Dados da monitorização do fitoplâncton na Lagoa de Albufeira...CRIAÇÃO E IMPLEMENTAÇÃO DE UM SISTEMA DE MONITORIZAÇÃO NO LITORAL ABRANGIDO PELA ÁREA DE JURISDIÇÃO DA ADMINISTRAÇÃO

CRIAÇÃO E IMPLEMENTAÇÃO DE UM SISTEMA DE

MONITORIZAÇÃO NO LITORAL ABRANGIDO PELA

ÁREA DE JURISDIÇÃO DA ADMINISTRAÇÃO DA

REGIÃO HIDROGRÁFICA DO TEJO

Estudo da Lagoa de Albufeira

Dados da monitorização do fitoplâncton na

Lagoa de Albufeira

Entregável 3.2.2.2.a

Junho 2013

CRIAÇÃO E IMPLEMENTAÇÃO DE UM SISTEMA DE

MONITORIZAÇÃO NO LITORAL ABRANGIDO PELA

ÁREA DE JURISDIÇÃO DA ADMINISTRAÇÃO DA

REGIÃO HIDROGRÁFICA DO TEJO

Este relatório corresponde ao Entregável 3.2.2.2.a do projeto “Consultoria para a Criação e

Implementação de um Sistema de Monitorização do Litoral abrangido pela área de Jurisdição da

ARH do Tejo”, realizado pela Faculdade de Ciências da Universidade de Lisboa (FCUL), para a

Agência Portuguesa do Ambiente, I.P. / Administração da Região Hidrográfica do Tejo (APA, I.P.

/ARH do Tejo).

AUTORES

Vanda Brotas (1), (2)

Carolina Beltran (2)

Ana Margarida Dias (2)

(1) Departamento de Biologia Vegetal (FCUL)

(2) Centro de Oceanografia da Universidade de Lisboa

CRIAÇÃO E IMPLEMENTAÇÃO DE UM SISTEMA DE MONITORIZAÇÃO NO LITORAL ABRANGIDO PELA ÁREA DE JURISDIÇÃO DA ADMINISTRAÇÃO DA REGIÃO HIDROGRÁFICA DO TEJO

4 Entregável 3.2.2.2.a Junho de 2013

REGISTO DE ALTERAÇÕES

Nº Ordem Data Designação

1 Junho de 2011 Versão inicial

2 Dezembro de 2011 Atualização de conteúdos

3 Dezembro de 2012 Atualização de conteúdos

4 Junho de 2013 Revisão geral de formatos e atualização de conteúdos


Entregável 3.2.2.2.a 5 Junho de 2013

Componentes do estudo da Lagoa de Albufeira

3 Estudo da Lagoa de Albufeira

3.1 Estudo da dinâmica da barra de maré e das suas relações com a agitação marítima incidente e as marés

3.1.1 Levantamentos topo-hidrográficos da barreira e sistema lagunar em situação de barra fechada

Entregável 3.1.1.a Batimetria de todo o sistema lagunar

3.1.2 Levantamentos topo-hidrográficos da área mais próxima do canal de maré após a abertura da barra

Entregável 3.1.2.a Topo-hidrografia da área próxima do canal

3.1.3 Cartografia das modificações morfológicas da secção da barra de maré

Entregável 3.1.3.a Cartas de diferenças entre levantamentos sucessivos

3.1.4 Avaliação das características e modificações geométricas da secção da barra ao longo da sua existência

Entregável 3.1.4.a Perfis topográficos da secção da barra da Lagoa de Albufeira

3.1.5 Estudo das relações entre morfologia da barra de maré e magnitude do prisma de maré lagunar, e

3.1.6 Caracterização da evolução morfodinâmica da embocadura através de modelação

Entregável 3.1.5.a e 3.16.a Morfodinâmica da embocadura da Lagoa de Albufeira

3.1.7 Caracterização da hidrodinâmica e das trocas entre a laguna e o mar

Entregável 3.1.7.a Caracterização das trocas entre a Lagoa de Albufeira e o mar com o modelo ELCIRC e cálculo dos tempos de residência para várias configurações da embocadura

3.1.8 Medição das correntes de maré na barra

Entregável 3.1.8.a Séries temporais de dados de velocidade de corrente integrada na coluna de água, séries temporais de valores de velocidade de escoamento superficial

3.1.9 Integração dos dados: modelo do comportamento morfodinâmico da barra de maré da Lagoa de Albufeira e estabelecimento das condições favoráveis à abertura da barra de maré

Entregável 3.1.9.a Síntese do comportamento morfodinâmico da barra de maré da Lagoa de Albufeira, incluindo relações empíricas específicas deste sistema e orientações conducentes à maximização da eficácia das trocas de água entre a laguna e o oceano em cada abertura artificial

3.2 Estudo e caracterização da qualidade da água no espaço lagunar baseada em parâmetros físico-químicos e biológicos (macroinvertebrados bentónicos, fitoplâncton, peixes, macrófitas)

3.2.1 Monitorização dos parâmetros físico-químicos in situ e análises laboratoriais

3.2.1.1 Monitorização dos parâmetros físico-químicos in situ

Entregável 3.2.1.1.a Parâmetros físico-químicos medidos in situ na Lagoa de Albufeira

3.2.1.2 Análises laboratoriais

Entregável 3.2.1.2.a Análises laboratoriais da água da Lagoa de Albufeira

3.2.1.3 Monitorização da qualidade da água das ribeiras

Entregável 3.2.1.3.a Qualidade da água das ribeiras afluentes à Lagoa de Albufeira

3.2.2 Monitorização dos parâmetros biológicos

3.2.2.1 Biomonitorização das ribeiras (qualidade da água e grau de stress)

Entregável 3.2.2.1.a Dados de poluentes e parâmetros fisiológicos das ribeiras afluentes à Lagoa de Albufeira

3.2.2.2 Monitorização do fitoplâncton

Entregável 3.2.2.2.a Dados da monitorização do fitoplâncton na Lagoa de Albufeira

3.2.2.3 Monitorização do estado da flora e da vegetação na Lagoa de Albufeira e zona envolvente

Entregável 3.2.2.3 Relatório com o estado da flora e da vegetação na Lagoa de Albufeira e zona envolvente

Entregável 3.2.2.3.a Lista das unidades de vegetação representativas da Lagoa de Albufeira e zona envolvente

Entregável 3.2.2.3.b Lista com a composição florística de cada unidade de vegetação

Entregável 3.2.2.3.c Lista de espécies da Diretiva Habitat ou por outros motivos relevantes para a conservação



Entregável 3.2.2.3.d Lista anotada das ameaças identificadas para a vegetação da Lagoa de Albufeira e zona envolvente

Entregável 3.2.2.3.e Índices QBR

Entregável 3.2.2.3.f Dados e gráficos de síntese de biomassa e parâmetros fisiológicos das macrófitas

3.2.2.4 Caracterização da comunidade bentónica

Entregável 3.2.2.4.a Dados de caracterização da comunidade bentónica

3.2.2.5 Caracterização da comunidade de peixes

Entregável 3.2.2.5.a Dados de caracterização da comunidade de peixes

3.2.3 Integração de toda a informação obtida

Entregável 3.2.3.a Síntese das características físico-químicas do hidrossoma lagunar e das características biológicas do sistema

3.3 Estudo da capacidade de suporte do sistema lagunar face à atividade de miticultura ali instalada

3.3.1 Monitorização da qualidade dos sedimentos do fundo lagunar

Entregável 3.3.1.a Contrastes texturais e composicionais decorrentes da atividade da miticultura e cartografia dos parâmetros analisados

3.3.2 Monitorização do fitoplâncton

Entregável 3.3.2.a Monitorização do fitoplâncton

3.3.3 Monitorização dos invertebrados bentónicos

Entregável 3.3.3.a Avaliação da influência das plataformas de mexilhão na comunidade bentónica

3.3.4 Estudo da componente parasitológica

Entregável 3.3.4.a Relação entre a comunidade de macroparasitas e indicadores parasitológicos, e sua influência no sistema lagunar

3.3.5 Integração da monitorização dos parâmetros físico-químicos do corpo aquoso

Entregável 3.3.5.a Monitorização dos parâmetros físico-químicos do corpo aquoso

3.3.6 Definição da capacidade de carga da Lagoa de Albufeira para a miticultura

Entregável 3.3.6.a Definição da capacidade de carga da Lagoa de Albufeira para a miticultura

3.4 Definição das zonas de dragagem das áreas assoreadas

3.4.1 Comparação de levantamentos topo-hidrográficos

Entregável 3.4.1.a Carta de diferenças topo-hidrográficas: zonas assoreadas/erodidas

3.4.2 Definição da volumetria e da área a dragar

Entregável 3.4.2.a Relatório e mapa de perímetro de manchas de dragagem

3.4.3 Realização de sondagens nas áreas a dragar

Entregável 3.4.3.a Localização e logs das sondagens, boletins dos resultados analíticos e interpretação quanto ao grau de contaminação dos sedimentos

3.4.4 Caracterização e comparação da hidrodinâmica da lagoa em diferentes configurações

Entregável 3.4.4.a Contribuição para a definição das dragagens da embocadura da Lagoa de Albufeira

3.4.5 Estudo de incidências ambientais nos fatores bióticos e abióticos

Entregável 3.4.5.a Estudo de incidências ambientais nos fatores bióticos e abióticos; matrizes de impacto

3.5 Definição dos locais de deposição dos dragados

3.5.1 Avaliação de alternativas para a colocação de dragados de natureza vasosa

Entregável 3.5.1.a Avaliação de alternativas para a colocação de dragados de natureza vasosa; mapas de deposição dos dragados

3.5.2 Avaliação de alternativas para a colocação dos dragados de natureza arenosa

Entregável 3.5.2.a Avaliação de alternativas para a colocação dos dragados de natureza arenosa; mapas de deposição dos dragados



Índice

1 INTRODUÇÃO ....................................................................................................................................... 9

2 METODOLOGIA .................................................................................................................................. 10

2.1 Matéria em suspensão .................................................................................................................. 10

2.2 Biomassa fitoplânctónica – Clorofila a .......................................................................................... 10

2.2.1 Caracterização da comunidade fitoplanctónica ........................................................................ 11

2.3 Análise e quantificação dos pigmentos fotossintéticos ................................................................ 11

2.4 Análise microscópica das espécies presentes ............................................................................... 12

3 RESULTADOS ...................................................................................................................................... 13

3.1 Matéria em suspensão .................................................................................................................. 13

3.2 Biomassa fitoplanctónica – Clorofila a .......................................................................................... 15

3.3 Caracterização da comunidade fitoplanctónica – pigmentos fotossintéticos ............................... 17

3.4 Análise microscópica das espécies presentes ............................................................................... 20

4 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS .......................................................................................................... 22



1 Introdução

A Lagoa de Albufeira está situada na orla ocidental da Península de Setúbal, no Concelho de

Sesimbra, cerca de 20km a sul de Lisboa. Ocupa atualmente em média uma superfície de

aproximadamente 1.3km2 e apresenta uma geometria alongada com o eixo maior oblíquo

relativamente à linha de costa, orientado SW-NE; tem um comprimento máximo de 3.5km e

uma largura máxima de 625m.

A Lagoa de Albufeira está separada do mar por uma barreira arenosa contínua, ancorada em

terra em ambos os extremos, por vezes interrompida por uma barra de maré única, aberta

artificialmente, em regra, com periodicidade anual.

A laguna é formada por dois corpos contíguos - a Lagoa Pequena (assim designada na

toponímia local) e o corpo lagunar principal a Lagoa Grande - ambos ligados por um canal

estreito, sinuoso e pouco profundo. A Lagoa Grande é constituída por dois corpos elípticos,

separados por duas cúspides arenosas aproximadamente simétricas, localizadas em margens

opostas, sendo a da margem direita dupla.

O fitoplâncton é constituído por microalgas de diversos grupos taxonómicos, que constituem a

base da cadeia trófica dos sistemas aquáticos. As comunidades do fitoplâncton respondem

muito rapidamente a mudanças no ambiente, em termos de acréscimo da sua biomassa ou

alteração das concentrações relativas das espécies presentes, nomeadamente a modificações

na concentração ou equilíbrio dos nutrientes. Por outro lado, algumas espécies

fitoplanctónicas são tóxicas. Deste modo a monitorização das comunidades de fitoplâncton é

essencial para estabelecer índices de qualidade ambiental, e o controlo da presença e

abundância de espécies tóxicas é indispensável em ecossistemas onde se pratica a cultura de

bivalves.

A monitorização do fitoplâncton foi efetuada nas estações de amostragem A, B, C, D, utilizadas

noutros componentes do estudo (Figura 1). Em cada uma destas estações, foi colhida água da

superfície e do fundo, sendo a água da superfície apanhada com um balde e a água do fundo

colhida com garrafa Van Dorn. Adicionalmente, foi colhida água da superfície em três pontos,

localizados perto da margem e perto da barra M1, M2 e JA. Este relatório apresenta os

resultados obtidos durante todas as campanhas de amostragem realizadas durante o decurso

do projeto (Tabela 1).



Figura 1. Estações de colheita de fitoplâncton da Lagoa de Albufeira.

Tabela 1. Datas das campanhas de monitorização do fitoplâncton. * Indica a barra aberta.

Data da campanha

2011

Data da campanha

2012

Data da campanha

2013

11 de abril de 2011 31 de outubro de 2012 26 de março de 2013

28 de junho de 2011*

22 de setembro de 2011

2 Metodologia

2.1 Matéria em suspensão

Para a determinação da matéria particulada em suspensão (SPM), foram recolhidas amostras

de água em triplicado (volume entre 0.5 e 1 L), filtradas através de filtros de fibra de vidro

GF/C 47 mm de diâmetro e 1.2 μm de abertura de poro (Whatman), que foram previamente

pesados, sendo subsequentemente secos a 80º C durante 24 horas e posteriormente pesados

novamente.

2.2 Biomassa fitoplânctónica – Clorofila a

A biomassa fitoplânctónica presente na lagoa foi determinada através da concentração de

clorofila a por volume de água (i.e. μg Chl a L-1), de acordo com o protocolo de amostragem e

análise para o fitoplâncton (INAG, 2009). À chegada ao laboratório, as amostras de água foram

filtradas (volume entre 1 e 1.5 L) utilizando um filtro de fibra de vidro GF/F Whatman® (0.7 μm



de poro e 47 mm de diâmetro), imediatamente congelado a uma temperatura de -20º C para

posterior análise.

A extração da clorofila a foi feita em 6 mL de acetona a 90 %, sendo o filtro macerado

manualmente com uma vareta de vidro e submetido a ultra-sons durante 1 minuto, seguindo-

se um período de extração de 24 h a 4º C. Passado esse período, a amostra foi centrifugada a

4000 rpm, durante 15 minutos a 4º C. O sobrenadante foi depois analisado num

espectrofotómetro Shimadzu® UV 1603. Os valores da concentração de clorofila a e dos

feopigmentos foram obtidos antes e depois da acidificação com 0.5 M HCl (12 μl de HCl para 1

mL de extrato), respetivamente e seguindo o protocolo descrito por Lorenzen (1967). Com

este método, a clorofila a ativa é distinguida dos seus produtos de degradação, os

feopigmentos. A determinação destes últimos é aconselhável num ecossistema onde

geralmente se acumulam detritos vegetais, como é o caso de lagoas costeiras.

2.2.1 Caracterização da comunidade fitoplanctónica

A caracterização da comunidade fitoplanctónica foi efetuada através de duas metodologias

complementares, i) a identificação e quantificação de pigmentos fotossintéticos e ii) a análise

microscópica das espécies presentes. A primeira metodologia tem a vantagem de ser mais

rápida, independente do operador, e de quantificar os grupos de organismos que, por serem

de muito reduzidas dimensões, não são observados em microscopia.

2.3 Análise e quantificação dos pigmentos fotossintéticos

Uma vez que cada classe taxonómica tem um conjunto de pigmentos associado (Figura 2), a

determinação da composição taxonómica do fitoplâncton presente na Lagoa de Albufeira foi

efetuada através da análise dos pigmentos fotossintéticos na coluna de água por HPLC,

(Cromatografia Líquida de Alta Precisão) em todas as estações amostradas. Para tal, as

amostras de água foram filtradas assim que chegaram ao laboratório, utilizando-se um filtro de

fibra de vidro GF/F Whatman® (0.7 μm de poro e 47 mm de diâmetro), imediatamente

transferido para uma temperatura de -80º C para posterior análise em HPLC. O equipamento

utilizado consistiu num sistema Shimadzu®, equipado com bombas LC 10AVP, um detector de

absorbância “conjunto de díodos” modelo SPD M10AVP e um detector de fluorescência RF

10A×L; a coluna utilizada foi Supelcosil LC 18, de 25 cm de comprimento e diâmetro 4.6 mm,

com partículas de 5 μm de tamanho. A extração de pigmentos foi efetuada em metanol 95 %

(2 % acetato de amónio) durante 30 minutos a 20º C. Ao solvente de extração é adicionado um

standard interno para controlo de qualidade, trans-beta-apo-8’-carotenal, na concentração de

1 %. O gradiente dos solventes encontra-se de acordo com o método de Kraay et al. (1992)

adaptado por Brotas e Plante-Cuny (1996) com um fluxo de 0.6 mL min-1 e um volume de

injeção de 100 μl.



Figura 2. Correspondência dos diversos pigmentos identificados por HPLC com as classes de algas fitoplânctónicas que os contêm. As espécies representadas são apenas exemplos da classe à qual estão

anexas.

Como indicadores das diversas classes, utilizou-se a Peridinina para os Dinoflagelados, a

Fucoxantina para as Diatomáceas, a Clorofila b para as Clorófitas, a Aloxantina para as

Criptófitas e a Zeaxantina para as Cianobactérias. A abundância relativa de cada uma destas

classes é dada pela razão entre o respectivo pigmento diagnosticante e a soma do conjunto

dos cinco pigmentos. Note-se que a Clorofila b pode ser proveniente não só das Clorófitas mas

também de detritos vegetais. A interpretação dos resultados obtidos através desta

metodologia foi ponderada pela informação obtida pela identificação microscópica das

espécies presentes.

2.4 Análise microscópica das espécies presentes

Para estas amostras, a água foi colhida com o balde ou com a garrafa Van Dorn e colocada em

frasco de vidro de 250 mL, ao qual foi acrescentado lugol. Antes da observação, as amostras

são agitadas cuidadosamente cerca de 100 voltas cada frasco para uma razoável

homogeneização dos organismos depositados no fundo. De cada amostra retirou-se uma

subamostra de 5 mL para colunas de sedimentação de Hidro-Bios KIEL, cujo volume total é de

10 mL (acrescentou-se 5 ml de água destilada para perfazer o volume da coluna), tapou-se

com uma placa de vidro e colocou-se em repouso num plano direito durante 24h. Após o

período de sedimentação, removeu-se o sobrenadante evitando ressuspender ou alterar a

distribuição do material acumulado no fundo da câmara. Efetuou-se a análise da amostra e

enumeração dos fitoplanctontes com base no método de Utermöhl (1958). A análise foi

essencialmente dirigida a fitoplanctontes quantificáveis com base em microscopia de inversão,

incluindo principalmente diatomáceas, dinoflagelados e outros fitoflagelados

microplanctónicos. Contabilizaram-se separadamente as células com e sem conteúdo celular.

Para a observação ao microscópio, seleccionaram-se as amostras com a maior concentração

de clorofila a, ou seja, com maior biomassa.

Aloxantina

Crocoxantina

Clorofila c3

Clorofila c1 + c2

Diadinoxantina

Diatoxantina

Fucoxantina

Chlorofila b

Luteina

Neoxantina

Violoxantina

Zeaxantina

Criptófitas

Cianobactérias

Clorófitas

Prasinófitas

Clorófitas + Prasinófitas + Euglenófitas

Dinoflagelados + Criptófitas

+ Diatomáceas + Crisófitas

Diatomáceas + Crisófitas

Primnesiófitas + Crisófitas

Aloxantina

Crocoxantina

Clorofila c3

Clorofila c1 + c2

Diadinoxantina

Diatoxantina

Fucoxantina

Chlorofila b

Luteina

Neoxantina

Violoxantina

Zeaxantina

Criptófitas

Cianobactérias

Clorófitas

Prasinófitas

Clorófitas + Prasinófitas + Euglenófitas

Dinoflagelados + Criptófitas

+ Diatomáceas + Crisófitas

Diatomáceas + Crisófitas

Primnesiófitas + Crisófitas



O microscópio de inversão utilizado foi da marca Zeiss, modelo Axiovert 200, com objetivas

oculares de 10x. As células muito abundantes enumeraram-se em ½ câmara e as restantes

enumeraram-se na câmara inteira, com a objetiva de 20x que correspondeu a uma ampliação

final de 200x. As espécies mais pequenas (fitoflagelados) enumeraram-se em 51 campos com a

objetiva de 40x que correspondeu a uma ampliação final de 400x. Utilizou-se uma ocular

micrométrica, previamente calibrada, para efetuar algumas medições de modo a facilitar a

identificação das espécies. Quando a identificação ao nível específico não foi possível,

agruparam-se os indivíduos em grupos genéricos (ex. Dinoflagelado não identificado, Nitzshia

sp.). Utilizaram-se as seguintes obras para identificação do fitoplâncton: Sournia (1986), Ricard

(1987), Chrétiennot-Dinet (1990), Tomas (1997), Hoppenrath et al. (2009).

Na Tabela 2 estão descritas as estações e datas nas quais se recolheram as amostras e os

volumes observados na câmara de sedimentação. Estimaram-se os valores de abundância em

cél L-1.

Tabela 2. Lista de estações, datas de colheita e volumes observados na câmara de sedimentação.

Estações Volume (mL)

observado

A Sup Jun11 5

A Sup Out 12 5

C Sup Out12 5

D Sup Out12 5

M1 Sup Out12 5

A Sup Mar13 2.5

B Sup Mar13 5

B Fun Mar13 5

C Sup Mar13 5

C Fun Mar13 50

D Sup Mar13 5

M1 Sup Mar13 5

3 Resultados

3.1 Matéria em suspensão

A Figura 3 representa os valores de matéria particulada em suspensão (SPM, mg L-1) para a

cada uma das amostragens realizadas. Para cada amostragem, observam-se valores

semelhantes em todas as estações, com um aumento da concentração em profundidade.



O aumento considerável dos valores da amostragem de outubro 2012 atingindo cifras

próximas a 50 mg L-1, indicia maior ressuspensão dos sedimentos, que pode ser causada pelo

aumento da intensidade do vento em dias anteriores.

Figura 3. Matéria particulada em suspensão (mg L-1

) à superfície e fundo da coluna de água, nos pontos de amostragem para cada uma das colheitas. Barras de erro referem-se ao erro-padrão, para 3

replicados.

0

10

20

30

40

50

A B C D M1 M2

Abril 2011 Superficie

Fundo

0

10

20

30

40

50

A B C D M1 M2

Junho 2011

0

10

20

30

40

50

A B C D M1 M2

Setembro 2011

0

10

20

30

40

50

A B C D M1

Outubro 2012

0

10

20

30

40

50

A B C D M1

Março 2013

SPM

(m

g L-

1 )



3.2 Biomassa fitoplanctónica – Clorofila a

A Figura 4 representa a variação da concentração de clorofila a (µg L-1) nos pontos de

amostragem para cada uma das colheitas.

Os valores mais elevados foram observados em março 2013 e abril 2011, correspondendo ao

período de crescimento do fitoplâncton: a primavera. O valor máximo de clorofila, 23 µg L-1, foi

obtido na estação mais a montante (#A), em março 2013. Os valores mais baixos são

observados em junho 2011, quando a barra se encontrava aberta; esta observação é

consistente com a entrada de água do mar na lagoa, com concentrações inferiores de

biomassa fitoplanctónica.

Nas amostragens de abril 2011, em particular os valores de clorofila a registados, indicam que

a coluna de água se encontra muito estratificada, com valores consistentemente mais altos à

superfície relativamente ao fundo.

Nas amostragens de junho e setembro de 2011, os valores de clorofila a são maiores no fundo

que na superfície, indicando também a existência de estratificação na coluna de água.

Em todas as amostragens, com a exceção de setembro 2011, observa-se o mesmo perfil onde

os valores de clorofila decrescem da estação mais a montante (estação A) para a estação mais

a jusante (estação D). Este resultado é expectável e está relacionado com o facto de que a

principal entrada de nutrientes na lagoa se efetua a montante.

Na Figura 5 está representada a variação espacial da concentração de feopigmentos (µg L-1).

São destacáveis os elevados valores nas amostragens de abril 2011 e março 2013 chegando

respetivamente a 30 e 60 µg L-1, estas concentrações devem-se à acumulação de material

vegetal de origem terrestre procedentes das margens da lagoa.

Observa-se um perfil muito similar ao de clorofila onde as concentrações decrescem da

estação mais a montante (estação A) para a estação mais a jusante (estação D).



Figura 4. Variação espacial da concentração de Clorofila a (µg L-1

) à superfície e fundo da coluna de água, nos pontos de amostragem para cada uma das colheitas. Barras de erro referem-se ao erro-padrão, para

3 replicados. Note-se a diferença nas escalas em março de 2013.

0

2

4

6

8

10

12

A B C D M1 M2


Fundo

0

2

4

6

8

10

12

A B C D M1 M2

Junho 2011

0

2

4

6

8

10

12

A B C D M1 M2

Setembro 2011

0

2

4

6

8

10

12

A B C D M1 JA

Outubro 2012

0

5

10

15

20

25

A B C D M1 JA

Março 2013

Clo

rofi

la a

(µg

L -1

)



Figura 5. Variação espacial da concentração de Feopigmentos (µg L-1

) à superfície e fundo da coluna de água, nos pontos de amostragem para cada uma das colheitas. Barras de erro referem-se ao erro-

padrão, para 3 replicados. Note-se a diferença nas escalas.

3.3 Caracterização da comunidade fitoplanctónica – pigmentos

fotossintéticos

Na Figura 6 estão representados as percentagens das principais classes de algas

fitoplântónicas registadas para cada estação, obtidas a partir da análise de pigmentos como

indicadores.

0

10

20

30

40

A B C D M1 M2


Fundo

0

1

2

3

4

A B C D M1 M2

Junho 2011

0

1

2

3

4

A B C D M1 M2

Setembro 2011

0

1

2

3

4

A B C D M1 JA

Outubro 2012

0

20

40

60

80

A B C D M1 JA

Março 2013

Feo

pig

me

nto

s

(µ

g L-

1)



O grupo mais abundante em todas as épocas de amostragem são as diatomáceas. As

cianobactérias e as criptófitas têm uma expressão reduzida.

Em relação aos dinoflagelados, existe um aumento em outono, diminuindo nas estações de

primavera e praticamente desaparecendo no verão.

Figura 61. Abundância relativa das classes fitoplanctónicas a partir da composição pigmentar das amostras para cada uma das colheitas – continua –.

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%

A sup B sup C sup D sup M1 sup M2 sup

Abr 2011

Clorófitas

Cianobactérias

Criptófitas

Diatomáceas

Dinoflagelados

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%

A sup B sup Bfundo

C sup Cfundo

D sup Dfundo

M1sup

M2sup

Jun 2011

Clorófitas

Cianobactérias

Criptófitas

Diatomáceas

Dinoflagelados



Figura 62. Abundância relativa das classes fitoplanctónicas a partir da composição pigmentar das amostras para cada uma das colheitas.

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100% Set 2011

Clorófitas

Cianobactérias

Criptófitas

Diatomáceas

Dinoflagelados

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100% Out 2012

Clorófitas

Cianobactérias

Criptófitas

Diatomáceas

Dinoflagelados

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%

A sup Afundo

B sup C sup D sup Dfundo

M1sup

JA sup

Mar 2013

Clorófitas

Cianobactérias

Criptófitas

Diatomáceas

Dinoflagelados



3.4 Análise microscópica das espécies presentes

A Figura 7 representa a relação que existe entre o valor de clorofila a analisado pelo método

de HPLC e a contagem das células totais no microscópio, para 1 estação da amostragem de

junho 2011, 4 estações de outubro 2012 e 7 estações de março 2013.

Observa-se que existe uma correlação significativa entre ambos os métodos.

Figura 7. Gráfico de correlação entre Clorofila a (µg L-1

), medida na HPLC e a Abundância de Fitoplâncton (cél L-

1) analisada no microscópio das amostragens de Junho 2011, Outubro 2012 e Março 2013, n=12.

Na Figura 8 representam-se os 3 principais grupos de fitoplâncton (fitoflagelados,

dinoflagelados e diatomáceas), para 1 estação da amostragem de junho 2011, 4 estações de

outubro 2012 e 7 estações de março 2013 (ver Tabela 2).

A observação microscópica confirmou os resultados obtidos dos pigmentos fotossintéticos,

dado que mostra as diatomáceas como o grupo mais abundante, no geral. Os fitoflagelados,

sobretudo das classes Chrysophyceae e Cryptophyceae, apresentam valores em média

superior a 20 %, para a maior parte das estações de amostragem.

Os dinoflagelados foram mais abundantes em 2011 e 2012 do que em 2013.

y = 2E-06x + 0.2998 R² = 0.561

0.00

2.00

4.00

6.00

8.00

10.00

12.00

14.00

0 1000000 2000000 3000000 4000000 5000000

Ch

l a H

PLC

(µ

g L-

1 )

Abundância (cél L-1)

Clorofila a (HPLC) - Abundância



Figura 8. Abundância (cél L-1

) dos principais grupos fitoplânctónicos das amostras analisadas no microscópio das amostragens de junho 2011, outubro 2012 e março 2013.

De entre das espécies mais abundantes, destacam-se, para as diatomáceas: Chaetoceros sp. (>

20 %) e Cerataulina sp. (9-15 %) nas estações:A, B, C, D superfície e B fundo de 2013;

Cylindrotheca closterium (> 20 %) em M1 superfície de 2012 e B, C, D superfície e B, C fundo

de 2013; Diploneis sp. com 17 % na estação D Sup 2013, Nitzshia sp. com cerca de 26 % na

estação M1 Sup 2013.

Em relação aos dinoflagelados, destaca-se a espécie Scripsiella trochoidea cf, espécie

potencialmente tóxica, que representou cerca de 20 % na estação A superfície 2011.

0

1000000

2000000

3000000

4000000

5000000A

bu

nd

ân

cia

cél L

-1

Fitoflagelados

Diatomáceas

Dinoflagelados



4 Referências bibliográficas

Brotas, V. e Plante-Cuny, M.R. 1996. Identification et quantification des pigments

chlorophylliens et caroténoïdes des sédiments marins: un protocole d'analyse par

HPLC. Oceanologica Acta 19, 623-34.

Chrétiennot-dinet, M. 1990. Atlas du Phytoplancton Marin. III. Chlorarachniophycées,

Chlorophycées, Chrysophycées, Cryptophycées, Euglénophycées, Eustigmatophycées,

Prasinophycées, Prymnesiophycées, Rhodophycées et tribophycées. Centre National

de la Recherche Scientifique. Paris. France.

Hoppenrath, M., Elbrächter, M. e Drebes, G. 2009. Marine Phytoplankton. Selected

microphytoplankton species from the North Sea around Helgoland and Sylt. E.

Schweizerbart’sche Verlagsbuchhandlung. Stuttgart. Germany.

INAG, I. P. 2009. Manual para a avaliação biológica da qualidade da água em sistemas fluviais

segundo a Directiva Quadro da Água - Protocolo de amostragem e análise para o

fitobentos - diatomáceas. Ministério do Ambiente, do Ordenamento do Território e do

Desenvolvimento Regional. Instituto da Água, I. P.

Kraay, G.W., Zapata, M. e Veldhuis, M.J.W. 1992. Separation of chlorophylls c-1, c-2, and c-3 of

marine phytoplankton by reversed-phase-c18-high-performance liquid

chromatography. Journal of Phycology 28, 708–12.

Lorenzen, C.J. 1967. Determination of chlorophyll and phaeopigments: spectrophotometric

equations. Limnology and Oceanography 12, 343-46.

Ricard, M. 1987. Atlas du Phytoplancton Marin. II. Diatomophycées. Centre National de la

Recherche Scientifique. Paris. France.

Sournia, A. 1986. Atlas du Phytoplancton Marin. I. Introduction, Cyanophycées, Dictyophycées,

Dinophycées et Raphidophycées. Centre National de la Recherche Scientifique. Paris.

France.

Tomas, C.R. 1997. Identifying Marine Phytoplankton. Academic press. California. USA.

Utermöhl H. 1958. Zur Vervollkommnung der quantitativen Phytoplankton-Methodik. Mitt.

Int. Verein. Limnol. 9, 1–38

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Dados da monitorização do fitoplâncton na Lagoa de Albufeira...CRIAÇÃO E IMPLEMENTAÇÃO DE UM SISTEMA DE MONITORIZAÇÃO NO LITORAL ABRANGIDO PELA ÁREA DE JURISDIÇÃO DA ADMINISTRAÇÃO