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03/05/2017
1
Hemograma: Novos parâmetros e
recomendações para a hematoscopia
Marcos [email protected]
Vantagens
• Coeficiente de variação entre 1 e 2%.
• Custo Por Exame.
• Tempo.
• Maior acurácia.
• Maior reprodutibilidade.
Sistemas automatizados. φFl
eury
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Manual Automatizado
Hemácias ± 11% ± 1,0%
Leucócitos ± 16% ± 1,5%
Plaquetas ± 22% ± 2,0%
Reticulócitos ± 34% ± 5,0%
Hemoglobina 1 a 2% < 1,0%
VGM 9,5% < 1,0%
HGM 10,0% 0,6 a 1,2%
CHGM ---- 1,0 a 1,5%
Sistemas automatizados. φFl
eury
Espectrofotometria
Hemoglobina
Ótica
Leucócitos & diferencial
Plaquetas
Hemácias
Impedância
Hemácias & VGM
Plaquetas & VPM
Leucócitos
Fluorescência
Viabilidade de leucócitos
Eritroblastos
Reticulócitos
Sistemas automatizados. φFl
eury
Hemácias
Hemoglobina
VGM
Hematócrito
HGM
GHGM
Leucócitos
Plaquetas
Diferencial
IRF (H, M, L)
Reticulócitos / NRBCPDW
RDW
Sistemas automatizados. φFl
eury
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Variações no número de hemácias
Microcitose ↓ RBC Histograma de hemácias.esquizócitos
Policitemia ↓ RBC Contagem coincidente
Aglutininas frias ↓ RBC Falsa macrocitose.
Leucocitose ↑ RBC Contagem coincidente.
Sistemas automatizados. φFl
eury
Variações no número de leucócitos e plaquetas.
Leucemias ↓ WBC Fragilidade dos leucócitosInfecções virais
Aglutininas ↑ WBCPlaquetárias Agregados plaquetários.
↓ PLAQ
Quimioterapia ↑ PLAQ Fragmentos celulares.
Sistemas automatizados. φFl
eury
Parâmetro Linearidade Limites Aceitáveis
WBC (I) 0 a 99,9 K/ml ± 3,0%(O) 0 a 250 K/ml ± 4,0%
RBC 0 a 8 M/ ml ± 2,5%
Hemoglobina 0 a 24 g/dl ± 2,0%
VGM 50 a 200 fl. ± 3,0%
Plaquetas 0 a 2000 K/ml ± 7,0%
Sistemas automatizados. φFl
eury
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Série vermelha
• Hemácias (Hm)
• Hemoglobina (Hb)
• Hematócrito (Ht)
• Volume Globular Médio (VGM)
• Hemoglobina Globular Média (HGM)
• Concentração de Hemoglobina Globular Média (CHGM)
• Red Cell Distribution Width (RDW) RDW-CV / RDW-SD
• Reticulócitos (Ret) % / #
• Fração de Reticulócitos Imaturos (IRF)
• Hemoglobina Globular Média dos Reticulócitos (HGM-Ret)
• Fração de Hemácias Hipocrômicas (Hipo%)
Parâmetros automatizados. φFl
eury
Parâmetros automatizados
Parâmetro
VGM (fL)
HGM (pg)
CHGM (%)
RDW (%)
Aplicações
Classificação Morfológica
Determinação da hipocromia - (A. Ferropriva)
Detecção de esferócitos – Anemias hemolíticas
Anormalidade morfológica – úWl quando (↑)
Int J Lab Hematol. 2016 May; 38 Suppl 1:123-32
• Volume Globular Médio
VGM (fL) = x 10
• Hemoglobina Globular Média:
HGM (pg) = x 10
• Concentração de Hemoglobina Globular Média:
CHGM (g/dL) = x 100
Ht (%) RBC (x 106µL)
Hb (g/dL) RBC (x 106µL)
Hb (g/dL) Ht (%)
Índices hematimétricos. φFl
eury
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π r2 x h
3,14 x 3,752 x 2 = 88,3 fL
Aumento de 10% no diâmetro
π r2 x h
3,14 x 4,1252 x 2 = 117,6 fL
Failace R, 2009
• O VGM determinado pelo equipamento é muito mais preciso que o avaliado
visualmente.
Índices hematimétricos. φFl
eury
RDW – Indica a homogeneidade da população eritrocitária.
RDW-CV – SD na posição 60,65%.
Valor de referência -12 a 15%
RDW-SD – SD na posição 20 %.
Valor de referência - 37 fl
Índices hematimétricos. φFl
eury
VGMBaixo
VGMNormal
VGMAlto
Histograma de hemácias.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
φFl
eury
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Abertura
O eritrócito deve atingir o máximo de deformação.
Disco bicôncavo
Índices hematimétricos. É muito importante a maneira como a hemácia atravessa a abertura de
contagem.
A velocidade do fluxo faz com que as hemácias normais se deformem ao
atingirem a abertura de contagem.
φFl
eury
A capacidade de deformação das hemácias influencia na forma que o
analisador mede o tamanho da célula.
Quanto maior a concentração de hemoglobina menor a deformação
sofrida.
Célula normal – Volume =1x
Esferócitos – Volume =1,5 x
Se atravessa em ângulo reto - Volume = 2x
Índices hematimétricos. φFl
eury
Hemácias normocrômicas se deformam adequadamente ⇒ Ht exato ⇒ CHGM exato.
CHGM= Hb (g/dL) Ht (%)
Esferócitos (hipercrômicos) não se deformam ⇒ Ht superestimado ⇒ CHGM subestimado.
Hemácias hipocrômicas se deformam em demasia ⇒ VGM subestimado ⇒ Ht subestimado ⇒ CHGM superestimado.
VGM= Ht (%) Hm (x106/ml)
Índices hematimétricos. φFl
eury
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Os diluentes mais modernos não interferem na membrana eritrocitária e permitem uma pressão hidrodinâmica adequada durante o tempo de contagem.
Hemácias hipocrômicas ou esferócitos se deformam adequadamente ⇒Ht exato ⇒ CHGM exato.
Índices hematimétricos. φFl
eury
Esferotização – Cell-Dyn Ruby /3200 MCV Field Guideline v 1.0
Esferotização
• Processo isovolumétrico• Elimina os erros de deformação e de orientação
Índices hematimétricos. φFl
eury
Histograma de plaquetas. A construção é similar ao histograma de hemácias (RBC).
O discriminador móvel é usado para excluir:
Hemácias microcíticas.
Fragmentos eritrocitários.
Ruído elétrico
φFl
eury
O software busca pelo ponto mais baixo entre as curvas para posicionar o discriminador
HmPlaquetas HmPlaquetas
Tamanho celularTamanho celular
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Histograma de plaquetas. φFl
eury
Hm
Plaquetas
Tamanho celular
Polimetina fluorescente – ligação ao DNA e RNA de organelas citoplasmáticas
• Contagem de reticulócitos• Plaquetas com RNA• Eritroblastos
Análise do DNA/RNA φFl
eury
Plaquetas imaturas – plaquetas reticuladas
% de plaquetas imaturas
Determina a quantidade de plaquetas recentemente lançadas na circulação.
Indica a trombocitopoiese.
Plaq ↓ + IPF ↓= ↓ Produção
Plaq ↓ + IPF ↑ = ↑ Destruição
Plaquetas óticas / IPF. φFl
eury
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Contagem e avaliação de reticulócitos.
Fração de reticulócitos Imaturos IRF % 1,6 – 10,5
Reticulócitos de baixa fluorescência LFR % 89,9 – 98,4Reticulócitos de média fluorescência MFR % 1,6 – 9,5Reticulócitos de alta fluorescência HFR % 0 – 1,7
φFl
eury
Reticulócitos baixos + Baixo IRF Sem produçãoTransfusão
Reticulócitos baixos + Alto IRF ProduçãoSem Transfusão
A determinação da HGM-Ret possibilita a identificação da DF em estágios iniciais quando outros métodos ainda não são informativos
HGM dos Reticulócitos & IRF. φFl
eury
HGM-Ret
Aplicações clínicas
• Quantidade real de Fe disponível para a síntese de hemoglobina
• Detecção precoce da deficiência de ferro quando outros marcadores
bioquímicos podem sofrer interferências de infecções , inflamações ou
gravidez
• Monitora o tratamento com
eritropoietina.
φFl
eury
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Parâmetros Automatizados
Parâmetro
% Hipo
% Hiper
% Micro
IRF
HGM-Ret (pg)
VGM-Ret (fL)
Aplicações
Avalia a disponibilidade de Fe funcional - Status do Fe / 3 meses
Diagnóstico de esferocitose – hereditária / imunológica
Diagnóstico diferencial das A. Microcíticas e Hipocrômicas
Classificação das Anemias e monitoração do tratamento
Diagnóstico da eritropoiese Fe-deficiente – monitoração das A. carenciais. (VR: 28 -35pg)
Diagnóstico da eritropoiese Fe-deficiente – monitoração das A. carenciais.
Int J Lab Hematol. 2016 May; 38 Suppl 1:123-32
φFl
eury
Contagem de eritroblastos Correção da leucometriaMenor número de revisões manuais
Reticulócitos Monitoração de TMO, quimioterapia e anemias.
Percentual de células hipocrômicas Deficiência de ferroDisponibilidade de ferro para eritropoese. (s TfR)
Análise ótica da hemoglobina Reduz a inclusão de micrócitos na contagem plaquetária.
Poiquilocitose Alarmes para esquizócitos, e microcitose intensa (URI)
Sistemas automatizados
Intl Jnl Lab Hem.2009; 31: 277-297
φFl
eury
Contagem diferencial. • Elimina a interferência de hemácias por meio da hemólise.
• As células são tratadas para que o citoplasma se retraia ao redor do núcleo.
Leucócito Tratamento Célula p/contar
φFl
eury
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• Os discriminadores são posicionados entre os picos e os vales separando as
células por tamanho.
LD T1 T2 UD
Células mistas
Células grandes
Células pequenas
Contagem diferencial. φFl
eury
Linfócitos
Monócitos Neutrófilos
Tamanho celular
• Impedância elétrica
Granulócitos - grandes células
Linfócitos - pequenas células
Monócitos, eosinófilos e basófilos – células de médio tamanho.
• Funciona bem apontando as amostras que necessitam de revisão manual.
• Na ausência de alarmes (flags) a contagem é liberada e os percentuais de
eosinófilos e basófilos considerados normais.
Diferencial em três partes
Lab Hematol.2001; 7: 89-100
φFl
eury
Regras para a revisão de lâminas hematológicas (ISLH, 2001)
VR Regra
Leucometria (x 109/l) 4,0 – 10,0 < 3,5 ou > 12,0
Hemoglobina (g/dl) 12,0 – 18,0 < 10,0 ou > 18,0
VGM (fl) 80 – 100 < 80 ou > 102
CHGM (g/l) 31 -36 < 31 ou > 36
Plaquetas (x 109/l) 140 – 440 < 100 ou > 500
Linfócitos (%) 16 – 48 < 16 ou > 48
População mista (%) 1 – 10 < 1 ou > 15
Granulócitos (%) 35 – 75 < 45 ou > 78
Falsos negativos – 1,1 a 3,8%Redução do número de lâminas contadas – 30 a 45%
Contagem diferencial. φFl
eury
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• Separa os leucócitos em 5 grupos: linfócitos, neutrófilos, monócitos, eosinófilos e basófilos.
• Mais eficiência na separação das amostras que necessitam de revisão manual.
• Redução da quantidade de flags em relação aos sistemas de 3 partes.
• Inclusão de granulócitos imaturos, eritroblastos, linfócitos variantes e, em alguns equipamentos, células blásticas.
Contagem diferencial. φFl
eury
• VCS – volume, condutividade e dispersão da luz. (8.000 cel / amostra)
• Medida da impedância – volume celular
• Condutividade (radiofrequência) – estrutura interna , relação N/C, densidade nuclear e granularidade.
• Dispersão da luz – estrutura celular, forma e reflexibilidade.
Diferencial em 5 partes. φFl
eury
Blastos,Pró mielócitos
MielócitosMetamielócitos
Neutrófilos imaturos
Eosi
nó
filo
s Im
atu
rosLinfócitos
Reativos
Restos celulares, NRBC
Absorbância
Vo
lum
e
Diferencial em 5 partes. φFl
eury
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Ângulos de medição
0° indica o tamanho celular.
10° estrutura e complexidade celular.
90° polarizada lobularidade celular.
90° despolarizada diferencia eosinófilos baseado na capacidade
dos grânulos em despolarizar a luz .
Contagem diferencial. φFl
eury
Classificação e diferenciação.
Célula Tamanho Complexidade Lobularidade Granularidade Classificação
0o 10o 90o 90o
despolarizada 1ª 2ª 3ª 4ª
1165 162 116 32 Poli Neut - -
260 64 15 6 Mono - - Linfo
3140 79 21 99 Mono - - Mono
4148 182 104 118 Poli Eos - -
590 110 28 8 Mono - Baso -
φFl
eury
Contagem diferencial.
Anticorpos monoclonais Imunofenotipagem de células malignas
Conteúdo de DNA
Contagem de plaquetas (CD61)
Populações linfocitárias CD4 CD8
Fluorescência Maturidade de reticulócitos (IRF)
Plaquetas reticuladas (IPF)
Laser Hemácias fragmentadas
Contagem de plaquetas (RBC/PLT)
φFl
eury
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Regras para a revisão de lâminas hematológicas
Diferencial em 5 partes ou estendida. Consenso Internacional em Hematologia. (2009) - 41 regras
1. Linearidade do equipamento
2. Valores de referência segundo a idade
3. Tempo de coleta
4. Status da amostra (1ª vez / internado)
5. Indicação clínica
Falsos negativos – 2,9%Redução do número de lâminas contadas – 30%
Contagem diferencial. φFl
eury
Validação do critério de exclusão
1. Durante 30 dias (1000 amostras) examinar todas as lâminas comparando-as com os resultados automatizados.
2. Dividir os resultados em 4 grupos:
Positivo - flag (+) e hematoscopia positiva
Falso positivo - flag (+) e hematoscopia negativa
Negativo - flag (-) e hematoscopia negativa
Falso negativo - flag (-) e hematoscopia positiva
3. Estabelecer os percentuais de cada grupo em relação ao total de amostras examinadas.
Contagem diferencial. φFl
eury
Análise dos falsos negativos
Granulócitos imaturos 52%
Blastos 1,3%
Linfócitos atípicos 3,1%
Eritroblastos 6,6%
Morfologia eritrocitária 18,5%
Morfologia plaquetária 14,5%
Morfologia leucocitária 4,0%
Lab Hematol.2005; 11: 83-90
Contagem diferencial. φFl
eury
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Alarme
Leucometria
Células imaturas
Hemácias
Número de plaquetas
Pedido médico
Morfologia de plaquetas
Falha do equipamento
Concentração de hemoglobina
Outras
Hematoscopia positiva
% de revisões
36,7
25,5
13,0
5,9
3,7
3,5
2,5
1,9
7,3
35,7
Arch Pathol Lab Med. 2006; 130: 596-601
Contagem diferencial. φFl
eury
Lab Hematol.2001; 7: 89-100
Diferencial automatizada x Revisão manual
Tipo celular
Basófilos
Eosinófilos
Monócitos
Linfócitos
Neutrófilos
Número
1
4
9
45
60
100
0 - 5,4
1,1 – 9,9
4,2 – 16,4
35 – 55,3
49,7 – 69,7
500
0,3 - 2,3
2,5 – 6,1
6,6 – 11,9
40,6 – 49,5
55,6 – 64,3
1000
0,5 – 1,8
2,9 – 5,4
7,3 – 10,9
41,9 – 48,1
56,9 – 63,1
10000
0,8 – 1,3
3,6 – 4,5
8,4 – 9,6
44,0 – 46,0
59,0 – 61,0
Contagem diferencial. φFl
eury
• Citometria de fluxo
Células grandes imaturas (blastos e granulócitos imaturos)
Linfócitos atípicos (incluindo blastos pequenos).
Diferencial em 7 partes φFl
eury
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Granulócitos imaturos
Diferencial em 7 partes φFl
eury
Granulócitos imaturos / diferenciação mielóide
• Os leucócitos maduros lisados –cluster azul
• O efeito do agente lisante é diferente nas células mielóides imaturas que não são completamente lisadas.
Diferencial em 7 partes φFl
eury
• Mais sensíveis / específicos para diagnóstico de infecção que a leucometria.
• A contagem de IG pode identificar infecção aguda ou resposta inflamatória em estágio inicial.
• Valores de IG > 3% em conjunto com outros testes podem compor um algoritmo para indicar infecção.
• IGs > 3% indicam hemoculturas positivas com 92% de especificidade.
Granulócitos imaturos (IG) φFl
eury
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Amostra normal φFl
eury
Recomendações do ICSH para a Padronização da Nomenclatura e da Graduação das Alterações Morfológicas no Sangue Periférico. Int J Lab Hematol. 2015 Jun;37(3):287-303.
Marcos [email protected]
φFl
eury
Recomendações do ICSH • O objetivo do Grupo de Trabalho foi o de proporcionar um conjunto de
recomendações para o relato e quantificação de alterações em hemácias, leucócitos e plaquetas.
• É responsabilidade do Laboratório relatar as características morfológicas que contribuam para o diagnóstico diferencial.
• As alterações morfológicas devem ser informadas quando presentes em quantidade moderada ou intensa. (Exceção – esquistócitos).
• Os valores do VGM devem ser considerados para a determinação das alterações de tamanho (Micro, macro e normocitose).
• Os valores da HGM devem ser utilizados para a avaliação da hipocromia ou da presença de células hipercrômicas
• Os laboratórios devem realizar um exame mais detalhado dos casos duvidosos.
φFl
eury
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Recomendações do ICSH As anormalidades morfológicas podem ser expressas de várias formas:
• Descrição simples
Presença ou ausência
• Determinação semi-quantitativa
Discreta (+)
Moderada (++)
Intensa (+++)
• Determinação quantitativa
Normal (< 5%)
Discreta (5 – 25%)
Moderada (25 – 50%)
Intensa (>50%)
φFl
eury
Quantificação
NomenclaturaDiscreta (+)
(%)
Moderada (++)
(%)
Intensa (+++)
(%)
HEMÁCIAS
Anisocitose NA 11 – 20 >20
Macrócitos NA 11 - 20 >20
Micrócitos NA 11 - 20 >20
Células hipocrômicas NA 11 - 20 >20
Policromasia NA 5 - 20 >20
Acantócitos NA 5 - 20 >20
Eliptócitos NA 5 - 20 >20
Ovalócitos NA 5 - 20 >20
Esquistócitos < 1 1 - 2 >2
Hemácias em foice NA 1 - 2 >2
Esferócitos NA 5 - 20 >20
Estomatócitos NA 5 - 20 >20
Hemácias em alvo NA 5 - 20 >20
Hemácias em lágrima NA 5 - 20 >20
Recomendações do ICSH φFl
eury
Anormalidades no tamanho das hemácias
ANISOCITOSE – é definida como um aumento na variabilidade do tamanho das hemácias.
Não é específica e pode ser refletida no aumento do RDW nos contadores automatizados.
A recomendação é a de utilizar o valor RDW para estabelecer o grau de variação de
tamanho das hemácias.
A anisocitose pode ser quantificada mesmo quando o RDW não está disponível.
Recomendações do ICSH – SV φFl
eury
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Anormalidades no tamanho das hemácias
DIMORFISMO – presença de duas populações distintas de hemácias podendo ser
claramente vista na análise do histograma de hemácias com correspondente
aumento do RDW. O termo é comumente utilizado quando existe uma população
microcítica e hipocrômica e outra normocrômicas e normocítica. Entretanto, o termo
pode também ser usado para descrever a coexistência de populações macrocítica e
normocítica.
Recomendações do ICSH – SV φFl
eury
Anormalidades no tamanho das hemácias
MACRÓCITOS – hemácias maiores com diâmetro superior a 8,5 µm (VGM > 100 fL).
HGM N ou ↑; Prematuros e recém-nascidos; Reticulocitose pode causar macrocitose.
MICRÓCITOS – hemácias menores com diâmetro inferior a 7,0 µm (VGM < 80 fL).
Podem estar associados à hipocromia. Interpretar o VGM de acordo com a idade.
Um RDW aumentado ou um histograma de hemácias que sugira a presença de micrócitos
ou de macrócitos, mesmo quando o VGM estiver normal, deve indicar a avaliação da
lâmina.
A recomendação é que o valor do VGM seja utilizado para balizar a variabilidade de
tamanho (grau de anisocitose) preferivelmente à avaliação visual.
Recomendações do ICSH – SV φFl
eury
Anormalidades na cor das hemácias
HIPOCROMIA – é a diminuição da coloração da hemácia com aumento do halo claro
central superior a 1/3 do diâmetro celular. O HGM e o CHGM estarão diminuídos nos casos
de hipocromia grave.
As condições clínicas que causam a hipocromia estão sempre associadas à microcitose.
A recomendação é que o valor do HGM seja utilizado para balizar a intensidade da
hipocromia preferivelmente à avaliação visual.
POLICROMASIA – se refere a aparência mais azulada das hemácias causada pela presença
de restos de RNA ribossomal. São maiores que as hemácias normais.
A recomendação é quantificar a policromasia e proceder à contagem de reticulócitos.
Recomendações do ICSH – SV φFl
eury
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Inclusões eritrocitárias
ERITROBLASTOS - São precursores eritrocitários descritos normalmente apenas como
eritroblastos quando encontrados no sangue periférico.
A recomendação é a de reportar o valor absoluto de eritroblastos em 100 leucócitos
contados na diferencial ou incluir sua quantidade na contagem diferencial após corrigir a
leucometria.
J. Burthem, M. Brereton
Recomendações do ICSH – SV
Se mais de 10 / 100 leucócitos.
leucócitos x 100 = Leucometria corrigida
eritroblastos + 100
φFl
eury
Equipamentos automatizados
• Os equipamentos automatizados não são capazes de enumerar ou classificar populações
de células anormais ou de reconhecer anormalidades morfológicas.
• Essas amostras necessitam de um exame microscópico realizado em lâmina bem
confeccionada e bem corada, condição imprescindível para a correta identificação celular.
• A diferenciação celular é um processo que envolve a identificação de características
relativas ao tamanho e forma do núcleo, padrão de cromatina e tamanho e aspecto do
citoplasma.
• A contagem diferencial de leucócitos pode ser realizada por métodos automatizados ou
manuais.
Recomendações do ICSH – SB φFl
eury
Equipamentos automatizados
• A contagem automatizada analisa alguns milhares de células em contraste com a
contagem manual que identifica de 100 a 200 células.
• Por este motivo, na ausência de células anormais, a contagem automatizada é
mais precisa. Valores muito baixos ou muito elevados de leucócitos tornam a
contagem manual menos acurada e menos reprodutível.
É recomendado que a contagem automatizada seja considerada sem revisão manual
somente nos casos em que não existam alterações quantitativas nem a presença de
alarmes (flags).
A contagem automatizada também pode ser liberada depois da revisão da lâmina e
da confirmação dos alarmes.
Recomendações do ICSH – SB φFl
eury
03/05/2017
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Anormalidades citoplasmáticas
HIPERGRANULAÇÃO DOS NEUTRÓFILOS, GRANULAÇÕES TÓXICAS.
São grânulos grosseiros de coloração roxa que ocorrem como resposta a infecções e
inflamações.
A recomendação é de citar e quantificar a presença da hipergranulação sempre que vista.
J. Burthem, M. Brereton
Recomendações do ICSH – SB φFl
eury
Anormalidades citoplasmáticas
VACUOLIZAÇÃO NOS NEUTRÓFILOS
A vacuolização em neutrófilos durante uma infecção é causada pela fusão entre o
grânulo e o vacúolo fagocítico e a liberação do conteúdo lisossomal a fim de destruir
a bactéria. Podem parecer como buracos de agulha – vacúolos pequenos e discretos
ou podem ser maiores. Outras causas de vacuolização pode ser a toxicidade alcoólica
ou a exposição prolongada ao EDTA (artefato de conservação).
A recomendação é a de relatar a presença de vacúolos sempre que presentes.
Recomendações do ICSH – SB
LACFAR - UFRJ
φFl
eury
GRANDES LINFÓCITOS GRANULARES (GLG)
São semelhantes aos linfócitos grandes, mas o citoplasma exibe alguns grânulos bem
visíveis de coloração vermelho-arroxeada.
Podem representar de 10 a 20% dos linfócitos em indivíduos normais.
Recomendações do ICSH – SB φFl
eury
03/05/2017
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Embora os GLG devam ser contados como linfócitos, quantidades aumentadas deste tipo celular devem ser descritas no laudo e a investigação por imunofenotipagem recomendada.Nota: Os linfócitos predominam nas amostras de crianças até os 4 anos. Estas células são mais pleomórficas que as encontradas em amostras de adultos normais.
J. Burthem, M. Brereton
Recomendações do ICSH – SB GRANDES LINFÓCITOS GRANULARES (GLG)
Os GLG não devem ser contados separadamente dos linfócitos.
φFl
eury
MONONUCLEOSE INFECCIOSA
As anormalidades incluem o aumento do tamanho da célula, imaturidade do núcleo
com a presença de nucléolo e cromatina sem condensação, contorno nuclear
irregular ou lobulação, basofilia ou vacuolização do citoplasma e contorno irregular
da célula. O citoplasma pode ser abundante com uma variação de cores desde o azul
pálido até o azul intenso principalmente nos pontos de contato com as células
adjacentes.
A recomendação é de comentar a presença de linfócitos reativos podendo ser
contados como uma população distinta na diferencial.
J. Burthem, M. Brereton
Recomendações do ICSH – SB φFl
eury
CÉLULAS PLASMÁTICAS
A célula plasmática é maior que o pequeno linfócito, apresenta citoplasma
profundamente azul, núcleo excêntrico, redondo ou oval com cromatina condensada
e a zona de Golgi ou halo perinuclear adjacente ao núcleo.
A recomendação é de contar as células plasmáticas como uma população distinta na
diferencial.
J. Burthem, M. Brereton
Recomendações do ICSH – SB φFl
eury
03/05/2017
23
As plaquetas gigantes podem ser maiores que as hemácias (10 – 20 mm) e podem ser
identificadas pelos alarmes dos equipamentos automatizados. Em indivíduos normais, de
modo geral, menos de 5% das plaquetas são maiores que o normal. O tamanho das
plaquetas aumenta gradualmente de acordo com o tempo de armazenamento em EDTA.
Recomendações do ICSH – Plaquetas
J. Burthem, M. Brereton
φFl
eury
Recomendações do ICSH – Plaquetas A recomendação é que as plaquetas gigantes sejam relatadas.
Um comentário sobre o número de plaquetas e a presença de plaquetas grandes ou
gigantes pode ser feito.
J. Burthem, M. Brereton
φFl
eury
ObrigadoMarcos Fleury
φF
leu
ry