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CARRERA DE ESPECIALIZACION EN CARRERA DE ESPECIALIZACION EN BIOTECNOLOGIA INDUSTRIAL BIOTECNOLOGIA INDUSTRIAL FCEyN FCEyN-INTI INTI Materia de Articulación CEBI_E1a Técnicas de Análisis en Biotecnología – Moléculas Pequeñas Docente a cargo: Marianela SANCHEZ e-mail: [email protected] CEBI_E1a M. Sánchez-CEBI_E1a 2 Moléculas pequeñas: Compuestos orgánicos de bajo peso molecular (<800 Da, no poliméricos) Variedad de funciones biológica: – Comunicador celular, – Drogas – Pesticidas Pueden ser naturales (metabolitos secundarios) o artificiales (sintéticos) M. Sánchez-CEBI_E1a 3 Muestreo y análisis de las materias primas Análisis de productos intermedios Monitorización de la calidad de los productos Monitorización de la calidad de los efluentes M. Sánchez-CEBI_E1a 4 Técnicas cromatográficas: – HPLC – CG Espectroscopía de RMN Espectrometría de Masas M. Sánchez-CEBI_E1a 5 Cromatografía: Técnica que permite separar los diferentes componentes de una mezcla compleja. La separación se logra por diferencias en la movilidad relativa de los solutos (interacciones físicas y químicas entre los componentes). M. Sánchez-CEBI_E1a 6 Cromatografía: – Fase estacionaria – Fase móvil – Soluto o muestra

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CARRERA DE ESPECIALIZACION EN CARRERA DE ESPECIALIZACION EN BIOTECNOLOGIA INDUSTRIALBIOTECNOLOGIA INDUSTRIAL

FCEyNFCEyN--INTIINTI

Materia de Articulación CEBI_E1a

Técnicas de Análisis en Biotecnología –Moléculas Pequeñas

Docente a cargo: Marianela SANCHEZe-mail: [email protected]

CEBI_E1a

M. Sánchez-CEBI_E1a 2

Moléculas pequeñas:

• Compuestos orgánicos de bajo peso molecular (<800 Da, no poliméricos)

• Variedad de funciones biológica:– Comunicador celular,

– Drogas

– Pesticidas

• Pueden ser naturales (metabolitos secundarios) o artificiales (sintéticos)

M. Sánchez-CEBI_E1a 3

Muestreo y análisis de las materias

primas

Análisis de productos

intermedios

Monitorización de la calidad de los

productos

Monitorización de la calidad de los

efluentes

M. Sánchez-CEBI_E1a 4

• Técnicas cromatográficas:– HPLC

– CG

• Espectroscopía de RMN• Espectrometría de Masas

M. Sánchez-CEBI_E1a 5

Cromatografía:

• Técnica que permite separar los diferentes componentes de una mezcla compleja.

• La separación se logra por diferencias en la movilidad relativa de los solutos (interacciones físicas y químicas entre los componentes).

M. Sánchez-CEBI_E1a 6

Cromatografía:

– Fase estacionaria

– Fase móvil

– Soluto o muestra

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Cromatografía:

Se pueden clasificar:

• De acuerdo al soporte• Al tipo de equilibrio que se establece

en la separación• Al estado de agregación de la fase

móvil

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Cromatografía:

• Constante de distribución(Kc)= relaciona la concentración de un soluto entre la fase móvil y la estacionaria.

Kc = CsCm

Concentración del analito en fase estacionaria

Concentración del analito en fase móvil

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Durante la migración de la muestra a través de la FE se produce la separación de los componentes.

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k= Tr – TmTm

IMPORTANTE: k <<<<< a 1 soluto muy poco retenidok entre 1 y 5 valor idealk 20 o mayor cromatografías muy largas

Factor de retención (k) = permite comparar la velocidad de migración de los diferentes solutos. Se puede determinar experimentalmente.

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Ensanchamiento de banda: dispersión

Caminos múltiples•Empaquetamiento•Rango de tamaño de partícula•Diámetro de partícula

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Dispersión Ensanchamiento a flujos bajos

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DispersiónTransferencia de masa

Difusión del analito dentro y fuera de la FM estancada en el poro de la FE.

Diferentes profundidades de penetración causan diferentes ensanchamientos de banda

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Ecuación de van Deemter:

Multiplicidad de caminos

Difusión longitudinal Transferencia de masa

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Caudal: Volúmen transportado por unidad de tiempo.

Q = π r2 µ

Área de sección de la columna

Velocidad lineal media de flujo

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Cromatografía líquida

• Principales mecanismos de interacción FM-FE:

– Adsorción superficial– Partición – Intercambio iónico– Exclusión molecular

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Cromatografía:

• De adsorción: fenómeno superficial, partículas de soluto adsorbidas en la fase estacionaria

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Cromatografía de Adsorción

• FE: Sólidos muy porosos con capacidad adsorbente– Sílica

– Alúmina

• FM:– Solventes orgánicos

Capacidad de cargaPresentaciones

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• Solvente y soluto compiten por los sitios de adsorción en la fase estacionaria!

Cromatografía de Adsorción

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Cromatografía de Adsorción

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Cromatografía de Adsorción• La fuerza eluyente ε0 es la energía de adsorción del disolvente por

unidad de superficie (sílica).

Solvente Fuerza de EluciónFluorcalcanos -0.20N-pentano 0.00N-hexano 0.011-clorubutano 0.20Benceno 0.20Xileno 0.24Cloroformo 0.26Tolueno 0.28Cloruro de metileno 0.32Acetato de etilo 0.38Tetrahidrofurano 0.44Acetonitrilo 0.50Metanol 0.70 M. Sánchez-CEBI_E1a 22

• Tipos de rellenos:Esférico Irregular

Cromatografía de Adsorción

M. Sánchez-CEBI_E1a 23

Ejemplo

M. Sánchez-CEBI_E1a 24

Separación de cis y trans pirazolina. Columna 100 x 0.3 cm, sílice pelicular. Fase móvil: 50% cloruro de metileno / isooctano. Caudal 0.25 mL/min. Detector UV 254 nm.

La cromatografía de adsorción es mas adecuada para compuestos no polares (solubilidad limitada en solventes acuosos) con masas moleculares < 5000.

Que la diferencia de otros métodos??capacidad de diferenciar isómeros!

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Q = π r2 µµ=0.06

Cromatografía de reparto

Los componentes de la mezcla se separan según su distribución entre dos líquidos inmiscibles.

FE

OJO!! soporte ≠ FE!!

Soporte:Sílica finamente particulada (<10 μ)Superficie completamente hidrolizada

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Fase Unida (o Ligada)Fase Unida (o Ligada)

M. Sánchez-CEBI_E1a 28

Cromatografía en fase reversa

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Cromatografía en fase reversa

THF

i-PROPANOLACETONAETANOL

ACETONITRILOMETANOL

AGUA

LONGITUD DE ONDA MINIMA UV

212 nm

205 nm330 nm210 nm190 nm205 nm190 nm

INDICE DE REFRACCION

1.405

1.3841.3561.3591.3411.4571.333

FUERZA DE SOLVENTE

4.4

4.23.43.63.13.00.0

M. Sánchez-CEBI_E1a30

Fase Ligada

Fase reversa

Fase normal

C-18 Mas utilizada en RP-HPLC

C-8 menor retención que C18

C-3, C-4 Proteínas y péptidos

CN compuestos de polaridad intermedia

NH2 hidratos de Carbono

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Ejemplo

Efecto de la longitud de la cadena en la eficiencia de las columnas de siloxano en fase inversa empaquetadas con partículas de 5 µm. Fase móvil: 50/50 metanol/agua. Caudal 1 mL/min

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A: H 2OB: MeOH

↑ % A

M. Sánchez-CEBI_E1a33

A: H 2OB: CH3CN

↑ tiempo=solvente (=$)↓ resolución de picos mas retenidosSolución: GRADIENTE!

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Aplicaciones

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Analitos ionizables(débiles)

pKa=4.6

Muy polar = menos retenidaMenos polar = más retenida

Variar pH de FM

Supresión de iones

Par iónico(IPC)

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Supresión de iones

↑ proporción de ácido protonado (neutro)

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Analitos ionizables

Para trabajar con las especies cargadas:

Cromatografía de:•Intercambio Iónico (IEC)•Par Iónico (IPC)

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Cromatografía de Intercambio Iónico

• Sirve para separar compuestos iónicos (aniones y/o cationes)

• Soporte: poliestireno o sílica

• Solvente: buffer (control de pH y fuerza iónica)

• Mecanismo de separación: intercambio reversible de iones entre el analito y la FE. Intervienen fuerzas electrostáticas.

Intercambiador de aniones

Intercambiador de cationes

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Cromatografía de Intercambio Iónico (IEC)

Intercambiadores fuertes

Intercambiadores débiles

M. Sánchez-CEBI_E1a40

Cromatografía de Intercambio Iónico: Aplicaciones

• Cationes y anionesinorgánicos

• Acidos orgánicos, aminas, carbohidratos, proteínas, etc.

OJO: NO SON MOLÉCULAS PEQUEÑAS!!

M. Sánchez-CEBI_E1a 41 M. Sánchez-CEBI_E1a 42

Cromatografía de Par Iónico

• Utiliza una columna HPLC de fase reversa.• Se añade a la FM un reactivo que se aloja en la FE convirtiéndola

en un intercambiador iónico.• Los iones del analito se pueden unir a la fase estacionaria por

atracción electrostática con los iones del surfactante.• Mecanismo de retención: mezcla de interacciones con fase reversa

y de intercambio iónico.

SO3

SO3 N

R

R

R

H+

Na+

Fase unida Reactivo de par iónico

MuestraN+

N+

O C RO

H2PO4

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Longitud de cadena del reactivo de par iónico

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Cromatografía de exclusión molecular

• FE: geles porosos• Fundamento de separación: separación

en base a forma y tamaño del analito

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Cromatografía de exclusión molecular

Cromatografía de exclusión molecular

Muy útil con macromoléculas,Aacs, péptidos,azúcares.

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Instrumentación

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Suministro de solventes:

Funciones básicas:• Proveer flujo constante y preciso• Proveer composiciones precisas de fase

móvil• Proveer la fuerza necesaria para empujar

la FM a través del empaquetamiento compacto de la fase de la columna

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Suministro de solventes:

• Agua, soluciones buffer acuosas y solventes orgánicos tales como metanol, acetonitrilo o diferentes mezclas. Grado HPLC.

• FM sin elementos particulados. Evitar obstrucciones en el sistema (conexiones muy estrechas, pistones de zafiro y columna muy empaquetada)

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Bomba pistón

• Movimiento del pistón atrás-adelante

• Sello flexible alrededor de la periferia del pistón (impide la fuga de la FM)

• Válvulas de retención (flujo unidireccional de disolvente)

• Variación del flujo

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Pistones en paralelo

• Mientras un cilindro se está llenando, el otro entrega FM.

Flujo Combinado

Pistón A Pistón B

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Pistones en serie

• Mientras se llena el pistón grande llena el pequeño entrega FM. Cuando se llena el pequeño, el proporciona FM (para llenar tanto el pistón pequeño y proporcionar un flujo neto hacia la columna)

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Amortiguador de pulsos

• Tubo en forma de “T”

• Fuelle flexible o gas compresible (absorbe energía de la pulsación)

• Cuando la bomba se esta llenando, esta energía se libera

• Reduce el ruido de la bomba

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Inyector Manual

• Válvula de 6 vías, con loop de volumen conocido y una palanca con dos posiciones: llenado e inyección

• Llenado: la FM pasa a la columna y la muestra se introduce en el loop

• Inyección: la FM impulsa la muestra desde el loop hasta la columna

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Inyección manual vs. automática

> precisión

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Columnas

• Columnas analíticas: Ø interno: 4.6 mm, < 0.1 mg muestra

• Columnas semipreparativas: Ø interno: 1 a 3 cm, de 1 a 200 mg muestra

• Columnas preparativas: Ø interno: varios cm. Solo para uso industrial. Requieren equipo especial.

Cuidados físicos con la columna:

• No golpear la columna

• No dejar secar la columna

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Detectores

• Basados en una PROPIEDAD física o físico-química DEL SOLUTO (no la presenta la FM). Bastante selectivos y muy sensibles.– UV– Fluorescencia– Electroquímicos

• Basados en una PROPIEDAD DE LA DISOLUCIÓN comparan el cambio global de alguna propiedad física de la FM con y sin soluto eluido. Responden a un conjunto amplio de solutos. Poco sensibles.– Índice de refracción– Conductividad

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Propiedades del detector• Sensibilidad adecuada• Respuesta lineal amplia• Respuesta rápida y reproducible• Manejo sencillo

• Límite de detección: relación señal/ruido. No solo depende del detector!

• Límite de cuantificación: límite de concentración más bajo para mediciones cuantitativamente precisas

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UV-VisibleLey de Beer: A = ɛ l c

Coeficiente de extinción

concentraciónlong. de la celda

ɛ sustancia

longitud de onda

Se analiza una longitud de onda por cada mediciónSolvente!!

M. Sánchez-CEBI_E1a 60

Detector UV por arreglo de diodos

Va realizando barridos completos del espectro UV-Vis

Permite reprocesar el mismo cromatogramadetectando a diferentes λλλλ

Se puede obtener el espectro UV-Vis de cada pico del cromatograma y compararlo

con una base de datos

Rtλλλλ

Abs

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Detector de fluorescencia

Muy sensibles y selectivos.Dos λ de trabajo:

-excitación-emisión

Para analitos fluorescentes (derivados)

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Detectores de índice de refracción

• Miden variaciones en el RI del analito con respecto al de la FM

• Sólo se pueden usar si la elución es isocrática

• Son universales, pero tienen baja sensibilidad

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Detectores de conductividad

•Aplicaciones: Iones, ácidos, bases y sales • Baja sensibilidad• Sensibles a impurezas de la fase móvil

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Detectores electroquímicos• Se basan en la reacción redox entre el analito y

un electrodo

• El nivel de reacción es proporcional a la concentración del analito.

• Se mide y se compara con un electrodo de referencia.

M. Sánchez-CEBI_E1a 65

Detectores por espectrometría de masas

• Introducción de la FM en cámara de vacío

• Vaporización previa de solvente

• Termovaporizador-ionizador

• Aplicable a compuestos termoestables y no volátiles

• Espectros de impacto electrónico

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Análisis cualitativo

• Permite identificar los compuestos individuales en la muestra– El parámetro más común es su tiempo de

retención

– Dependiendo del detector utilizado la identificación se puede basar en la estructura química, molecular, peso o algún otro parámetro molecular.

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Análisis cuantitativo

• Detectores dan una respuesta proporcional a la cantidad de sustancia (m):

• Respuesta = a x m

a: característico para cada sustancia

Como el componente atraviesa el detector en un período de tiempo

Área

f: factor de respuesta. Cantidad de sustancia por unidad de área

M. Sánchez-CEBI_E1a 68

Método del estándar externo• Se preparan soluciones del estándar de

concentración conocida.• Se grafica área vs. concentración

Debe verificarse el rango de linealidad de respuesta!!

M. Sánchez-CEBI_E1a 69

Bibliografía

• The LC Handbook. Guide to LC columns andmethod development. Agilent. 2011.

Publication number 5990-7595EN.www.chem.agilent.com\Library\primers\public\LC-

Handbook-Complete-2.pdf• Agilent ZORBAX column guide selection.• Trends in universal detection in high performance

liquid chromatography. Joshi, P. B.; Bhoir, S. I.; Bhagwat, A. M. www.sepscience.com