Relatório Parcial - nov e dez15 - COLETA ADENSADA DE OVOS E LARVAS E …licenciamento.ibama.gov.br/Hidreletricas/Teles Pires... · 2016-02-14 · Coleta adensada de ovos e larvas

ColetaadensadadeovoselarvasdaIctiofaunanorioTelesPires–UHETelesPires

Bios – Consultoria e Serviços Ambientais Ltda www.biosambiental.com.br

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SUBPROGRAMA2:COLETAADENSADAEBIOLOGIAMOLECULARDEOVOSELARVASDAICTIOFAUNANORIOTELESPIRES-ÁREADE

INFLUÊNCIADAUHETELESPIRES/MT

PrimeiraeSegundaCampanhas–Mesesdenovembroedezembrode2015

Janeiro–2016

EQUIPETÉCNICARESPONSÁVELPELODESENVOLVIMENTODASATIVIDADESDOPROGRAMA

INTEGRANTES CONSELHODECLASSE

CTFIBAMA ASSINATURA

BiólogaMárciaOliveiraBarbosaSilva

CRBio13426/04D 361640

BiólogaCamilaBarbosaSilva CRBio80684/04D 5425595




SUMÁRIOAPRESENTAÇÃO......................................................................................................................3

2.OBJETIVOS..........................................................................................................................32.1ObjetivoGeral...............................................................................................................32.2ObjetivosEspecíficos.....................................................................................................3

3.ASPECTOSMETODOLÓGICOS..............................................................................................43.1Áreadeestudo..............................................................................................................43.2.Amostragenseanáliseslaboratoriais...........................................................................8

4.RESULTADOSPARCIAIS.....................................................................................................11

5.EQUIPETÉCNICA...............................................................................................................125.1ComposiçãodaEquipeTécnica(Profissionais).............................................................12

6.REFERÊNCIASBIBLIOGRÁFICAS..........................................................................................13




SUBPROGRAMA 2: COLETA ADENSADA E BIOLOGIA MOLECULAR DE OVOS E LARVAS DAICTIOFAUNANORIOTELESPIRES,ÁREADEINFLUÊNCIADAUHETELESPIRES-MTAPRESENTAÇÃO

Este documento contém os objetivos, aspectosmetodológicos e resultados preliminares dascoletas de ovos e larvas de peixes no rio Teles Pires e tributários, realizadas nos meses denovembroedezembrode2015,Paranaíta/MT.

As atividades serão realizadas nosmeses de janeiro e fevereiro/2016 de forma a concluir operíodo da quadra reprodutiva referente ao ano 2015/2016, conforme previsto nosubprogramadeEstudosdeColetasAdensadasdeovoselarvas,comamostragemintensivaesuportedabiologiamoleculardoProgramadeMonitoramentoeEstudosdaIctiofauna(FasedeOperação).

2.OBJETIVOS

2.1ObjetivoGeral

O objetivo geral deste trabalho é avaliar a distribuição de ovos e larvas de peixes paraidentificar a importância dos principais tributários a montante (Santa Helena, Taxidermista,Cristalino e Peixoto Azevedo) como possíveis áreas de desova de espécies migradoras queocorremnaregiãoamontantedabarragemdaUHETelesPires.

2.2ObjetivosEspecíficos

• Determinar a importância relativa do trecho do rio Teles Pires a montante doreservatóriodaUHETelesPires como locaisdedesovadeespéciesmigradorasdaregião;

• Identificar as espécies migradoras que se utilizam dos rios Santa Helena,Taxidermista,CristalinoePeixotoAzevedoeotrechoamontantedafozdessesriosparaadesova;

• Auxiliarnaidentificaçãodasrotasdemigraçãoreprodutiva,easáreasdedesovaedesenvolvimentoinicialcomrelevânciaaorecrutamentodeespéciesmigradoras;

• Avaliar o deslocamento dos ovos e larvas de peixes ao longo do reservatório e apossibilidade desses alcançarem a barragem, bem como o seu desenvolvimentoduranteoprocesso;

• Elencarmedidasdeconservaçãodaictiofauna.




3.ASPECTOSMETODOLÓGICOS

3.1Áreadeestudo

OestudofoirealizadoamontantedabarragemdaUHETelesPiresparaavaliaraconfluênciadosriostributários.Assim,ascoletasforamfeitasemumpontodentrodotributárioeemumpontoamontantedesuafoznorioTelesPires.Paraaavaliaçãododeslocamentodosovoselarvastambémforamfeitascoletasempontosnoreservatório.

Asamostras foramcoletadasemseteestaçõesdeamostragem, sendoquatronaconfluênciados tributários (SantaHelena, Taxidermista,CristalinoePeixotoAzevedo)e três ao longodoreservatório.Nostributários,ascoletasforamrealizadasemdoispontos,sendoumdentrodotributário e outro na calha do rio Teles Pires, a montante da respectiva foz, com atençãoespecialnacirculaçãodaáguaentreelesvisandogarantiraprocedênciacorretadosprodutosda desova (ovos e larvas). A posição das estações e pontos de amostragem é mostrada naFigura1edescritanaTabela1.




Figura 1.Mapa do rio Teles Pires amontante daUHE Teles Pires comas estações amostrais. De 1 a 3, pontoslocalizadosnaáreadeinfluênciadaUHETelesPires.De4a7,pontoslocalizadosnaconfluênciaentreorioTelesPireseseusprincipaistributários.Tabela1.DescriçãodospontosamostraisdacoletaadensadaebiologiamoleculardeovoselarvasdaUHETelesPires,novembro2015.

Pontosdeamostragem

Localização Coordenadas(UTM)

Descriçãodaárea

1Reservatório(Figura2)

525504E,8960891S

Trecho do rio Teles Pires que se posicionaimediatamente a montante das Sete Quedas,sendo caracterizados por extensas áreas deremansos. Após o enchimento do reservatório seconstituirá na estação de amostragem maispróximaàbarragemdaUHETelesPires.

2 Reservatório(Figura2)

543548E,8962884SLocalizado logo acima do que antes estavalocalizadaascorredeirasdoJaú,áreaintermediáriadoreservatóriodaUHETelesPires.




Pontosdeamostragem

Localização Coordenadas(UTM)

Descriçãodaárea

3Reservatório(Figura2) 556050E,8955046S

LocalizadonorioTelesPires,a jusantedaáreadetravessiadeumabalsaCajueiro, áreade remansodoreservatóriodaUHETelesPires.

4A TelesPires(Figura3)

5774451E,8942740S LocalizadonorioTelesPiresamontantedafozdorioSantaHelena.

4BSantaHelena(Figura3) 575745E,8942775S LocalizadodentrodorioSantaHelena.

5ATelesPires(Figura3) 591190E,8936457S

LocalizadonorioTelesPiresamontantedafozdorioTaxidermista.

5B Taxidermista(Figura3)

588270E,8936274S LocalizadodentrodorioTaxidermista.

6A TelesPires(Figura3) 618315E,8934023S LocalizadonorioTelesPiresamontantedafozdo

Cristalino.

6BCristalino(Figura

3) 617192E,8937870S LocalizadodentrodorioCristalino.

7A TelesPires(Figura3)

658149E,8886780S LocalizadonorioTelesPiresamontantedafozdorioPeixotoAzevedo.

7B PeixotoAzevedo(Figura3)

660072E,8886391S LocalizadodentrodorioPeixotoAzevedo.

Figura2.PontosamostraisnaáreadeinfluênciadaUHETelesPires,noreservatório.

1 2

3




Figura3.PontoslocalizadosnorioTelesPiresealgunsdeseustributários.

4A 4B

5A 5B

6A 6B

7A 7B




Todo o material coletado foi "georreferenciado" no campo com receptor GPS ("GlobalPositioning System" - Sistema de Posicionamento Global), utilizando dois sistemas delocalização: coordenadas latitude/longitude (graus, minutos, segundos) e coordenadas UTM("Universal Transverse Mercator' - Projeção Universal Transversa de Mercator). Todos osambientesamostradosforamregistradosfotograficamente.

3.2.Amostragenseanáliseslaboratoriais

Asamostragens foram realizadasnosmesesdenovembroedezembrode2015em todosospontosamostrais.Nasestaçõesamostraisde1a5e7,ascoletasforamfeitasnumperíodode24horasemcadaponto,enquantonaestaçãoamostral6,asamostragensforamfeitasdurante14dias.Emtodosospontos,ascoletasforaminiciadasnoperíodonoturnoatéoamanhecer,comintervalodequatrohorasentreasamostragens(21,1,5e9horas).

Nas amostragens foram utilizadas redes de plâncton cônico-cilíndricas (malha de 500 μm),equipadas com fluxômetro mecânico. Para as amostragens de fundo foi utilizada umaadaptação na rede de plâncton que foi acoplada em um trenó (Figura 4B), de acordo comesquemadescritoemNakatanietal.,2001.

Nosambientes considerados lóticos,obarcopermaneceuparadoeas redes forammantidasfixaspor10minutos,enquantonosambientesconsideradoslênticos,asredesforamarrastadaspelomesmo tempo (Figura 4). Nos pontos do reservatório (1, 2 e 3), as amostragens foramfeitascomdeslocamentostransversais,enquantonostributárioserioTelesPires,foramfeitasamostragensdesuperfícienasmargensesquerda,direitaecentrodorio,edefundosomentenocentro.Nomêsdenovembrode2015,comexceçãodorioCristalino,asamostragensdosoutros tributários foram feitas somente no centro, já que se encontravam muito estreitosdevidoaobaixonívelhidrológiconessesambientes. Jánomêsdedezembro,asamostragensforamfeitasnasduasmargensecentroemtodosospontosamostrais.Asamostragensparacadapontoehorário foramrepetidasduasvezes,sendoqueemumaomaterialcoletadofoifixado em formol 4%, tamponado com carbonato de cálcio, enquanto a outra foi fixada emálcool98%paraidentificaçãomolecular(Figura4).




Figura4.Amostragensdeovose larvasdepeixes.A:Coleta comrededeplânctonde superfície;B:Coleta comrededeplânctondefundo;CeD:Processamentodomaterialcoletado.

Emlaboratório,comauxíliodeummicroscópioestereoscópico,estãosendorealizadastriagensdasamostraseosovoseas larvasestãosendoseparadosdorestantedoplâncton(Figura5).Posteriormente, as amostras fixadas em formol serão identificadas até o menor níveltaxonômicopossívelseguindoatécnicadesequênciaregressivadedesenvolvimento,conformepreconizadoporAhlstrom&Moser (1976)e segundoNakatanietal. (2001). Já as amostrasfixadasemálcool,apósatriagem,osovoselarvasserãodestinadosaidentificaçãomolecular.A extração de DNA, bem como sua amplificação e sequenciamento além de análises dosprodutos de PCR e das sequências, será realizada conforme metodologia de rotina emlaboratóriosespecializados.

A B

C D




Figura5.A:Triagemdasamostras;B:Amostrascoletadas.Asdensidadesdecapturasdeovoselarvasserãocalculadasepadronizadasparaumvolumede10m3,utilizando-seaexpressão:

Y=(X/V).10Onde:

Y=Densidadedeovosoularvas/10m3;X=Númerodeovosoularvascapturados;V=Volumedeáguafiltrada(m3).

Paraocálculodovolumedeáguafiltradafoiutilizadaaexpressão:V=a.n.cOnde:V=Volumedeáguafiltrada(m3);a=Áreadabocadarede(m2);n=Númeroderotaçõesdofluxômetro;c=Fatordecalibraçãodofluxômetro.

Concomitantementeà coletadoovose larvasdepeixes, foramobtidosdadosambientaisdaáguanospontos. Foramobtidosdadosde temperatura (°C),oxigêniodissolvido (mg/L),pHecondutividadeelétrica(μS/cm).Duranteodia,tambémforamobtidosdadosdetransparência

A B




daáguamedidacomdiscodeSecchieascondiçõesmeteorológicasaparentes(chuva,ventoenebulosidade)(Figura6).

Figura6.Obtençãodedadosambientais.A:Mediçãodetemperaturaeoxigênio;B:MediçãodatransparênciacomodiscodeSecchi.

4.RESULTADOSPARCIAIS

Foram coletadas 532 amostras destinadas a identificação taxonômica e 532 destinadas aidentificaçãomolecular,totalizando1064amostras.Asamostrasestãosendotriadas,ouseja,osovoseaslarvasestãosendoseparadosparaposterioridentificaçãotaxonômicaemolecular.

Entre os dados ambientais coletados, os valores dos parâmetros obtidos foram semelhantesentreoslocaisamostrados,comexceçãodatransparênciaquevarioumuitonoprópriolocaleentreoslocais.Alémdatransparência,atemperaturatambémvarioubemnorioTelesPireseCristalino. Os maiores valores de oxigênio dissolvido (OD) foram obtidos no rio Cristalino ePeixoto Azevedo, com 7,4±0,5 e 7.3±0.4, respectivamente. As maiores temperaturas foramregistradasnorioTelesPireseCristalino,enquantoopHtevemaioresvaloresnorioPeixotoAzevedoeTelesPires(Tabela2).

Tabela2.Valoresdemédiaedesviopadrão(Média±DesvioPadrão)paraosdadosambientaisobtidos.OD=oxigêniodissolvido.

Local OD(mg/L) Temperatura(°C) pH Transparência(cm)Cristalino 7.4±0.5 29.5±17.6 7.3±0.6 124±29.8PeixotoAzevedo 7.3±0.4 31.1±0.1 8.0±0.2 56±0.0Reservatório 6.7±0.7 31.8±0.3 7.1±0.9 146.5±39.5SantaHelena 6.1±1.3 28.9±0.2 6.9±0.2 38.5±4.0Taxidermista 5.9±0.2 28.2±0.3 7.4±0.3 71.5±1.7TelesPires 7.1±0.8 32.6±23.6 7.5±4.6 104.4±27.0

A B




5.EQUIPETÉCNICA

A equipe para realização das coletas de ovos e larvas foi composta de 3 profissionais,distribuídos nas seguintes categorias: biólogo sênior (coordenador), biólogo pleno, biólogosjuniores,auxiliarestécnicosepiloteiros,conformedescriçãoabaixo:

• 1 Biólogo Pleno (campo, laboratório: triagem das amostras de ictioplâncton eelaboraçãodosrelatórios);

• 1 Biólogo júnior (campo, laboratório: triagem das amostras de ictioplâncton eelaboraçãodosrelatórios);

• 1(um)Pescador/piloteiro.

5.1ComposiçãodaEquipeTécnica(Profissionais)

• CoordenadorGeral:M.Sc.MárciaOliveiraBarbosaSilva–BiólogaSênior-CRBio13426/04-D

• Biólogo ictiólogo (1 coordenador): M.Sc Camila Barbosa Silva – Bióloga Pleno - CRBio80684/04-D

• Biólogosjuniores(2biólogosemcampo)

DiegoAlonsoDias–BiólogoCRBio98284/04-D

MauraOliveiraBarbosaMenezes–BiólogaCRBio80890/04-D

MaurícioJoséCorrea-BiólogoCRBio76922/04-D

WalquíriaCamposRodrigues–BiólogaCRBio93740/04-D

• Pescadores/Piloteiros(2)




6.REFERÊNCIASBIBLIOGRÁFICAS

Ahlstrom, E. H. & H. G.Moser. 1976. Eggs and larvae of fishes and their role in systematicinvestigationsandinfisheries.RevuedesTravauxde l'InstitutdesPechesMaritimes,40:379-398.

Nakatani, K.; Agostinho, A.A.; Baumgartner, G.; Bialetzki, A.; Sanches, P.V.; Makrakis M.C.;Pavanelli, C.S.. 2001. Ovos e larvas de peixes de água doce: Desenvolvimento e manual deidentificação.Maringá,EDUEM,378p.







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