Manual Veterinário Colheita de Amostras.pdf

8/20/2019 Manual Veterinário Colheita de Amostras.pdf

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Saúde Pública Veterinária

Centro Pan-Americano de Febre Aftosa

2010

Manual Veterináriode Colheita e Enviode Amostras


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Saúde Pública Veterinária

Centro Pan-Americano de Febre Aftosa

2010

Manual Veterináriode Colheita e Envio

de Amostras


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É permitida a reprodução parcial ou total desta obra,desde que citada a fonte. A responsabilidade pelos direitosautorais de textos e imagens é do autor.

Tiragem: 5.000 exemplares1a edição. Ano 2010

Impresso no Brasil / Printed in Brazil

Distribuição e informaçõesMINISTÉRIO DA AGRICULTURA, PECUÁRIA E ABASTECIMENTODepartamento de Saúde Animal

Coordenação Geral de Combate a DoençasEsplanada dos Ministérios, Bloco D, Anexo A,3º andar, Sala 301CEP 70043-900 – Brasília, DFwww.agricultura.gov.br0800 - 7041995

Este Manual foi realizado no âmbito do Termo de Coope-ração Técnica (TCT) com o Ministério da Agricultura, Pecuá-ria e Abastecimento (MAPA) e o Centro Pan-Americano deFebre Aftosa (PANAFTOSA) da Organização Pan-Americanada Saúde (OPAS)/ Organização Mundial da Saúde (OMS).

Manual veterinário de colheita e envio de amostras:manual técnico. Cooperação Técnica MAPA/OPAS-PANAFTOSA para o Fortalecimento dos Programas deSaúde Animal do Brasil. Rio de Janeiro: PANAFTOSA -OPAS/OMS, 2010.

218p.: il. Color.; 15 cm. (Série de Manuais Técnicos, 13)

ISSN 0101-6970

1. Colheita de amostras - manuais. 2. Doenças dosanimais - diagnóstico. I. Centro Pan-Americano deFebre Aftosa - OPAS/OMS. II. Ministério da Agricultura,Pecuária e Abastecimento. III. Título. IV. Séries.

CréditosCoordenaçãoGuilherme Henrique Figueiredo Marques - DSA/SDA/MAPA

Júlio César Augusto Pompei – OPAS/PANAFTOSAMônica Martini - OPAS/PANAFTOSA

Revisão Técnica Júlio César Augusto Pompei – OPAS/PANAFTOSAMônica Martini - OPAS/PANAFTOSAGilfredo Darsie - OPAS/PANAFTOSAGuilherme Henrique Figueiredo Marques – DSA/SDA/MAPA

Ana Cristina Gonçalves Pinto da Rocha – CGAL/SDA/MAPAElaboração: Grupo TécnicoEdviges Maristela Pituco – IB/SP

Josete Garcia Bersano – IB/SPClaudia Del Fava – IB/SPClaudia Pestana Ribeiro – IB/SPSimone Miyashiro – IB/SPRicardo Spacagna Jordão – IB/SPAdriana Hellmeister de Campos Nogueira – IB/SPAntonio Guilherme Machado de Castro – CAPTAA/SPRenato Luís Luciano – CAPTAA/SPAna Maria Iba Kanashiro – CAPTAA/SPAna Lúcia S. P. Cardoso – CAPTAA/SPEliana Neire Castiglioni Tessari – CAPTAA/SPÉrica Weinstein Teixeira – APTA/SP

Dejair Message – UFV/MGRevisão BibliográficaAstrid Rocha Pimentel

ColaboraçãoIB/SP: Alessandra Figueiredo de Castro Nassar, EleniceSequetin Cunha, Eliana De Stefano, Eliana Roxo,Eliana Scarcelli Pinheiro, Liria Hiromi Okuda, MargarethÉlide Genovez e Wilter Ricardo Russiano Vicente.MAPA: José Carlos de SouzaCDA/SP: Armando Salvador da Silva (In memoriam )Departamentos de Clínica Veterinária e de ReproduçãoAnimal da FMVZ/ USP


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A Cooperação Técnica entre o

Centro Pan-Americano de Febre Af-

tosa e o Ministério da Agricultura,

Pecuária e Abastecimento tem pos-

sibilitado ações efetivas para o forta-lecimento dos Programas de Saúde

Animal do Brasil, investindo princi-

palmente no aprimoramento das

ações técnicas e na valorização dos

profissionais envolvidos na manu-

tenção do patrimônio representado

pela Sanidade Animal.

Este “Manual Veterinário de Co-

lheita e Envio de Amostras” foi ela-

borado para preencher uma lacunana bibliografia especializada e sua

proposta é servir de guia para con-

sulta rápida e objetiva por veteriná-

rios de campo do serviço oficial ou

Apresentação

Ottorino Cosivi

Centro Pan-Americano deFebre Aftosa – Diretor

Jamil Gomes de Souza

Departamento de SaúdeAnimal - Diretor

autônomos. Visa assim, aprimorar a

qualidade da amostra colhida e as-

segurar sua correta conservação e

envio, facilitando à rede laboratorial

a realização de diagnósticos rápidose conclusivos, no âmbito dos Progra-

mas Nacionais de Sanidade Animal.

É nosso desejo que este Manual,

além de ser utilizado no campo por

profissionais da medicina veteriná-

ria, seja também um valioso instru-

mento de capacitação, uso e refe-

rência para os Serviços de Sanidade

Animal.


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Prefácio

Agradecimentos

O Manual Veterinário de Colheita e En-

vio de Amostras foi elaborado de forma sim-

ples, prática e com uma visão atualizada dos

aspectos mais importantes da colheita de

amostra para o diagnóstico das principais

doenças dos animais. Os autores deram es-pecial ênfase àqueles pontos que, com base

em sua experiência, consideram de maior in-

teresse, particularmente para os Programas

de Saúde Animal do Brasil.

Em seus capítulos, divididos de acordo

com os aspectos de biossegurança e com a

colheita de amostras para o diagnóstico de

doenças de ruminantes, equídeos, suíde-

os, aves e abelhas Apis mellifera , o manual

pretende fornecer um apoio ao médico ve-

terinário de campo quanto à correta colheita

de material da espécie afetada e ao sistema

comprometido, para que as amostras colhi-

das de eleição não levem em consideração

apenas a doença suspeita quando da reali-

zação do exame clínico, o que impossibilitaria

os diagnósticos diferenciais.

Expressamos nossos sinceros agradeci-

mentos ao Ministério da Agricultura, Pecuária

e Abastecimento (MAPA) pelo apoio na ela-

boração deste Manual e à equipe de autores

pelo excelente trabalho realizado.

O Manual não pretende esgotar todos os

assuntos nele abordados, mas abre a possi-

bilidade de uma discussão focada e atualiza-

da e dará ensejo a futuras contribuições, re-

visões e complementações. Espera-se que os

usuários deste Manual o apliquem em suasatividades no dia-a-dia, esclarecendo dúvi-

das e promovendo mudanças que resultem

em melhorias na atenção veterinária.


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Sumário

Capítulo 1

Biossegurança

1. Equipamentos de proteção individual (EPI)2. Equipamentos para contenção dos animais

3. Identificação do animal e da amostra

4. Descarte de material

5. Acondicionamento para remessa de amostras para diagnóstico

6. Requisição de exames

Tabela de medidas de agulhas

Tubos para colheita de sangue

Pele e mucosas

Material para colheita de amostras paradiagnóstico de doenças de pele e mucosas

Amostras para diagnóstico de doençasde pele e mucosas

Líquido e tecido epitelial vesicular

Líquido esofágico-faríngeo (LEF)

Exsudato (secreções)

Biópsia de pele e mucosa

Raspado de pele

Sangue

Sistema respiratório

Material para colheita de amostras paradiagnóstico de doenças do sistema respiratório

Amostras para diagnóstico de doençasdo sistema respiratório

Pulmão e linfonodos

Secreções

Sangue

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Capítulo 2

Ruminantes, Equídeos e Suídeos

Sangue

Sangue

Colheita de sangue com sistema a vácuo

Colheita de sangue com seringa e agulha

Boas práticas de colheita para prevençãoda hemólise

Boas práticas pós-colheita para prevençãoda hemólise


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Sistema gastrintestinal

Material para colheita de amostras paradiagnóstico de doenças do sistema gastrintestinal

Amostras para diagnóstico de doenças do sistemagastrintestinal

Conteúdo ruminalFezes

Alimentos para nutrição animal

Sangue

Sistema reprodutor e urinário

Material para colheita de amostras para diagnósticode doenças do sistema reprodutor e urinário

Amostras para diagnóstico de doenças do sistemareprodutor e urinário

Feto de até 2 Kg

Feto e natimorto com mais de 2 KgPlacenta

Sêmen

Muco prepucial – técnica do suabe

Muco prepucial – técnica do lavado prepucial

Muco cervicovaginal

Urina

Sangue

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Sistema circulatório e linfático

Material para colheita de amostras para diagnósticode doenças do sistema circulatório e linfático

Amostras para diagnóstico de doenças do sistemacirculatório e linfático

Órgãos - sistema nervoso central, fígado, baço, pulmão, rim, coração, linfonodos e intestino delgado e grosso

Sangue capilar e venoso

Sangue

Sistema osteoarticular

Material para colheita de amostras paradiagnóstico de doenças do sistema osteoarticular

Amostras para diagnóstico de doenças do sistemaosteoarticular

Líquido sinovial

Sangue

Sistema nervoso central (SNC)

Material para colheita de amostras para diagnósticode doenças do sistema nervoso central (SNC)

Amostras para diagnóstico de doenças do sistemanervoso central (SNC)

SNC inteiro

Porções do sistema nervoso central (SNC)

Outros Órgãos - fígado, baço, pulmão, rim,coração, linfonodos, intestino delgado e grosso

Sangue


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Capítulo 3

Aves

Principais doenças que acometem as aves

Material para colheita de amostras paradiagnóstico de doenças das aves

Amostras para diagnóstico de doençasdas Aves

Sangue (para obtenção do soro)

Órgãos

Suabe de traquéia

Suabe de cloaca

Suabe de arrasto - a) gaze ou esponja e b) propé

Fundo de caixa

Papel ou cepilho – que forra a caixade transportes de aves de 1 dia

Fezes frescas

Mecônio

Ovos bicados

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Capítulo 4

Abelhas Apis mellifera

Material para colheita de amostras paradiagnóstico de doenças de abelhas Apis mellifera

Garantindo a segurança

Reconhecendo as partes de uma colmeia

Identificando os indivíduos da colônia, células

de operárias, células de zangão e realeiraAbrindo e inspecionando uma colmeia

Fases do desenvolvimento das abelhas

Diferentes anomalias na fase de cria

Principais doenças, intoxicações e parasitoses queafetam Crias de Abelhas – Apis mellifera

Amostras para diagnóstico das principais doençasque afetam Crias de Abelhas – Apis mellifera

Amostra 1

Amostra 2

Amostra 3

Amostra 4

Principais doenças, intoxicações e parasitoses queafetam Abelhas Adultas – Apis mellifera

Amostras para diagnóstico das principais doençasque afetam Abelhas Adultas – Apis mellifera

Amostra 1

Amostra 2

Amostra 3

Amostra 4

Amostra 5

Bibliografia


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Biossegurança é um conjunto deprocedimentos destinados a prevenir, controlar,

reduzir ou eliminar riscos inerentes àsatividades suscetíveis de comprometer a saúde

humana, animal e o ambiente

1 - Equipamentos de proteção individual (EPI)

ÓculosLuvas comfio de aço

Luvas

de látex

Botas

Avental MacacãoAventalimpermeável

Luvas tricotadaspigmentadas

Luvas nitrilica- neoprex

ToucaMáscara

Utilizar vestimentas de proteção apropriadasde acordo com o risco, tais como macacão,

avental ou calça e jaqueta impermeáveis.


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Muitas vezes é necessário o uso de

peias, principalmente quando hárisco de acidentes (com coices) ou

quando os animais ficam inquietos.

Para prevenir acidentes e fazer uma boa colheita deamostras para diagnóstico, é muito importante queo animal esteja bem imobilizado. Isto deve ser feitopreferencialmente no tronco de contenção.

Verifique com antecedência se as instalações eequipamentos estão disponíveis, limpos e em boascondições de uso. Utilize equipamentos e materiaisde boa qualidade.

2 - Equipamentos para contenção dos animais

Abre boca

Cachimbo

Imobilizador nasaltipo “formiga”

Uma boa contenção pode ser obtida pelouso de argola nasal


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3 - Identificação do animal e da amostra

Brincos: aplique obrinco na parte centralda orelha e entreas duas nervurasprincipais.

O alicate aplicador deve ficar na posiçãovertical (“em pé”), evitea posição horizontal(“deitado”).Aplicador

de brincos

Brincos

Animal com brincobem posicionado

A identificação da amostracomeça com a identificaçãodo animal. Essa etapa écrucial para que no final doprocesso, seja garantida arastreabilidade. No momentoda colheita da amostra decada animal, o número doanimal deverá ser conferido e

anotado no rótulo do frasco eno formulário de colheita. Naimpossibilidade de se obtera identificação do animal,identificar o lote ou núcleo,a colmeia, entre outros.

R e gi st r ar a i d e nt i fi c aç ão d o ani mal no r e c i pi e nt e d e c ol he i t a, pr e f e r e nc i al me nt e e m r ót ul o d e e spar ad r apo c om c ane t a e sf e r ogr áfi c a. P ar a subst i t ui r e ssa f or ma d e i d e nt i fi c aç ão,

é ne c e ssár i o que a al t e r nat i v a a se r e mpr e gad a se j a pr e v i ame nt e t e st ad a.

N O T A Os métodos de identificação animal mais comuns são:tatuagem, brinco (visual ou eletrônico) e marcação a fogo.


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4 - Descarte de material

Materialperfuro-cortanteAgulhas, lâminasde bisturi, tubosquebrados, tubosde vidro contendofluido devem serdescartados emcaixas coletoraspróprias paramaterial perfuro-cortante. Na faltadessas, utilizarrecipientes deparedes rígidascom tampa (latasde leite em póou similares).

Outros materiaisSeringas,luvas, gorro,máscara, aventalou macacãodescartável,gaze, algodão eoutros materiaispotencialmente

infectantesdevem serdescartados emsaco branco delixo, devidamenteidentificadopara substânciainfectante.

N O T A N O T A

An tes de sair da propriedade, todos os

ma teriais u tilizados na colhei ta, tais com

o:

sondas, imobilizadores ( formigas ), agulh

as

me tálicas e bo tas, de verão ser desin fe ta

dos,

com desin fe tan tes qu ímicos ou f ísicos,

obser vando-se o tempo de con ta to e as

indicações para cada si tuação. Os dema

is

ma teriais, como os macacões, de verão

ser colocados em sacos plás ticos para

pos terior desin fecção e la vagem.

Os recipien tes con tendo os

res íduos po tencialmen te in fec tan tes

de vem ser sinalizados como

“In fec tan te ” e des tinados para

cole ta de li xo hospi talar ou algo

equi valen te, respei tando-se as

normas nacionais e in ternacionais

que têm por finalidade minimizar

riscos ambien tais, sani tários

e ocupacionais.


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5 - Acondicionamento para remessade amostras para diagnóstico

1º PassoAcondicionar orecipiente quecontém a amostra(recipiente primário),identificado de formaclara e legível, emsaco plástico vedadohermeticamente.

3º PassoAcondicionar dentro de outro recipiente resistente(embalagem secundária). Como alternativa deembalagem secundária, pode ser utilizada lata deleite em pó ou de achocolatado, por exemplo.

O sistema de embalagem, inclusive para transporteterrestre, deve ser envasamento triplo: um recipienteprimário, uma embalagem secundária e umaembalagem externa obrigatoriamente rígida(embalagem terciária).

2º Passo Envolver este conjuntoem manta absorvente,prevenindo possíveisvazamentos.

S e f or e m c ol oc ad os v ár i os r e c i pi e nt e s pr i már i os f r áge i s e m uma me sma e mbal age m se c und ár i a, e l e s d e v e m se r e nv ol v i d os i nd i v i d ual me nt e ou se par ad os d e f or ma que se e v i t e o c ont at o e nt r e e l e sImportante: Deve-se realizar a desinfecção externa em todasas etapas do processo de acondicionamento da amostra,desde o recipiente primário com a amostra, o saco plásticoe a embalagem secundária até a caixa isotérmica

N O T A


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5º PassoNa parte externa da tampada caixa isotérmica, afixara requisição de exame,devidamente preenchida ecolocada num saco plásticotransparente. Fechar bema caixa isotérmica e colocá-la dentro da embalagem

terciária, que deverá serrotulada de acordo comas normas nacionais einternacionais. Em ladosopostos, colocar a orientaçãode embalagem:“Este lado para cima”.

N O T A P ar a o t r anspor t e, as embalagens de mat er ial biológico r ef er ent e a espécime

diagnóst ico dev em ser ident ificadas com: Nome, ender eço e t elef one do

r emet ent e e do dest inat ár io T elef one par a emer gências A mar ca “ UN 3373” colocada na

super f í cie ext er na da embalagem t er ciár ia, de modo que seja f ácil de v er e ler . A designação oficial de t r anspor t e “ Subst ância Biológica, cat egor ia B” dev er á figur ar ao lado da mar ca

O transporte de amostras que tenhamprobabilidade insignificante de conter substânciasinfecciosas, como soro e sangue para inquéritossoroepidemiológicos ou que os agentes patogênicostenham sido neutralizados ou inativados de forma anão mais representar qualquer risco à saúde, nãoestá sujeito a esta regulamentação, devendo apenasgarantir que a embalagem primária seja estanque ea prova d’água. A embalagem secundária pode serum saco plástico hermético e a marca externa deveapenas conter a expressão “Amostra AnimalIsenta de Agente Infeccioso”.

NOTA

4º PassoAcomodar o recipiente na caixa isotérmica (embalagemintermediária), que deverá, por sua vez, ser colocadana embalagem terciária (externa). Utilizar gelo reciclável

em quantidadecompatível com otamanho da amostra eo tempo para chegadaao laboratório (como

alternativa, garrafa petbem fechada, com águacongelada). Preenchero espaço vazio comenchimentos macios(flocos de isopor, jornal,papel toalha).

Use caixas isotérmicasresistentes e em boas condições


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INFORMAÇÕES MÍNI

MAS NECESSÁRIAS PARA REMESSA DE

AMOS TRAS PARA DIAGNÓS TICO

Nome da Propriedade:

Nome do Proprie tário:

Endereço:

CEP: Cidade/Es tado:

Cai xa Pos tal:e-mail:

Fone:

Celular:

Dados do Médico Ve terinário

Nome: Fone:

Celular: E-mail:

Endereço para en vio do resul tado:


Dados das Amos tras

Sis temas a fe tados:

[ ] [ ] [ ]

Sis tema ner voso cen tral

In fecções de mucosa e pele

In fecções gas trin tes tinais

[ ] [ ] [ ]

In fecções vasculares

In fecções ós teo-ar ticulares

In fecções do aparelho

respira tório

Finalidade do

e xame:

[ ]

[ ] [ ]

Con firmação de diagnós tico e

vigilância Mo vimen tação

Requisi to cer ti ficação/re validação

[ ] [ ]

Moni toramen to

Ou tra:_ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _

_ _ _

Tipo de Amos tras:

[ ] Soro [ ] Sangue To tal - An tic

oagulan te: [ ] ED T A [ ] Ou tro: _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _

_ _ _ _ _ _ _

[ ] Biópsia – Especi ficar: si tio da lesão/ tecido _ _

_ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _

[ ] Con teúdo gás trico [ ] Fezes [ ] Sême

n [ ] Secreção: _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _

[ ] Órgãos: _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _

_ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _

[ ] Embrião [ ] Fe to [ ] Fluído ca vitário

[ ] Placen ta/co tilédone

[ ] Ou tras - Especi ficar: _ _ _ _ _ _ _ _ _ _

_ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _

_ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _

In formações Complemen tares:

In formações Clínicas:

(descre ver ob je ti vamen te os achados clínicos

mais signi fica tivos)

Formulário de talhado de colhei ta

Iden ti ficação

da amos tra Iden ti ficação

do animal Espécie Idade

Se xo Tipo de amos tra

Principal

Da ta da colhei ta: Da ta do en vio:

Responsá vel pela colhei ta:

sis tema a fe tado

Dados epidemiológicos rele van tes:

(área endêmica de alguma doença in fecciosa,

pessoas en vol vidas e tc)

Diagnós tico presun ti vo:

Pontos importantes no preenchimentoda Requisição de Exames

1 - Localização da propriedade1.1 Nome completo (sem abreviações) e endereço do proprietário doanimal suspeito.1.2 Nome completo da propriedade ou estabelecimento ondefoi colhida a amostra.1.3 Localização que facilite o acesso à propriedade citada.

2 - Identificação do remetente da amostra2.1 Nome completo (sem abreviações) e endereço do responsávelpelo encaminhamento da amostra. Deverá constar um númerode telefone para casos de emergência.2.2 O responsável pelo preenchimento do formulário e envioda amostra deverá ser um profissional devidamente habilitadopara trabalhar com materiais de risco biológico.

3 - Descrição do animal suspeito, rebanho e da amostra3.1 Informar a data da colheita, nome ou número do animalsuspeito, idade, sexo, raça e espécie.3.2 Preencher a finalidade do exame (ex. confirmação dediagnóstico, movimentação, monitoramento). Em caso deconfirmação de diagnóstico, descrever quais os sinais clínicos

apresentados pelo animal, e a data provável de início da doençae em caso de necropsia, descrever os achados mais significativos.Para confirmação de diagnóstico deve-se preencher umarequisição de exames para cada animal3.3 Informar o número de animais existentes na propriedade,quantos animais apresentaram sinais clínicos semelhantes equantos vieram a óbito (informar vacinação, vermifugação).3.4 Informar quais amostras foram remetidas e conservante utilizado.

4 - Informações complementaresEsse espaço é reservado para qualquer outra informaçãoque o técnico considere pertinente (suspeita de zoonosesinformar se há pessoas envolvidas, etc.)

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6 - Requisição de exames


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Nome da Propriedade:

Nome do Proprie tário (apicul tor):

Endereço:


Cai xa Pos tal: e-mail:

Fone: Celular:

Dados do Médico Ve terinário

Nome: Fone:

Celular: E-mail:

Endereço para en vio do resul tado:


Dados das Amos tras

Formulário de talhado de colhei ta

Da ta da colhei ta:

Da ta do en vio:

Responsá vel pela c

olhei ta:

INFORMAÇÕES MÍNIMAS NECESSÁRIAS

PARA REMESSA DE AMOS TRAS

PARA DIAGNÓS TICO DE DOENÇAS DE AB

ELHAS Api s mel l i f er a

Iden tificação da amos tra

Tipo de amos tra

Endereço da Propriedade:

In formações da colmeia

In formações complemen tares

Iden ti ficação da colmeia

Amos tras colhidas e seu aspec to no m

omen to da colhei ta:

[ ] Abelhas do al vado. Aspec to:

[ ] Abelhas da área

de cria. Aspec to:

[ ] Abelhas do chão. Aspec to:

[ ] Crias. Aspec to:

[ ] Fa vo de mel. Localização na colm

eia.

[ ] Ou tros dados. Especi ficar:

Iden ti ficação da colmeia:

(iden ti fique a colmeia de forma perman

en te e escre va essa iden ti ficação aqu

i)

Condição da colmeia:

[ ] For te. Obs: [ ] Média. Obs:[ ] Fraca. Obs:[ ] Ou tras condições

.

Ado ta alimen tação suple

men tar (energé tica ou pro téica)? Espe

ci ficar e declarar a origem.

Pra tica apicul tura migra tória? Para que

local? Em que época do ano?

Número to tal de colmeias na proprieda

de visi tada.

In formações Clínicas:

(sin tomas obser vados, compor tamen to

, número de colmeias a fe tadas, e tc.):

Pontos importantes no preenchimentoda Requisição de Exames

1 - Localização da propriedade1.1 Nome da propriedade ou estabelecimento ondefoi colhida a amostra.1.2 Endereço da propriedade ou estabelecimento onde foicolhida a amostra (incluir localização que facilite o acesso àpropriedade citada).1.3 Nome completo (sem abreviações) e endereço e telefonedo proprietário do apiário.

2 - Identificação do remetente da amostra2.1 Nome completo (sem abreviações), endereço e telefone doresponsável pelo encaminhamento da amostra.

3 - Dados das Amostras3.1 Preencher um formulário por colmeia.3.2 Informar todos os tipos de amostras colhidas em cadacolmeia, com as observações pertinentes.Não esquecer de indicar o local no interior da colmeiaonde o pedaço de favo de mel foi colhido.

4 - Informações da colmeia

4.1 Caso o apicultor não adote marcação permanente nascolmeias, fazer marcação em cada uma das colmeias deonde foram colhidas as amostras.

5 - Informações complementares5.1 Detalhar o manejo de alimentação suplementar adotadopelo apicultor (incluindo época de fornecimento às abelhas).5.2 Caso o apicultor pratique apicultura migratória, indicar os locaispara os quais as colmeias são deslocadas em cada época do ano.5.3 Informar se outros apicultores têm colmeias na mesmapropriedade.5.4 Utilizar o verso do formulário para outras observaçõesque considerar importantes e não contempladas pelositens mencionados (ex.: histórico do problema etc.)

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RUMINANTES,EQUÍDEOS ESUÍDEOS

Capítulo 2

AutoresEdviges Maristela Pituco

Claudia Del FavaClaudia Pestana Ribeiro Josete Garcia Bersano

Simone Miyashiro

Centro de P & D de Sanidade AnimalInstituto Biológico (APTA/SAA-SP)

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SangueO sangue representa cerca de 8% do peso corporal de umanimal. As análises do sangue são importante apoio aodiagnóstico clínico. Pode ser colhido com seringa e agulhae transferido para recipientes de diferentes capacidades,com ou sem anticoagulante, ou colhido em tubos a vácuoque, por serem herméticos, garantem a esterilidade daamostra, o que é desejável em toda punção venosa. Para

serem representativas, as amostras de sangue devem tersua composição e integridade mantidas durante as fasespré-analíticas de colheita, manuseio, transporte e eventualarmazenagem. Antes da colheita de sangue para arealização de exames laboratoriais, é importante conhecer,controlar e, se possível, evitar algumas variáveis que podeminterferir na exatidão dos resultados. Classicamente, sãoreferidas como condições pré-analíticas variação na dietae uso de medicamentos. Outros aspectos, como o uso degel separador, anticoagulantes e conservantes e a hemólisepodem também ser causa de variação dos resultados.

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Sangue

a) Veia jugular;b) Veia coccígea;c) Veia mamária; e

d) em suínos, veiacava cranial

Utilizar sistema a vácuoou seringa e agulha

1. Material

2. Onde colher

3. Como colher

7 . Tempo crítico para chegada ao laboratórioAté 48 horas

3938

a) Tubo de ensaiosem anticoagulante:capacidade 10 mL.

b) Tubo de ensaiocom EDTA K2:

capacidade 5 mL

6. Temperatura da amostra para transporte

a) Pesquisa de anticorpos

a e b) Refrigerada (+2°C a +8°C)

b) Pesquisa diretado agente

a) Obtenção de soro b) Sangue total

4 . Recipiente e quantidade

5 . Exames

O sangue deverá sercolhido e enviado

em tubo comanticoagulante (EDTA

k2). Homogeneizarsuavemente,

invertendo o tubo(cerca de 6 vezes)

Colher o sangue em tubo semanticoagulante; manter o tubo

inclinado em temperaturaambiente até o sanguecoagular e retrair o coágulo,exsudando o soro (30 a 60min). Transferir o soro paraoutro tubo (tampa com rosca

ou tipo “Eppendorf”).Se for utilizado tubo com

gel separador,será necessário

centrifugar osangue nomínimo30 minutosapós a

colheita eno máximo

2 horas e enviaro soro no próprio tubo.


22/111

Colheita de sangue comSistema a Vácuo

1. Rosquear a agulha no adaptador. Retirar a capaprotetora da agulha somente no momento dapunção; (figuras a e b)

2. Realizar antissepsia do local escolhido parapunção; passar algodão embebido em álcool a70%, na direção do pelo;

3. Retirar a capa da agulha e fazer o garrote;

4. Puncionar a veia; (figura c)

5. Introduzir o tubo no adaptador, pressionando-oaté o limite; (figuras d e e)

6. Esperar o sangue parar de fluir para dentrodo tubo, só então retirar o tubo, assegurando adevida proporção sangue/anticoagulante; (figura f)

7. Soltar o garrote e só depois retirar o tubo e emseguida a agulha;

8. Separar a agulha do adaptador e descartá-laem recipiente para perfuro-cortantes.

PASSO A PASSO

4140

a

b

e

f

c

d


23/111

Colheita de sangue comSeringa e Agulha

1. Encaixar a agulha na seringa, sem retirar a capaprotetora. Certificar-se de que a agulha esteja bemencaixada; (figura a)

2. Movimentar o êmbolo da seringa (para frente e paratrás) para retirar o ar; (figura b)

3. Fazer a antissepsia do local escolhido para punção;passar algodão embebido em álcool a 70%, na direçãodo pelo;

4. Retirar a capa da agulha e fazer o garrote;

5. Introduzir a agulha na veia e puxar o êmbolo da seringalentamente, para que o sangue possa fluir; (figura c)

6. Colher aproximadamente 10 mL de sangue;

7. Soltar o garrote após a venopunção;

8. Separar a agulha da seringa. Descartar a agulha emrecipiente para perfuro-cortantes (figura d).Lembre-se: Nunca reencapar as agulhas.

9. Transferir o sangue da seringa para um tubo de ensaiocom ou sem anticoagulante. Para evitar hemólise, osangue deve fluir lentamente pela parede do tubo; (figura e)

10. Descartar a seringa em saco plástico apropriado ouno mesmo recipiente em que foi descartada a agulha.

PASSO A PASSO

a

b

c

d

e

4342


24/111

• Antes de iniciar a punção, deixar que o álcoolutilizado na antissepsia seque.• Evitar usar agulhas de menor calibre.• Não colher sangue de área com hematomaou equimose.• Em colheitas de sangue a vácuo, puncionar a veia doanimal com o bisel voltado para cima. Perfurar a veiacom a agulha em um ângulo oblíquo de inserção, de30 graus ou menos. Esse procedimento visa a preveniro choque direto do sangue na parede do tubo, o quepode hemolisar a amostra, e também a evitar o refluxodo sangue do tubo para a veia do animal. Esperaro sangue parar de fluir para dentro do tubo, antesde trocar o tubo por outro, assegurando a devidaproporção sangue/ anticoagulante.• Tubos com anticoagulante com volume insuficiente oucom excesso de sangue alteram a proporção corretade sangue/aditivo, podendo levar a hemólise e aresultados incorretos.• Em colheitas com seringa, verificar se a agulha

está bem adaptada, a fim de evitar a formação deespuma; não puxar o êmbolo da seringa com muitaforça. Descartar a agulha, passar o sangue, fazendo-odeslizar cuidadosamente pela parede do tubo ecuidando para que não haja contaminação do bico daseringa com o anticoagulante ou ativador de coágulocontido no tubo.• Não espetar a agulha na tampa do tubo, paratransferência do sangue da seringa para o tubo,porque pode ocorrer uma pressão positiva, o queprovoca, além da hemólise, o deslocamento darolha do tubo.

BOAS PRÁTICAS PÓS-COLHEITAPARA PREVENÇÃO DA HEMÓLISE

• O sangue colhido não deve ficar exposto atemperaturas muito elevadas ou mesmo exposiçãodireta à luz, para evitar hemólise e/ou degradação.• Homogeneizar a amostra de sangue comanticoagulante suavemente por inversão de 5 a 10vezes, não agitar o tubo.• O sangue total nunca deve ser congelado, senecessário estocar, manter refrigerado, lembrandoque deverá chegar no laboratório dentro de 48 horas. • O soro poderá ser congelado a - 20°C, por até ummês. Nunca congelar soro com coágulo em tubo semgel separador.• Não deixar o sangue em contato direto com gelo.• Não centrifugar a amostra de sangue em tubo paraobtenção de soro antes do término da retração docoágulo, pois a formação do coágulo ainda não estácompleta, podendo levar à ruptura celular.• Quando utilizar um tubo primário com gel separador,a separação (centrifugação) do soro deve ser efetuadadentro de no mínimo 30 minutos e no máximo 2 horas

após a colheita.• Tubos com gel separador não podem ser centrifugadosem baixas temperaturas, uma vez que as propriedadesde fluxo do gel relacionam-se com a temperatura. Aformação da barreira de gel pode ser comprometidacaso o tubo seja resfriado antes ou durante acentrifugação. Para otimizar o fluxo e evitar aquecimento,ajustar as centrífugas refrigeradas a 25º C.• Não usar o freio da centrífuga com o intuito deinterromper subitamente a centrifugação dos tubos,pois esta brusca interrupção pode provocar hemólise.

4544

BOAS PRÁTICAS DE COLHEITAPARA PREVENÇÃO DA HEMÓLISE


25/111

Métrico(mm)

Gauge/Polegadas

1,60 X 40 16G 1 1/2

1,20 X 251,20 X 40

18G 118G 1 1/2

1,00 X 251,00 X 30

19G 119G 1 1/4

0,80 X 250,80 X 300,80 X 40

21G 121G 1 1/421G 1 1/2

0,70 X 250,70 X 30

22G 122G 1 1/4

0,55 X 20 24G 3/4

0,45 X 13 26G 1/2

0,38 X 13 27 5G 1/2

TABELA DE MEDIDAS DE AGULHAS

Cor do CanhãoA cor do canhão defineo diâmetro da agulha

C I N Z A

C A S T A N H O

V

I O L E T A

P R E T O

V E R D E

C R E M E

R O S A

B R A N C O

Indicações de usoPunção venosa: Branca – bovinos e bubalinos; Rosa – bovinos, equídeos, suídeos epequenos ruminantes; Creme – pequenos ruminantes; Verde – pequenos ruminantesPunção articular: verde, violeta, castanho e cinza; Aves – preto e verde

4746

T a m

p a a m a r e l a

C e n t r i f u g a ç ã o

( 1 5 0 0 - 2

0 0 0 g / 1 0 m i n ) , n o m í n i -

m o 3 0 m i n u t o s e n o m á x i m o

2 h o r a s a p ó s a c o l h e i t a

C o á g

u l o

S o r o s e p a r a

d o p o r G e l

P e s q u i s a s d e a n t i c o r p o s

T a m p a v e r m e l h a

R e p o u s o 3 0 a 6 0 m i n

.

C o á g

u l o

S o r o

P e s q u i s a s d e a n t i c o r p o s

T

a m p a v e r d e


S a n g u e t o t a l

P l a s m a

E x a m e s B i o q u í m i c o s

e t o x i c o l ó g i c o s

T a

m p a b r a n c a


N o m á x i m o e m

a t é 2

h o r a s a p ó s a c o l h e i t a


P l a s m a

A n e l d e L e

u c ó c i t o s

I s o l a m e n t o

B i o l o g i a M o l e c u l a r

T a m p a l i l á s



P l a s m a

A n e l d e L e

u c ó c i t o s

I s o l a m e n t o

B i o l o g i a M o l e c u l a r

TUBOS COM ANTICOAGULANTETUBOS SEM

ANTICOAGULANTE

TUBOSILICONIZADO

COM GELSEPARADOR

EDTA K2DIPOTÁSSICO

COM GELSEPARADOR

EDTA K2DIPOTÁSSICO

TUBOSILICONIZADO

HEPARINA

T U B O S P A R A C O L H E I T A D E S A N G U E

P R O D U T O F I N A L

P R E P A R O

T U B O S

E X A M E S


26/111

48 49

Febre aftosa X X X X -Estomatite vesicular X X X X X Língua azul X - X X -Varíola/vaccínia(orthopoxvirus)

X X X X X

Pseudovaríola X - - - -Ectima contagioso - - X X -Rinotraqueiteinfecciosa bovina/vulvo vaginitepostular infecciosa

X - - - -

Diarréia viral bovina X - - - -Doença Vesiculardo suíno

- X - - -

Exantema Vesiculardo suíno

- X - - -

Principais doenças de pelee mucosas e espécies acometidas

DOENÇASESPÉCIES ACOMETIDAS

Pele e mucosas A etiologia das enfermidades que afetam a peleé muito variada, incluindo, entre outras, causasparasitárias, bacterianas, fúngicas, virais, neoplásicas,nutricionais, tóxicas, físicas, congênitas e genéticas.O diagnóstico não é tão fácil, pois a pele está expostaa fatores externos (contaminação e efeito do sol)que modificam substancialmente o aspecto e a

evolução das lesões. Das doenças que acometemas mucosas, a principal é a estomatite, que abrangeo complexo de enfermidades vesiculares, tais comoa febre aftosa, a estomatite vesicular e a varíolabovina, que têm em comum a propriedade deprovocar nas espécies afetadas a formação devesículas contendo líquido incolor ou ligeiramentesanguinolento, típico dessas doenças. O diagnósticose baseia em informações clínicas, epidemiológicase laboratoriais. O diagnóstico deve ter sempreum caráter diferencial. Os materiais de eleiçãopara diagnóstico são fragmentos de epitélio e demucosas e exsudato (líquido vesicular) provenientesde lesões linguais, bucais, podais ou de úbere. Alémdisso, para pesquisa direta de agente em possíveisportadores do vírus de febre aftosa, utiliza-se materialesofágico-faríngeo. A pesquisa de anticorpos emsoro tem sido utilizada para demonstrar ausênciade infecção, determinar a prevalência em estudossoroepidemiológicos, avaliar a resposta humoral apósvacinação e desafio para os programas de erradicaçãoe vigilância. Em raras situações, a sorologia pode serutilizada como ferramenta de diagnóstico definitivo.

4948


27/111

50 515150

Suabes e meiosconservantes

para transporte

Coletor universal

Lâmina de bisturi

Lâmina paramicroscopia

Tesoura cirúrgica

Pinça

Cabo de bisturi

Coletoruniversalcom meioconservante

Tubos (Tipo Falcon) commeio conservante

Lâmina de bisturi

“Punch”para biópsia

Luvas

Seringa e agulhasSistema para colheitade sangue a vácuo

Agulha para colheitade sangue a vácuo

Papel-toalha

Porta-lâminas

Microtubos tipo“Eppendorf”

Tuboscom tampacom rosca

Material para colheita deamostras para diagnóstico dedoenças de pele e mucosas

Coletor de raspadoesofágico-faríngeo(copo de “Probang”)

Tubos a vácuo paracolheita de sangue,

com gel separador, seme com anticoagulante

Tubo tipo KMA(tampa com rosca)


28/111

52 53

1. Material

5 . Recipiente

4 . Meio


Pesquisa diretado agente

8. Exames

2. Como colher

5352

3. Quantidade

Refrigerada (+2°C a +8°C)


Extensa lesão de boca em um

bovino a fe tado por febre a ftosa

a) Todo o conteúdoda vesícula

a) Líquido Vesicular. Caso as vesículas estejam

íntegras (não rompidas),colher o líquido vesicular,com o auxílio de seringae agulha estéril

a) Nenhum

a) Tubo de ensaioestéril com tampacom rosca (5 mL)

b) Cerca de 2 g deepitélio (1 a 2 cm2)

b) Líquido de Vallée com pH 7,4 a 7,8; ou Meio Eagle 2 vezes concentrado, com

antibiótico e pH 7,2-7,6

b) Tubo de ensaio estérilcontendo meio apropriado emquantidade suficiente para queas amostras fiquem submersas

C olhe ndo lí quido v e sicular de um bov ino af e t ado por f e br e af t osa

Le sõe s no e spaço

in terd ig i ta l de um bo v ino

Le s õe s no t e t o d e v ac a, pr ov oc ad as pe l o v í r us d a v ar í ol a bov i na

a

b

Amostras para diagnósticode doenças de Pele e Mucosas

Líquido e tecidoepitelial vesicular

b) Tecido Epitelial Vesicular. Colher, com tesoura ou bisturie pinça estéril, fragmentos deepitélio vesicular, incluindoas bordas das lesões dasregiões oral, nasal, podal ede glândula mamária

IM P O R T A N T E No c aso de suspe it a de doe nç a v e sic ular , o se r v iç o ofic ial de v e r á se r ime diat ame nt e inf or mado.As amost r as só dev em ser colhidas por pr ofissionais do ser v iço oficial e env iadas sob condições de segur ança par a labor at ór ios aut or izados, par a pr ev enir a disseminação da doença.

As patas e úberes, antes da colheita, devem serlavados com água limpa para remoção de sujeiras(não utilizar nenhum tipo de sabão ou antisséptico)

NOTA


29/111

Pesquisa direta do agente(Febre Aftosa)

Líquido esofágico - faríngeo (LEF)

Volume de muco(ideal: 15 mL, mínimo:5 mL) diluído em igual

volume de meio

Earle 2 vezesconcentrado, com

antibiótico e pH 7,4-7,6

Mucosa da região faríngeae anterior do esôfago

1. Material 4 . Quantidade

5 . Meio

2. Onde colher

3. Como colher

9. Exames

6. Recipiente Frasco de boca

larga, com tampa derosca, esterilizado

Até 48 horas

8. Tempo crítico para chegada ao laboratório

• Antes da colheita, osanimais deverão permanecerem jejum, se possível, por umperíodo de 12 horas;• Uma hora antes da colheita,administrar água para eliminareventuais restos alimentares;• Colher as amostras de LEF por meio decoletores (copo Probang) previamenteesterilizados, utilizando um para cadaanimal. Se não houver um númerosuficiente de coletores, realizar a lavagemem água limpa e desinfetar em águafervente antes de colher amostra emoutro animal e assim sucessivamente.• Introduzir o coletor por sobre a língua do animalpressionando-o levemente na glote até o copo serengolido pelo animal (certificar que o coletor nãoesteja na traquéia, situação em que o animal irátossir, tentando expelir o objeto);• Realizar o raspado da mucosa esofágica-faríngea, fazendomovimentos suaves com o coletor (até 5 vezes) e retirá-lo comcuidado para não derramar o conteúdo;• Transferir o material LEF para frasco de boca larga e adicionaruma quantidade igual de Meio Earle 2X;• Fechar o frasco, agitar e realizar a desinfecçao externa.

5554

7 . Temperatura da amostra para transporte

N O T A

N O T A

D e a c o r d o c o

m a s d i r e t r i z e

s

d o s p r o g r a m

a s d e s a ú d e

a n i m a l, a c o

l h e i t a d e m a

t e r i a l

e s o f á g i c o - f a r

í n g e o d e v e r á

s e r r e a l i z a d a

s o m e n t e p e

l o

S e r v i ç o V e t e r i

n á r i o O fi c i a l.

Amost r as par a ensaios com fins legais dev em ser lacr adas ou seladas de modo que o acesso a elas seja possí v el soment e pelo r ompiment o do lacr e ou selo.

Refrigerada (+2°C a +8°C); ou Congelada (-20ºC)

T r ansf e r ir o cont e údo do copo cole t or par a f r asco de boca lar ga

Realização dos mo vimen tos

para a colhei ta do LEF

Int r odução do colet or na boca do animal

F O T O

: L U Í S

D Í A

S


30/111

Exsudato (secreções)

a) Eagle 2 vezesconcentrado, comantibiótico e 10% Soro

Fetal Bovino (pH 7,4-7,6)

b) Tioglicolatode sódioMucosas oral, nasal ou

outro tecido afetado por

um processo inflamatório

1. Material

5 . Meio2. Onde colher

3. Como colher 6. Recipiente


Colher com suabe estéril,friccionando energicamente o local

Tubo de ensaio esterilizado

Até 48 horas

5756


7 . Temperatura da amostrapara transporte

N O T A

Solici tar ao labora tório

o meio apropriado.

4 . Examesb) Pesquisa de bactériasa) Pesquisa de vírus

Meios conservantespara transporte daamostra (Tioglicolatode sódio, BHI e Eagle)

N O T A

Utilizar um suabe paracada amostra.

Acondicionando suabe e m me io T ioglicolat o de sódio


31/111

Biópsia de pele e mucosa a e b) Fragmentos com, no mínimo,0,5 cm de diâmetro por 0,3 cm de espessura

De preferência na área detransição com e sem lesão

1. Material 5 . Quantidade

2. Onde colher

4 . Exames

7 . Recipiente b) Frasco, capacidade

de acordo com otamanho do fragmento

b) Remeter no mesmo tempo que asamostras refrigeradas. Os fragmentos

em solução de formol 10%, mesmonão completamente fixados, podem

ser enviados ao laboratório.

a) Tubo de ensaio esterilizado,capacidade de acordo com otamanho do fragmento

a) Refrigerada(+2°C a +8°C)

a) Até 48 horas


3. Como colherCom “punch”, tesoura,pinça e bisturi

6. Meioa) 3 mL de Eagleou solução salinafisiológica - (NaCl0,9%) estéril

b) Formol tamponado 10%

(Volume de formol, pelo menos,10 vezes maior que o volume detecido a ser fixado)

5958


b) Ambiente ou Refrigerada(+2°C a +8°C). Nunca congelar

a) Pesquisa direta do agente b) Histopatológico

a

b

c

Realizar tricotomia e antissepsia;

a. Inserir o punch, girá-lo e retirarfragmento;b. Com auxílio de pinça e tesoura,cortar o fragmento para a biópsia;c. Fragmento extraído;d. Submergir um fragmentoem meio Eagle (ou em soluçãosalina); ee. outro fragmento em formol 10%. e

d


32/111

Raspado de pele

Cerca de 1 g

Na periferia dasáreas lesionadas

Fazer o raspadoprofundo comlâmina de bisturi

1. Material

4 . Quantidade

2. Onde colher

3. Como colher

6. Recipiente

5 . Meio

Coletor universal

Nenhum

Pesquisa direta do agente

9. Exames

6160

7 . Temperatura daamostra para transporte

Refrigerada(+2°C a +8°C)

8. Tempo críticopara chegadaao laboratório

Até 48 horas

Nononononnonon non


33/111

6362

Sangue




1. Material

2. Onde colher

3. Como colher


5 . Exames

6362



capacidade 5 mL


a) Pesquisa de anticorpos b) Pesquisa diretado agente


a) Obtenção de soro b) Sangue totalColher o sangue em tubo semanticoagulante; manter o tubo













34/111

Sistema respiratórioAs doenças respiratórias são multifatoriais e provocammortalidade, especialmente em animais jovens.Alterações climáticas, manejo zootécnico e instalaçõesinadequadas estressam e debilitam o animal,predispondo-o a infecções. O diagnóstico devebasear-se no conjunto de informações, tanto clínicasquanto epidemiológicas e na confirmação laboratorial.

O material clínico de eleição para o diagnósticodiferencial deve incluir tecido pulmonar e linfonodosregionais e secreções respiratórias e oculares. O sorosanguíneo pode auxiliar no diagnóstico.

6564

Tuberculose(Mycobacteriumbovis ) e outrasmicobacterioses

X X X X X

Linfadenite caseosa - - X X -Pleuropneumoniacontagiosa(Micoplasmose,Actinobacilose)

X X X X X

Pneumoniacausada poragentes piogênicos

X X X X X

Doença de Aujeszky - X - - -Rinite atrófica(Bordetellabronchiseptica e Pasteurella

multocida )

- X - - -

Influenza X X X X X Vírus SincicialRespiratório

X - - - -

Mormo - - - - X Rinopneumoniteequina

- - - - X

Arterite viral equina - - - - X Maedi-Visna - - X - -

Principais doenças do sistemarespiratório e espécies acometidas



35/111

66 67

Material para colheita deamostras para diagnóstico de

doenças do sistema respiratório

6766

Tesouras cirúrgicas

Pinça dentede rato

Cabo de bisturi

Lâmina de bisturi

Coletor universal estérilTábua paracorte de órgãos

Cary Blair

Pedra paraafiar facas

Suabe estéril (Comercial)

Meios para transporte deamostras (BHI, A3XB, Eagle)

Facas

Tesoura

paradestrincharossos


Sistema para colheitade sangue a vácuo


Tubo tipoKMA(tampacom rosca)

Tubos a vácuo paracolheita de sangue,com gel separador, seme com anticoagulante

Tuboscom tampacom rosca


36/111

68 69

Com tesoura epinça estéril, colherfragmentos dasáreas com lesões

(caseosa, purulenta,marmorizada, outras)

3. Como colher

2. Onde colher

Pulmão elinfonodos

a) Nenhum

a) Coletoruniversal estéril


a) Até48 horas

a) Pesquisa direta do agente

b) Formol tamponado 10% (volumede formol, pelo menos 10 vezes maior

que o volume de tecido a ser fixado)

b) Ambiente ouRefrigerada (+2°C a +8°C)

b) Remeter no mesmo tempo que a amostrarefrigerada. Os fragmentos em solução de formol 10%, mesmo não completamente

fixados, podem ser enviados ao laboratóriob) Histopatológico

b) Frasco, capacidade de acordocom o tamanho do fragmento

Órgão acometido elinfonodos regionais

5 . Quantidade

6. Meio

4 . Exames

7 . Recipiente



1. Material

6968

Amostras para diagnóstico dedoenças do sistema respiratório b) Fragmentos de 3x1x1 cm

de cada órgãoa) Fragmentos de 20 g e, pelomenos, um linfonodo regional

N O T A

Fragmento de lesão é o material de eleição para diagnóst ico de tuberculose.

Lesões caseosas em pulmão deanimal acometido por tuberculose


37/111

70 71

Limpar o local com gaze estérilumedecida em solução fisiológica,retirando crosta, se houver. Colhercom suabe estéril, friccionandoenergicamente o local, utilizandoum suabe para cada narina.Submergir o suabe no meio paratransporte indicado.

3. Como colher

2. Onde colher

Secreções

Tubo de ensaioestéril com meio

apropriado

Refrigerada(+2°C a +8°C)

Narinas

5 . Meio

6. Recipiente

7170


1. Material


Até 48 horas

b) Submergir o suabeem 2 mL de: A3XB para

Mycoplasma spp; eTioglicolato de sódio, BHIou Cary Blair para outras

bactérias

a) Submergir o suabeem 2 mL de Eagle2 vezes concentrado,com antibiótico

N O T A

Sor o sanguí neo pode auxiliar no diagnóst ico de algumas doenças r espir at ór ias; por esse mot iv o, env iar o sor o junt o com o mat er ial par a pesquisa dir et a do agent e.

4 . Examesb) Pesquisa de bactériasa) Pesquisa de vírus

a

b

Meio Eagle

Meio BHI


38/111

Sangue




1. Material

2. Onde colher

3. Como colher



capacidade 5 mL

7372







5 . Exames














39/111

74 75

TGE Gastrenterite

Transmissível

- X - - -

Enterites bacterianas(Colibacilose,salmonelose,campilobacteriose)

X X X X X

Disenteria suína(Brachyspira hyodysenteriae )

- X - - -

Enterotoxemia(Clostridiumperfringens )

X X X X X

Isosporose(Isospora suis ) - X - - -

Verminoses

ou Helmintoses X X X X X Rotavirose emanimais jovens X X X X X

Diarréia Viral Bovina X - - - -

Febre CatarralMaligna X - - - -

Intoxicações X X X X X

Principais doenças do sistemagastrintestinal e espécies acometidas


Sistema gastrintestinal

Dada a importância da alimentação nos animais deprodução e a alta incidência de problemas com elarelacionados, faz-se necessária uma avaliação domanejo e das instalações, assim como uma inspeçãodos alimentos, armazéns e áreas de pastoreio. Ascaracterísticas da alimentação e seu manejo podemser a origem de muitos problemas, principalmentedigestivos e metabólicos. Para pesquisar a causado distúrbio, além do exame clínico geral, testescomplementares de amostras de alimento, do sucoruminal, do sangue e/ou das fezes são de grandevalor no reconhecimento e na diferenciação dedoenças dos órgãos digestivos.

7574


40/111

76 77

Material para colheita deamostras para diagnóstico de

doenças do sistema gastrintestinal

Saco plásticoestéril

Sondagástrica

Luvas depalpação

Coletoruniversalestéril

Seringa e agulhas esterilizadas


Adaptadorespara colheitade sangue avácuo

Agulha para colheita de sangue a vácuoLuvas

de látex

Tubo comtampa

com rosca


Tubo tipoKMA (tampacom rosca)Tubos a vácuo

para colheita desangue, com gelseparador, sem ecom anticoagulante(EDTA e heparina)


41/111

78 79

2. Como colher

Conteúdo ruminal

Cerca de 10 mL

Nenhum

Refrigerada (+2°C a +8°C)ou Congelada (-20°C)

Até 48 horas

Toxicológicos

Frasco estéril

Por sonda gástrica ou ruminocenteseIntroduzir a sonda gástrica via oral e retirar o líquido ruminal,criando vácuo por um sistema manual ou bomba elétrica.No caso de ruminocentese, a punção é feita no abdômenesquerdo do animal, no ponto médio entre a última costela earticulação femorotibiopatelar.Fazer tricotomia e antissepsia numa área de 5cm x 5cm.Fazer aplicação subcutânea de 2 a 3 mL de lidocaína 2%.Introduzir a cânula ventrocranial e aspirar o conteúdocom seringa de 20 mL. Se ocorrer obstrução da agulha,injetar ar com outra seringa. Obter de 3 a 10 mL de líquidoruminal. Antes de retirar a agulha, introduzir 5 mL de soluçãofisiológica estéril, para evitar aderência. Finalmente, retirarseringa e agulha, de forma suave e conjunta.

3. Quantidade

4 . Meio

8. Exames

5 . Recipiente

7 . Tempo críticopara chegadaao laboratório

1. Material

7978

Amostras para diagnóstico dedoenças do sistema gastrintestinal

6. Temperaturada amostra

para transporte

Resf r iar ou congelar o mais r ápido possí v el após a colheit a f azendo chegar ao labor at ór io, nessas condições.

N O T A


42/111

Diretamente doreto (utilizandoluva) ou da porçãocentral do bolo fecal(utilizando espátula),imediatamenteapós defecação

2. Como colher

Fezes 20 g de fezes por animal. No caso derebanhos, colher 10 a 15 amostras de cada

faixa etária. Utilizar um frasco por animal.

Nenhum



Até 48 horas

Coletor universal estéril

3. Quantidade

4 . Meio

8. Exames

5 . Recipiente


7 . Tempo crítico para chegada ao laboratório

1. Material

80 81

N O T A

Em caso de mat er ial de necr ópsia,

env iar um f r agment o de alça int est inal com o cont eúdo f ecal, amar r ando as ext r emidades com bar bant e. Além disso, env iar f r agment os de f í gado e r im, uma par t e r ef r iger ada par a exames t oxicológicos e out r a par t e em f or mol a 10% par a exames hist opat ológicos. A ident ificação de subst ância t óxica nest es ór gãos pode auxiliar no diagnóst ico da causa mor t e.


43/111

3. Como colher

2. O que colher

Alimentos para nutrição animal

Até 48 horas

Sacos plásticosresistentes paraprodutos sólidos

Frascos de polietileno

para produtos líquidos(melaço, gordura)

4 . Quantidade

5 . Recipiente

7 . Tempo crítico para chegada ao laboratório

1. Material

Análise química e pesquisa de agente(toxinas e bactérias, entre outros agentes)

8. Exames

N O T A

N O T A

Nunca re tirar a amos tra de um único

pon to, pois não será represen ta tiva

e não permi tirá conclusões quan to à

qualidade do produ to.

E fe tuar as colhei tas em vários pon tos, principa

lmen te

para produ tos que

não apresen tam uma

homogeneidade per fei ta ou que

tenham tendência à separação.

8382


Retirar amostras parciais de cada alimento a seranalisado, colhidas em diferentes pontos do local deinteresse: campo, armazém, sacarias, cocho, silos etc.Dessa amostra média, após homogeneização, retiraruma única amostra, que deve ser representativa damédia do material a ser analisado.

Ração comercial, grãos, forragens frescas e conservadas(silagem e feno), restos de cultura, palhadas e suplementos

b) 2 kg para alimentos volumosos,como silagem, feno e para alimentos

que tem tendência à separação comorações e concentrados contendo uréia,

farelo de algodão, entre outros produtos.

b) Refrigerada

(+2°C a +8°C) paramaterial verde ou úmido

a) 1 kg pararações, grãos econcentrados,entre outrosalimentos.

a) Ambiente (material seco)


44/111

Sangue




1. Material

2. Onde colher

3. Como colher

8584



a) Pesquisade anticorpos

a, b e c) Refrigerada (+2°C a +8°C)


c) Toxicológicose bioquímicos

a) Obtenção de soro b e c) Sangue total

5 . Exames

O sangue deveráser colhido e

enviado em tubocom anticoagulante(EDTA ou heparina).

Homogeneizarsuavemente,

invertendo o tubo

(cerca de 6 vezes)

EDTA Heparina








a) Tubo deensaio semanticoagulante:capacidade 10 mL

b) Tubo deensaio com

EDTA K2:capacidade

5 mL

c) Tubo deensaio com

heparina:capacidade

de 5 a 10 mL



45/111

Brucelose X X X X X Leptospirose X X X X X CampilobacterioseGenital

X - - - -

Micoplasmose X X X X X Neosporose X - X X X Toxoplasmose X

(raro)X X X X

TricomoníaseGenital Bovina

X - - - -

Rinotraqueíteinfecciosa bovina/Vulvo vaginitepostular infecciosa

X - - - -

Diarréia viral bovina X - - - -Parvovirose - X - - -

Doença de Aujeszky - X - - -Peste suína clássica - X - - -Síndrome Reprodu-tiva e Respiratóriados Suínos (SRRS)

- X - - -

Circovirose - X - - -Clamidiose X - X - -Arterite viral equina - - - - X Aborto equinopor herpesvirus

- - - - X

Principais doenças do sistema reprodutore urinário e espécies acometidas


Sistema reprodutor e urinário

Os problemas reprodutivos estão associadosa repetição de cio, infertilidade, descarte prematurode reprodutores, abortamento, mumificação fetal,nascimento de bezerros com malformaçãoe fracos, entre outros fatores. A etiologia dasdoenças da reprodução é multifatorial, podendo

a causa ser infecciosa ou não infecciosa, e requerdiagnóstico diferencial para identificação do agente.Para tanto, devem ser examinadas prioritariamenteamostras de tecidos fetais refrigerados e fixadasem formol, secreções cervicovaginal e prepucial.A pesquisa de anticorpos no soro sanguíneo podeauxiliar no diagnóstico.

8786


46/111

88 89

Material para colheita de amostraspara diagnóstico de doenças dosistema reprodutor e urinário

Coletoruniversal estéril

Tábua paracorte de órgãos

Suabe estéril

Suabe estéril

Palhetasde sêmen

Papeltoalha

Gaze

Facas

Tesouraparadestrincharossos

Suabe acopladoem pipeta deinseminação artificial

Pipeta deinseminação artificial

Meios para transportede secreções (BHI,A3XB, Eagle e Lactopep)

Saco plástico



Tubos a vácuo para colheita desangue, com gel separador,sem e com anticoagulante


Tubo tipoKMA (tampacom rosca)

Tubo comtampacom rosca

Pedra paraafiar facas


47/111

Fetos de até 2Kg

Saco plástico(no mínimo,

3 sacos paracada feto)

Até 48 horas

3. Recipiente

5 . Tempo críticopara chegadaao laboratório

1. Material

Amostras para diagnóstico dedoenças do sistema reprodutore urinário

6. ExamesPesquisa direta

e indireta doagente e exame

histopatológico

9190

Feto ovino

Feto bovino

Feto caprino

Fetos suínos

NO T A Não congelar.

O laboratório irá necropsiar e colheras amostras para os diversos exames.

Colher soro sanguíneo da fêmeaque abortou.

Feto inteiro

2. O que colher


4 . Temperaturada amostra para

transporte


48/111

Necropsiar e colher os fragmentos de órgãos com pinçae tesoura esterilizadas. Escolher parte do órgão com

lesão, se não houver lesão, colher aleatoriamente. Colheros fluidos corporais com seringa e agulha esterilizadas

3. Como colher

2. O que colher

Feto e natimortocom mais de 2 Kg

a) Nenhum

a1) Fragmentos de cada órgãocom cerca de 20 ga2) 3 mL de cada fluido


b) Órgãos fixados com formoltamponado 10% (volume de formol,

pelo menos 10 vezes maior que ovolume de tecido a ser fixado).

b) Fragmento de cadaórgão com cerca de

3x3x1 cm

b) Ambiente ouRefrigerada (+2°C a +8°C).Nunca congelar

Fígado, pulmão, baço,sistema nervoso central,coração, rim, timo efluidos corporais(líquido toracoabdominalou pericárdico econteúdo gástrico)

5 . Quantidade

6. Meio

7 . Recipiente



1. Material

a1) Pesquisa direta do agentea2) Anticorpos

b) Histopatológico4 . Exames


fixados, podem ser enviados ao laboratório

a) Até48 horas

b) Frasco; capacidadede acordo com o

tamanho do fragmento

a1) Órgãos: saco plásticoou coletor universal.a2) Fluido: tubo de ensaio esterilizado ou coletor universal

Fluidotóraco-abdominal

9392

Colhendo conteúdo gástrico


49/111

Escolher sempre áreas de transição do tecido com e semlesão. Nos ruminantes, colher algumas carúnculas

2. Como colher

Placenta a) 20 g b) Fragmento de 3x3x1 cm

a) Nenhum


b) Formol tamponado 10% (Volumede formol, pelo menos 10 vezes maior

que o volume de tecido a ser fixado)

b) Ambiente ouRefrigerada (+2°C a +8°C).Nunca congelar

4 . Quantidade

5 . Meio

6. Recipiente



1. Material


fixados, podem ser enviados ao laboratório

a) Até48 horas

b) Frasco; capacidadede acordo com o

tamanho da peça

a) Saco plásticoou coletor universal

a) Pesquisa direta do agente b) Exame histopatológico3. Exames

9594

ba


50/111

Excitar o tourocom fêmea ou

manequim, ou usareletroejaculador.Colher o sêmen,utilizando vaginaartificial

2. Como colher

Sêmen Sêmen in natura: 0,5 mLSêmen industrializado:10 palhetas de 0,5 mL

Palheta outubo de ensaioesterilizado


Até 48 horas


3. Quantidade

7 . Exames

4 . Recipiente



1. Material

N O T A

O v olume de sê me n a se r e nv iado ao labor at ór io de pe nde das análise s que se r ão r e alizadas; na dúv ida, consult ar o labor at ór io. Ide nt ificar indiv idualme nt e as amost r as.

9796

F O T O : C R V L A G O A

F O T O : C R V L A G O A


51/111


52/111

3. Como colher

2. Onde colher

Muco prepucial 40 mL de soluçãosalina 0,85%

Lactopep (proporção:

2 g/40 mL de solução salina)

Até 06 dias

Pesquisa de Tritrichomonas foetus

Tubo cônico

4 . Quantidade

5 . Meio

9. Exame

6. Recipiente

1. Material

Cavidade prepucial

Ambiente

101100

Técnica do lavado prepucial:Fazer a tricotomia do óstioprepucial e lavar externamenteo prepúcio utilizando apenaságua. Enxugar com papel toalha.Proceder à lavagem da cavidadeprepucial, utilizando uma pipeta deinseminação artificial acoplada a umtubo flexível ligado a uma seringacom 40 mL de solução salina estéril0,85%. Introduzir a pipeta até ofundo de saco da cavidade prepuciale injetar o volume total da soluçãosalina. Retirar a pipeta e obliteraro óstio prepucial com uma dasmãos e, com a outra, massagearvigorosamente o prepúcio por umminuto. Liberar o óstio prepuciale recolher o líquido no frascocontendo meio Lactopep (em pó).Homogeneizar e completar o volumecom solução salina, até obter 40 mL.

N O T A

A n t e s d a c o l h e

i t a, m a n t e r o t

o u r o

e m r e p o u s o s

e x u a l d e 0 7 a

1 0 d i a s.

E v i t a r c o n t a m

i n a ç ã o d o m u

c o

c o m u r i n a.

S ã o n e c e s s á r

i a s 3 c o l h e i t a

s, n o

m í n i m o, c o m i

n t e r v a l o d e 7

d i a s,

m a n t e n d o - s e

o r e p o u s o s e

x u a l.

7 . Temperaturada amostra para

transporte



53/111

Lavar a região vulvar apenas com água e secar com papeltoalha. Adaptar o suabe a uma pipeta de inseminaçãoartificial e com auxílio de um espéculo, introduzir o suabena vulva até a cérvix. Friccionar a mucosa, retirar o suabe esubmergir em tubo de ensaio contendo meio de transporte.Utilizar um suabe para cada amostra.

3. Como colher

2. Onde colher

Muco cervicovaginal

Tubo de ensaioesterilizado contendo

meio apropriado

Cavidade vaginal

6. Recipiente



1. Material

a e b) Refrigerada(+2°C a +8°C)

c) Ambiente

a e b) Até 48 horas c) Até 6 dias

b) Submergir osuabe em 2 mL de:

Tioglicolato desódio ou BHI

(Campylobacter spp),A3xB (Mycoplasma

spp) e Cary Blair(outras bactérias)

5 . Meioa) Submergiro suabeem 2 mL deEagle 2 vezesconcentrado,com antibiótico

N O T A O pe r í odo ide al par a colhe it a de muco v aginal é nos dias subse que nt e s ao e st r o ( e v it ar colhe it a logo após a cópula).

O uso de e spé culo é f undame nt al par a obt e nção de amost r a de muco ce r v icov aginal de boa qualidade .

4 . Examesb) Pesquisa de

bactériasc) Pesquisa de

Tritrichomonas foetus a) Pesquisade vírus

103102

c) Submergir osuabe em 10 mL

de Lactopep(0,5 g de Lactopep

para 10 mLde solução salina

0,85%)


54/111

Antes da colheita, higienizar a região da vulva ouprepúcio com água e sabão, enxaguar e secar compapel toalha.Colher o jato intermediário da urina com coletoruniversal estéril.

Há vários procedimentos para induzir a micção:- A obstrução dos olhos e boca em pequenosruminantes, durante uns segundos, tanto em fêmeascomo em machos, estimula a eliminação de urina.- Indução da micção em touros por massagem suave

e rítmica no óstio prepucial e, em vacas, massagemna vulva. Alertamos que esses métodos só funcionamquando a bexiga está cheia.- Uso de furosemida (diurético) por via intravenosafavorece a micção dentro de 10 a 15 minutos, porem nãodeve ser utilizado em animais suspeitos de urolitíase

3. Como colher

2. Onde colher

Urina

A amostra de urina pode ser obtida da micçãoespontânea, de micção induzida, por punção vesical

ou mediante cateterismo uretral em fêmeas.

1. Materialb) BHI.

Colocar 1 mLda urina em

3 mL em tubocontendo meio

de transporte(BHI).

5 . Meio e quantidade c) Nenhum.

Enviar orestante deurina, cerca

de 20 mL.

4 . Examesb) Pesquisa para

Brucella spp.c) Técnicas de

biologia moleculara) Pesquisa paraLeptospira spp.

6. Recipiente




Até 48 horas

N O T A Os me ios e spe cí ficos são f or ne cidos pe lo labor at ór io.

105104

a) Meio de Fletcher.Colocar 1 mL de urinaem 9 mL de soluçãosalina tamponada,pH 7,2 e inocular 2 mLdessa diluição emtubo contendo meiode Fletcher.

a e b) Tubo de ensaiocontendo meio apropriado

c) Coletor universal estéril


55/111

Sangue




1. Material

2. Onde colher

3. Como colher



capacidade 5 mL

106 107







5 . Exames














56/111

Peste Suína Clássica - X - - -Peste Suína Africana - X - - -Circovirose

- X - - -Diarréia viral bovina X - - - -CarbúnculoHemático (Antrax)

X X X X X

Hemoglobinúriabacilar

X - X X -

Leptospirose X X X X X Erisipela - X - - -Doença do Edema - X - - -Babesiose(protozoáriossanguíneos)

X X X X X

Anaplasmose X - X X -Púrpurahemorrágica

X X - - X

Anemiainfecciosa equina

- - - - X

Principais doenças dos sistemascirculatório e linfático e espécies acometidas


Sistemas circulatório e linfático

Doenças do sistema circulatório e linfático produzemsinais clínicos diversos, tais como edema subcutâneo,coloração anormal de mucosas (palidez, cianose,congestão e icterícia), hemorragias (petéquias esufusões) na pele e nos órgãos internos, edema deórgãos, principalmente do pulmão e do cérebro. Essessinais são decorrentes da ação de alguns patógenos

que lesionam o endotélio e podem causar dificuldaderespiratória, cansaço, anorexia, apatia e prostração noanimal. O diagnóstico diferencial utiliza fragmentos deórgãos refrigerados e fixados em formol, sangue comanticoagulante e soro sanguíneo.

109108


57/111

111110

Material para colheita de amostraspara diagnóstico de doenças dossistemas circulatório e linfá

Documents

Manual Veterinário Colheita de Amostras.pdf