realça corpos d’água com baixa

e alta carga sedimentar suspensa, influenciando a coloração destes com

variações de azul escuro e azul claro, respectivamente.

Cada banda realça uma feição específica, sendo que para o sensor utilizado (TM

Landsat 5), a banda 3 oferece boa resposta com corpos d’água e evidencia

características como o teor de sedimentos presentes neles ou suas

profundidades, onde o maior o índice de reflexão é dado para alta carga

sedimentar e maiores profundidades.

ANÁLISES ESTATÍSTICAS

Riqueza

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Foi utilizado o estimador não paramétrico, o Jackknife de primeira ordem, para a

estimativa de riqueza de espécies de Odonata. Essa estimativa possibilita

averiguar o número de famílias que não foram observadas, mas que

potencialmente ocorrem na área (Hellmann & Fowler 1999; Heltshe & Forrester

1983; Heltshe & Forrester 1985):

S Jack 1 = S obs + Q1

m-1

m

Onde:

Sobs = número total de espécies observadas em todas as amostras coletadas; m

= número total de amostras;

Qj = número de espécies que ocorrem em exatamente j amostras (Q1 é a

freqüência de espécies que ocorrem em apenas uma amostra (“uniques”).