COLETA DE AMOSTRAS BIOLÓGICAS

(sangue)

Prof. Paulo Roberto

Causas de variação dos resultados de exames

• Idade • Gênero • Gravidez • Dieta • Jejum • Exercício

• Fumo • Álcool • Medicamentos/drogas • Cronológica (ex: cortisol) • Estresse mental • Tempo de torniquete

Causas de variação dos resultados de exames

Ex: Jejum • jejum > 48h aumenta creatinina e ácido úrico e diminui CT, TG, uréia, etc; • ausência de jejum: alteração de substâncias provenientes do metabolismo dos alimentos:

Glicose, colesterol, etc.

Causas de variação dos resultados de exames

Ex : Garrote/torniquete -Longos períodos – congestão local e hemoconcentração. altera principalmente plaquetas, teste de coagulação e cálcio (para estes, se possível, coletar sem garrote.

Amostras que podem ser coletadas:

Sangue Urina Fezes Secreções Raspados Esperma Líquidos cavitários

SANGUE

• Duas fases:

-Sólida (glóbulos brancos, vermelhos e plaquetas);

-Líquida (plasma)

SANGUE: plasma/soro

• O plasma possui:

-Elementos orgânicos: • Proteínas (albumina, globulina, fibrinogênio) • Nitrogenados não proteicos (uréia, creatinina, ácido úrico, amônia) • Açúcar (glicose) • Gorduras (C, TG, FL, ácidos graxos)

- Elementos inorgânicos: cloro, iodo, fósforo, cálcio, potássio, magnésio, ferro, sulfato.

COMPOSIÇÃO DO SANGUE

ANTICOAGULANTES

EDTA (“sequestra” íon cálcio, fator de coagulação) -Uso: hematologia (preserva plaquetas) Citrato de sódio (se liga ao íon cálcio) -Uso: estudos de coagulação e VHS Oxalato (precipita íon cálcio) -Uso: estudos de coagulação, contagens de GB, dosagens bioquímicas • Não deve ser usado para hemograma (degeneração de citoplasma e aberrações de núcleo de leucócitos)

ANTICOAGULANTES

EDTA + Fluoreto (inibe a glicólise) -Uso: Glicemia (conserva a glicose) Heparina (natural; origem hepática; atua na trombina, impedindo transformação de fibrinogênio em fibrina) -Uso: gasometria, hematologia, dosagens bioquímicas, imunologia. • Reduz ao mínimo a hemólise

FORMAS DE COLETA (SANGUE)

Seringa e Agulha • Atualmente não é mais reconhecida pelo NCCLS (National Committee for

Clinical Laboratory Standards)

• Maior risco de acidente (flebotomista) • Maior chance de comprometer a qualidade da amostra: hemólise, proporção sg/anticoagulante Vácuo (aspiração mecânica automática) • É reconhecida pelo NCCLS • Gasta menos tempo e tem menor custo • Diminui o risco de acidente com perfuro-cortante • Garante a qualidade da amostra

FORMAS DE COLETA (SANGUE)

Seringa e agulha estéreis

Sistema para coleta de sangue à vácuo

Scalp

TUBOS PARA COLETA DE SANGUE

Tubo simples, nenhum

anticoagulante. Forma-se coágulo

Soro

Tubo simples: Contém gel

Soro

EDTA Anticoagulante

Plasma

• Geral

• Geral

• Análise de sangue total • Lipídeos e lipoproteínas

Heparina Anticoagulante

• Geral

Fluoreto

• Glicemia

Seringa heparinizada

• Coleta de sangue arterial

Citrato

• Coagulograma

Plasma

Plasma

Sequência de coleta para tubos

• Frascos para hemocultura • Tubo seco (tampa vermelha) • Tubo com citrato (“coagulação”; tampa azul) -Não deve ter o primeiro “jato” de sangue pois pode interferir, no entanto deve ser coletado logo pois o tempo de garrote interfere nos resultados. • Tubo com gel separador (tampa amarela) • Tubo com heparina (tampa verde) • Tubo com EDTA (tampa roxa) • Tubos fluoreto (tampa cinza)

Técnicas para venopunção

• Chamar e confirmar o paciente; • Verificar os exames a serem realizados; • Fazer antissepsia das mãos do profissional; • Preparar material de coleta: tubos, agulhas (aberta na frente do paciente), algodão, álcool; • Peça ao paciente para fechar e abrir a mão para que as veias fiquem mais palpáveis; • Selecionar a melhor veia (nunca dar tapinhas!!! Provoca lise celular....); • Garrotear o braço; • Fazer antissepsia do local da punção; • Fazer a venopunção; • Libere o garrote quando o sangue começar a fluir.

Locais de coleta de sangue

Etapas da coleta de sangue

Posição para punção

Punção no dorso da mão

Fixa- se a veia pressionando-a com o polegar, abaixo do ponto da punção, ao mesmo tempo que se estica a pele

Escolha da área para venopunção

EVITAR!!!

• Áreas com terapia

• Locais com cicatrizes de queimadura

• Áreas com hematomas

• Membro superior próximo ao local de mastectomia, cateterismo ou trombose

Punção venosa

Cuidados após coleta de sangue

• Pressionar o local da punção com uma mecha de algodão por 1 a 2 min, evitando a fomação de hematomas e sangramentos;

• Orientar o paciente para que não utilize bolsas tiracolo (ou esforço) no braço puncionado por alguns minutos;

• O uso do esparadrapo (ou blood stop) é dispensável quando se faz boa compressão. Caso use, colocar um pedaço de algodão sobre o local da punção e, sobre ele, o esparadrapo.

CUIDADO: formação do hematoma

• Veia frágil ou muito fina, em relação ao calibre da agulha;

• Agulha ultrapassa a parede posterior da veia puncionada;

• Agulha perfura parcialmente a veia, não penetrando por completo;

• Diversas tentativas no mesmo local;

• Agulha é removida antes do torniquete;

• Pressão inadequada no local após a coleta.

Principais erros pré-analíticos

• Identificação incorreta do paciente

• Tempo de uso do torniquete

• Proporção sangue/anticoagulante

• Amostra insuficiente

• Amostra coagulada

• Amostra hemolisada

• Ausência de jejum (lipemia) NOVA COLETA

Problema 1: Hemólise

• “Liberação dos constituintes das células sanguíneas dentro do plasma/soro”;

• Reconhecida pela aparência avermelhada da amostra após centrifugação, resultado da liberação da hemoglobina das hemácias;

Diferentes graus de hemólise

Principais causas da hemólise:

- Coleta antes do àlcool secar (assepsia);

- Agulha de baixo calibre;

- Aspiração forçada do sangue (seringa);

- Transferência do sangue da seringa para o tubo;

- Agitação vigorosa do tubo com a amostra.

Problema 2: Lipemia

• Amostra lipêmica: causas - Aumento do conteúdo de lipídeos (TG); - Ausência de jejum

Lipemia

Turvação

Interferência em análises fotométricas

SEGURANÇA

BIBLIOGRAFIA

Pequeno guia para coleta de sangue BD (Becton-Dickinson)

Amostras: do paciente para o laboratório (WG Guder et al, 2000)