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¨Hongos Micorrizas Arbusculares y características biológicas de un Mollisol de la Región Andina del Ecuador¨ Ma. E Avila, F. Montesdeoca, M. Orellana, K. Pacheco, N. Becerra, Y. Cerda, F. Borie, P. Aguilera, P. Cornejo. Octubre, 2019 VI CICLO DE CONFERENCIAS DE INVESTIGACIÓN BIOLÓGICA Universidad Central del Ecuador Universidad de La Frontera de Chile Programa de Doctorado en Ciencias de Recursos Naturales

¨Hongos Micorrizas Arbusculares y características biológicas de un Mollisol de …clacs.org/presentaciones/2-PresentacionesOrales/25.pdf · 2019. 12. 18. · Manejo de suelo de

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  • ¨Hongos Micorrizas Arbusculares y característicasbiológicas de un Mollisol de la Región Andina del

    Ecuador¨

    Ma. E Avila, F. Montesdeoca, M. Orellana, K. Pacheco, N. Becerra, Y. Cerda, F. Borie,

    P. Aguilera, P. Cornejo.

    Octubre, 2019

    VI CICLO DE CONFERENCIAS DE INVESTIGACIÓN BIOLÓGICA

    Universidad Central del Ecuador

    Universidad de La Frontera de Chile

    Programa de Doctorado en Ciencias

    de Recursos Naturales

  • Agroecosistemas de la zona Andina

    A) Cadena Montañosa de los AndesB) Paisajes de Agroecosistemas andinos

    La labranza intensiva del suelo(LC) priva a losmicroorganismos del C(principal fuente de energía) yexpone al suelo a impactosclimáticos negativos.

    (Lal & Stewart 2010, Farooq & Siddique 2015,Kumar et al. 2015, Lal 2006)

    Introducción

  • Problemática:Labranza Intensiva a favor de la pendiente

    (50% de suelo cultivado está afectado por erosión (Alvarado et al, 2011; Suquilanda, 2008) (Ministeriodelambiente.gob.ec)

  • • SD

    • -Mejora las propiedades físico, químicas ybiológicas del suelo.

    • -Mejora la calidad y la fertilidad del suelo.

    • -Es una producción sustentable de los cultivos.

    Una alternativa para la producción de alimentos con Labranza Intensiva

    es el cambio hacia

    Siembra Directa

    (Roldán, et al. 2003)(Simmons y Nafziger, 2014)

    • Los resídulos de los cultivos se

    dejan sobre el suelo, para

    incrementar las cantidades de

    C Org. y estimular las actividaes

    microbiológicas (ciclado y

    transporte de nutrientes, etc)

    (Samal et al. 2017, Kassam et al. 2010, Lal, 2011)

  • H20

    Nutrientes

    (P, N)

    (Biofertilizantes)

    Estructura y estabilidad al suelo (hifas y

    glicoproteínas)

    Al3+

    (Jeffries et al, 2003; Brundrett et al. 1984)

    SIMBIOSIS HFMAROL IMPORTANTE EN LA CONSERVACIÓN DEL SUELO

    (© Guillaume Bécard, 2011)

  • HIPÓTESIS

    Manejo de suelo de conservación (SD) incrementa las principales

    actividades biológicas, y la densidad y diversidad de HMA en

    suelos de la zona andina del Ecuador .

    Proyecto comparativo en suelos andinos del Ecuador, entre parcelas de LC y

    SD, bajo cultivos de rotación y e incrementos en los niveles de fertilización

    durante 24 meses.

    Durante este estudio a largo plazo, actividades biológicas, físicas y químicasserán evaluadas.

    Proyecto de Investigación

  • 1) Describir las condiciones iniciales de la actividad

    microbiológica del suelo, y la densidad y diversidad

    de HMA en suelos labrados y no labrados.

    Estudio de línea Base

  • ➢ Sitio: Campo Académico Docente Experimental “La Tola” (CADET), Universidad Central del Ecuador, Tumbaco, Quito, Pichincha, Ecuador

    ➢ Localización:

    Longitud: 78° 21´ 18´´O , Latitud: 00° 13´ 49´´ S,

    Altitud: 2505 msnm, precipitación 868 mm, temperatura of 17° C

    ➢ Suelo: Mollisol de origen volcánico, clasificado como Entic Durustolls

    ➢ Rotaciones: Phaseolus vulgaris - Zea maize and Phaseolus vulgaris -Amatanthus caudatus rotations con diferentes niveles de fertilizaciónnitrogenada (0, 50, 100, 150 kg ha-1)

    ➢ Diseño Experimental: Parcela dividida, completamente al azar con tresrepeticiones

    Condiciones Experimentales

  • Descripción del sitio Campo Académico Docente Experimental La Tola (CADET)”,

  • 11

    PRADERAS MAIZ PAPAS

    A. Muestra de suelo: 0-20 cm profundidad

    1 Kg para análisis de act. biológicas

    1 Kg para análisis de simbiosis de micorrizas

    B. Separación de raíces y aclarado

    Plantas seleccionadas al azar, con raíces de cada

    Parcela (Rhizosfera: transporte en bolsas plásticas

    Etiquetadas, y en cooler hacia el laboratorio)

    Metodología para campo y laboratorio

    A B

  • Determinación de actividades

    enzimáticasActividad de la Fosfatasa ácida

    De muestras frescas

    (a-P asa) (Tabatabai and Bremner, 1969, Paolini , 2016)

  • Simbiosis MicorrizasColonización en raíz de HMA

    Conteo de esporas y longitud de

    micelio

    (Gederman and Nicols, 1963, Jenkins, 1964)

    (Phillips and Hayman, 1970, Giovannetti and Mosse, 1980)

  • 15

    Detección de Glomalina

    Extracción de Glomalina

    (Bradford protein method)

    Suelo + Citrato de Sodio

    Autoclave 121 ºC, 1 h

    50 ml del sobrenadante

    Espectrophotometer a 595 nm

    (Wright and Upadhyaya, 1998)

  • Figura 1. Variables Químicas y Biológicas

    estudiadas en Praderas, Maiz y Papas:

    A) pH

    B) P disponible (mg g-1 como P2O5),

    C) MOS (%),

    D) N total (%),

    E) Cond. Eléctrica (mmhos cm-1),

    F) P asa ácida (mg PNF g-1 h-1).

    P disponible, MO, contenido de N

    (principalmente por mineralización y

    actividades enzimáticas) estrechamente

    correlacionados (Alvear. et al 2007).

    Las actividades microbianas dependen de la

    disponibilidad de los nutrients del suelo para

    realizar los procesos biogeoquímicos.

    Resultados y Discusión

  • Figura 2. Variables biológicas estudiadas en parcelas de

    Praderas, Maiz y Papas:

    A) Proteína Glomalina (mg g-1), y

    B) Longitud de micelio (m g-1).

    Resultados y Discusión

    Alto contenido de glomalina, alta MOS y P disponible. Los

    valores reflejan que las parcelas de Papas estarían

    relacionadas con el secuestro de C en el suelo.

    De acuerdo a Rillig (2004) y Lovelock et al. (2004b) las

    propiedades del suelo: tipo de suelo, manejo, calidad y

    fertilidad influye en la concentración de Glomalina del suelo.

    Soudzilovskaia et al. (2015) y Mohan et al. (2014) indican que

    la Glomalina y COS están afectados por los diferentes

    cultivos y la composición de HMA.

  • Plant species Grasslands Maize Potato

    Pennisetum clandestinum 54 59 55

    Verbena litoralis 26

    Cynidon dactylon 43 60

    Solanum nigrum 83

    Conyza floribunda 56

    Avena sativa 70

    Bidens leucantha 56 45

    Trifolium repens 56 44

    Galinsoga parviflora 45 12 62

    Galinsoga ciliata 21 18

    Taraxacum officinalis 70

    Chenopodium paniculata 18 23

    Amaranthus blitum 31 26

    Senecio vulgaris 30 28

    Malvastrum peruvianum 17

    Verbena sp. 45

    Physalis peruviana 35

    Crop system

    Table 1. AM root colonization (%) of the different plant species present in

    the analyzed plots under the precedent crop systems.Table 1. AM colonización en raíces (%) en diferentes especies de plantas de las parcelas estudiadas

    Resultados y Discusión

    Reporte por primera vez de la

    colonización de especies de

    plantas típicamente

    reconocidas como no

    micorrizables :

    Chenopodium paniculata and

    Amaranthus blitum

    (Familia Amaranthaceae).

  • Figura 5. HMA densidad

    y diversidad en las

    parcelas.

    Mayor diversidad enPraderas, no labradas.

    Resultados y Discusión

  • Glomus ambisporumINVAM

    Scutellospora calosporawww.zor.zut.edu.pl

    Entrophospora infrequensINVAM

    Pacispora robiginiawww.zor.zut.edu.pl

    Acaulospora alpinawww.zor.zut.edu.pl

    Glomus [email protected]

    Gigasora margarita TAMU Diversidad morfológica de HMA

    Reportados por primera vez de suelos

    andinos del Ecuador

  • Conclusiones-Correlaciones directas entre variables en las parcelas estudiadas estarían

    explicando un posible efecto de suelos ancestrales bajo manejo de labranza,

    fertilización y rotación de cultivos.

    -Densidad y diversidad de HMA se reporta por primera vez en suelos andinos del

    Ecuador, con enorme potencial para la investigación.

  • Convenio UCE – UFRO

    Beca 2014-2019

    Dr. Pablo Cornejo

    Dr. Fernando Borie

    Dra. Paula Aguilera

    Gracias:

    UCE Estudiantes de

    pregrado FCA