Upload
internet
View
117
Download
4
Embed Size (px)
Citation preview
11
Edna Marques de Araújo SilvaEdna Marques de Araújo Silva
Ciclo vital dos principais parasitos de importância para o
homem. Métodos para diagnóstico de
protozoários intestinais, helmintos intestinais e parasitos
do sangue e tecido.
PARASITOLOGIAPARASITOLOGIA
22
Ciclo vital dos principais parasitos de importância
para o homem
Edna Marques de Araújo SilvaEdna Marques de Araújo Silva
33
Introdução
Agentes Etiológicos
Protozoários Helmintos
CISTOSTROFOZOÍTOS
OOCISTOSESPOROS
VERMES ADULTOSLARVAS
OVOS
44
Localizações mais freqüentes dos parasitas
55
Protozoários
66
PROTOZOÁRIOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTEENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS
PROTOZOÁRIOS PROTOZOÁRIOS
AmebasAmebas
Entamoeba histolytica/dispar, Entemoeba coli,
Endolimax nana, Iodoamoeba butschlii, Balantidium
coli
FlagelosFlagelos Giardia lamblia, Chilomastix mesnilli CoccídiosCoccídios Cryptosporidium parvum, Isopora belli, Ciclospora sp.Cryptosporidium parvum, Isopora belli, Ciclospora sp.
77
PROTOZOÁRIOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTE
ENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS
88
Ciclo evolutivo das Amebas
1-Cistos
2-Metacistos
3-Trofozoítos metacísticos
4-Pré-cistos
5-Cistos
99
PROTOZOÁRIOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTE
ENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS
Oocistos
Cryptosporidium sp.
Oocisto
Isospora belli
Oocisto de
Ciclospora cayetanesis
Coccídios
1010
Isospora belli Ciclospora cayetanensis Cryptosporidium sp.
1111
PROTOZOÁRIOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTE
ENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS
Giardia lambliaChilomastix mesnili
Flagelados
Tichomonas vaginalis
1212
Giardia lamblia
1313
Balantidium coli
1414
PRINCIPAIS HELMINTOS INTESTINAIS DO HOMEM
1515
HELMINTOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTEENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS
HELMITOSHELMITOS NeomatódeosNeomatódeos
Ascaris lumbricoides, Ancilostomideos, Enterorobius vermucularis, Strongyloides stercolaris, Trichuris trichiura, Filárias
Trematódeos Trematódeos Schistosoma mansoni, Fasciola hepáticaSchistosoma mansoni, Fasciola hepática
Cestódeos Taenia sp., Taenia sp., Hymenolepis diminuta, Hymenolepis nanaHymenolepis diminuta, Hymenolepis nana
1616
HELMINTOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTEENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS
Nematódeos
1717
Cestódeos
HELMINTOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTEENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS
Trematódeos
1818
Ascaris lumbricoides (Ciclo monoxênico)
1919
Ancilostomideos (Ciclo monoxênico)
2020
Enterorobius vermucularis (Ciclo monoxênico)
2121
Strongyloides stercolaris (Ciclo monoxênico)
2222
Trichuris trichiura (Ciclo monoxênico)
2323
Filarias (Ciclo heteroxênico)
2424
ciclo vital dos principais nematóides no homem
2525
Schistosoma (Ciclo heteroxênico)
2626
Taenia sp. (Ciclo heteroxênico)
2727
Himenolepis nana (Ciclo monoxênico/heteroxênico)
Himenolepis diminuta
(Ciclo heteroxênico)
2828
CESTÓIDES
2929
ciclo vital dos principais hemoparasitas
3030
Tripanosoma cruzi
3131
PLASMÓDIOS DA MALÁRIA
Mosquito-Anopheles obs.formas hipnozoítos
3232
O ciclo de vida dos plasmódios envolve dois hospedeiros:
•Hospedeiro vertebrado - homemCICLO PRÉ-ERITROCITÁRIO -Fígado,hepatócitos –esporozoíta, criptozoíta, esquizonte, (hipnozoítas) CICLO ERITROCITÁRIO -Hemácias- merozoíta, trofozoíta, esquizonte, merócito ou rosacéa e gametócito, •Hospedeiro invertebrado - inseto (Anopheles)- gametócitos - gametas e ocorre a reprodução. zigotos oocistos esporozoítas
3333
Leishmanias
ESFEROMASTÍGOTAS-PARAMASTÍGOTAS
Gênero inseto - Lutzomyia
3434
Toxoplasma gondii
3535
Toxoplasma gondii
3636
Métodos para diagnóstico de protozoários
intestinais, helmintos intestinais e parasitos do
sangue e tecidos
Edna Marques de Araújo Silva
3737
DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS
O exame parasitológico de fezes ainda é a ferramenta fundamental no diagnóstico das parasitoses que tem na via anal a via de eliminação das formas evolutivas.(Coura, 2005).
O diagnóstico baseado em parâmetros morfológicos ainda é o mais realizado por ser realizado por técnicas mais acessíveis e mais econômicas.
3838
Material – Fezes, urina, escarro, secreções urogenitais, aspirados, tecidos, conteúdo duodenal e espécimes obtidos por biópsia
Parasitas intestinais e do sangue- demonstração morfológica do(s) estágio (s) de diagnóstico
Infecções dos tecidos- (sorologia) Ex. toxoplasmose, leishmaniose visceral, amebíase extra-intestinal, esquistossomose crônica
DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS
3939
O Diagnóstico dos parasitas no organismo humanoO Diagnóstico dos parasitas no organismo humano Decorre peculiaridade de cada parasitose Decorre peculiaridade de cada parasitose
As técnicas usadasAs técnicas usadas
Biologia do parasita (leveza, localização, tropismos, Biologia do parasita (leveza, localização, tropismos,
etc.)etc.) Densidade de suas formasDensidade de suas formas Diagnóstico exigido (inquérito)Diagnóstico exigido (inquérito)
Assim para se investigar uma parasitose muitas vezes é Assim para se investigar uma parasitose muitas vezes é
necessário a utilização de mais de um métodonecessário a utilização de mais de um método
DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS
4040
Diagnóstico laboratorial
INDIRETO: reações antígeno/anticorpo
( FRC, PCR, Elisa)
DIRETO: visualizar o causador da patologia
MACROSCÓPICO e MICROSCÓPICO
Evidencia vermes Ex. direto, Prep. salinas,
Características físicas Coloração, Temperatura.
DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS
4141
protozoários intestinais
DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS
Exame de fezes a fresco trofozoítas
Esfregaços corados: Hematoxilina férrica Ziehl Nelseen mod.
Amostras formadas técnicas de concentração Exame de fezes coradas pelo lugol oocistos, cistos,
ovos, larvas
Amostras mucosas, liquefeitas ou pastosas
4242
Métodos utilizados:
♦Métodos de concentração ou Métodos de enriquecimento: *ovos ou larvas dos helmintos, cistos e trofozoítas de
protozoários
♦ Método de sedimentação: espontânea, centrifugação *utiliza líquidos de baixa densidade
♦Método de suspensão: espontânea, centrifugação*utiliza líquidos de alta densidade
♦Método de indução: ação da gravidade *ação da temperatura, tropismos dos parasitas
DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS
4343
EXAME PARASITOLÓGICO DE FEZES
EXAME DIRETOTÉCNICAS DE
CONCENTRAÇÃO
POR SEDIMENTAÇÃO
POR FLUTUAÇÃO
ESPONTÂNEALutz 1919
Hoffmann,Pons e Janer 1934
CENTRIFUGAÇÃOESPONTÂNEA
Willis 1921
CENTRÍFUGAÇÃOFaust et al 1939(Protozoários)
MATERIAL CONSERVADO
Ritchie 1948MIFIC(Blagg et al. 1955
MATERIAL COLETADO A FRESCO Baermann Morais 1948
Rugai, Matos e Brizola 1954
TÉCNICAS ESPECIAISGraham 1941
Harada-Mori 1955Kato-katz et al. (1972)
4444
MÉTODOS PARASITOLÓGICOS
MÉTODO DE FAUST et al.
PESQUISA DE SANGUE OCULTO
PESQUISA DE LEUCOCITOS NAS FEZES
MÉTODO DE TAMIZAÇÃO, E CLARIFICAÇÃO DE PROGLOTES
MÉTODO DE HOFFMAN, POSNS E JANER
MÉTODO DE BLAGG et al..
MÉTODO DE GRAHAM OU SWAB ANAL
MÉTODO DE WILLIS
4545
MÉTODOS PARASITOLÓGICOS
MÉTODO DE TELEMAN RIVAS
MÉTODO DE BAERMANN
MÉTODO DE RUGAI, MATOS E BRIZOLA
MÉTODO DE KATO-KATZ
MÉTODO DE VERCAMEN GRANDJEAN
4646
1- EXAME À FRESCO
Método indicado para material fecal emitido recentemente (menos de 30 minutos), de consistência líquida ou pastosa, onde se suspeita a presença de trofozoítas de protozoários.
Em uma lâmina coloca-se uma gota de solução salina e uma do material fecal, cobre-se com lamínula e observa-se ao microscópico na objetiva de 10x, confirmando na de 40x.
2- MÉTODO DIRETO
Empregado em fezes de consistência variada, recentemente emitidas ou não, onde a infestação parasitária é reconhecidamente intensa, também em inquéritos epidemiológicos.
4747
3-COLORAÇÃO PERMANENTE DE ESFREGAÇOS
Produz contraste de coloração entre os artefatos do fundo da preparação e os parasitas presentes. Utilizado no diagnosticar protozoários intestinais.
Observar através da objetiva de imersão (100x) que permite ao exame o reconhecimento de detalhes morfológicos do organismo.
A hematoxilina férrica, tionina, tricrômicoColoração por fluorocromos - Auramina,
RodaminaColoração por Ziehl-Neelsen e derivados, etc.
.
4848
5 - MÉTODO DE RITCHIE - 1948(sedimentação por centrifugação)
Emprega o formol e o éter com finalidade de fixar e concentrar as estruturas parasitárias e separá-las dos detritos e gorduras fecais. Indicado na pesquisa de protozoários e/ou helmintos nas fezes.
6 - MÉTODO DE BLAGG et al. ( MIFC) - 1955(sedimentação por centrifugação)
Emprega-se em amostras conservadas (MIF) através de centrifugação.
Mais de uma amostra conservada.Coprotest (sistema comercial) éter ou acetato de
etila.
4949
-Métodos qualitativos
4- MÉTODO HOFFMAN, PONS & JANER – 1934(sedimentação espontânea)
Fundamenta-se na sedimentação espontânea do material fecal diluído em água sob a ação da gravidade.
Visualiza-se: partículas, cistos, ovos e larvas de parasitos no fundo do cálice de sedimentação.
5050
7- MÉTODO DE FAUST et al. 1939 (flutuação por centrifugação)
Fundamenta-se na flutuação das formas parasitárias em solução de sulfato de zinco a 33%. É indicado na pesquisa de cistos de protozoários (ovos leves de helmintos)Imprópria para espécimes fecais que contenham grande quantidade de gorduras.
8- MÉTODO DE WILLIS - 1921 (flutuação espontânea)Baseia-se na capacidade de flutuação dos ovos de ancilostomídeos em solução saturada de cloreto de sódio (dens. 1.130). Após 10 min corre a distorção dos ovos na solução.
5151
11- MÉTODO DE GRAHAM ou SWAB ANAL OU FITA ADESIVA- 1941 (método direto)
Fundamenta-se na utilização da fita na apreensão de estágios evolutivos de parasitos na região anal ou perianal. Pode-se detectar o E. vermicularis, eventualmente ovos de Taenia sp.
12- MÉTODO DE TAMISAÇÃO 1957 -1982(método direto)
Fundamenta-se na peneiração do bolo fecal total para pesquisa de proglotes e de escólex.
5252
9- MÉTODO DE BAERMANN-MORAES 1948 (sedimentação por centrifugação)
Esse procedimento fundamenta-se no termo hidrotropismo positivo das larvas de nematóides em água aquecida a 40º a 42ºC, por 90 min. que tendem a sedimentar. Pesquisa de larvas de nematóides intestinais como Strongyloides stercoralis e de Ancilostomídeos.
Obs. As amostras líquidas submetidas ao método de Baermann-Moraes deverão ser misturadas com pedaços de lenço de papel ou de papel higiênico.
Fezes armazenadas sob refrigeração devem ser evitadas.
10- MÉTODO DE RUGAI, MATOS E BRIZOLA- 1954Simplificação da técnica de Baermann-Moraes.
5353
11- MÉTODO DE GRAHAM ou SWAB ANAL OU FITA ADESIVA- 1941 (método direto)
Fundamenta-se na utilização da fita na apreensão de estágios evolutivos de parasitos na região anal ou perianal. Pode-se detectar o E. vermicularis, eventualmente ovos de Taenia sp.
12- MÉTODO DE TAMISAÇÃO 1957 -1982 (método direto)
Fundamenta-se na peneiração do bolo fecal total para pesquisa de proglotes e de escólex.
5454
-MÉTODO QUANTITATIVO
12- MÉTODO DE KATO-KATZ (1954-1972)(método direto)
Baseia-se na contagem de ovos de helmintos em lâmina e contato com substância conservadora (verde de malaquita). Indicado para avaliação da carga parasitária no diagnóstico e controle de cura após o tratamento. Empregado com muita freqüência para detectar ovos de Schistosoma mansoni.
Preconizado pela OMS para avaliação das helmintíases transmitidas pelo solo. (WHO 1998).
5555
13- GOTA ESPESSA CAMADA DELGADA
Indicado para o estudo e diagnóstico das hemoparasitoses. São preparações sangüíneas que usam quantidades relativamente grandes de sangue em pequena área, para oferecer melhores resultados ao exame microscópico.
5656
Outros Métodos utilizados no diagnóstico dos parasitos
16- MÉTODO DE HARADA-MORI (Cultura de Fezes para Larvas)
Cultura para larvas de helmintos em papel-filtro em tubo de ensaio contendo água destilada.
17-TÉCNICA DE KNOTT (Técnica de concentração)Pesquisa de filárias na corrente circulatória
18- MÉTODO DE VERCAMEN GRANDJEANPesquisa de ovos de Schistosoma em fezes diluídas