TUTOR - dspace.uce.edu.ec · resultados seropositivos: Ehrlichiosis sola 50%, ehrlichiosis en asociación con anaplasmosis 18%, ehrlichiosis en asociación con dirofilariasis 5% y

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

IDENTIFICACIÓN DE ANIMALES SEROPOSITIVOS A

ENFERMEDADES HEMATOZOÁRICAS: EHRLICHIOSIS,

ANAPLASMOSIS, DIROFILARIASIS Y ENFERMEDAD DE LYME EN

CANINOS CALLEJEROS DE LA CIUDAD DE GUAYAQUIL

Informe final de investigación presentado como requisito para optar el

Título de

Médico Veterinario Zootecnista

AUTOR

DAVID ANDRÉS TUTACHÁ SORIA

TUTOR

DR. RENÁN MENA PÉREZ

Quito, Octubre 2016

ii

DEDICATORIA

A mis padres, familia, amigos y compañeros de trabajo que gracias a su

apoyo he seguido luchando por mis metas.

A mis profesores y mentores qué me permitieron aprender de ellos para

mejorar tanto personal como profesionalmente.

David Andrés Tutachá Soria

iii

AGRADECIMIENTOS

Expreso mi más sincero agradecimiento a la Facultad de Medicina

Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Central del Ecuador, a sus

autoridades, personal docente y administrativo de manera especial al Dr.

Renán Mena, por su destacada labor como Tutor en la dirección al presente

proyecto de investigación y a todo el personal de la Clínica Veterinaria de

la Facultad, que también fueron un eje fundamental en mi formación

académica.

Agradezco al Dr. Jorge Valladares Torres por abrirme las puertas a la

Clínica Veterinaria Dr. Pets y permitirme formar parte del personal, que

constituyó en la cuna de mi desarrollo profesional. Cada uno de los

miembros de esta institución ha formado una parte importante en mi vida.

A la Dra. Ana Luisa Cevallos por el tiempo que mantuvimos una

colaboración profesional.

A mis padres, Armando y Fanny, que siempre estuvieron a mi lado y me

formaron como ser humano. Siempre me han encaminado hacia el camino

correcto.

A todas las instituciones y personas particulares, que se dedican a la noble

labor de rescate de animales callejeros en la Ciudad de Guayaquil qué me

brindaron apoyo. De manera especial debo mencionar a: Rescate Animal

Ecuador/URRA Guayas, Amigos con Cola, GIVA, GPA Claudia Poppe y

varios rescatistas particulares.

Agradezco a mi familia en especial a José Luis y Lucía, finalmente a mis

amigos qué me acompañaron en este arduo camino, les estoy eternamente

agradecido. Gracias por todo.

iv

© DERECHOS DE AUTOR

Yo, David Andrés Tutachá Soria en calidad de autor del trabajo de

investigación “Identificación de Animales Seropositivos a Enfermedades

Hematozoáricas: Ehrlichiosis, Anaplasmosis, Dirofilariasis y Enfermedad

de Lyme en Caninos Callejeros de la Ciudad de Guayaquil” autorizo a la

Universidad Central del Ecuador, hacer uso de todos los contenidos que

me pertenecen o parte de los que contienen esta obra, con fines

estrictamente académicos o de investigación.

Los derechos que como autor me corresponde, con excepción de la

presente autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo

establecido en los artículos 5, 6, 8, 19 y demás pertinentes de la Ley de

Propiedad Intelectual y su Reglamento.

Así mismo, autorizo a la Universidad Central del Ecuador para que realice

la digitalización y publicación de este trabajo de investigación en el

repositorio virtual, de conformidad a lo dispuesto en el Art. 144 de la Ley

Orgánica de Educación Superior.

En la ciudad de Quito, 26 de Octubre del 2016.

David Andrés Tutachá Soria

Cd. N°1720949971

v

INFORME DEL TUTOR

En mi carácter de Tutor del Trabajo de Investigación, presentado por el

señor: DAVID ANDRÉS TUTACHÁ SORIA, para optar por el Título o Grado

de Médico Veterinario y Zootecnista, cuyo título es “IDENTIFICACIÓN DE

ANIMALES SEROPOSITIVOS A ENFERMEDADES HEMATOZOÁRICAS:

EHRLICHIOSIS, ANAPLASMOSIS, DIROFILARIASIS Y ENFERMEDAD

DE LYME EN CANINOS CALLEJEROS DE LA CIUDAD DE GUAYAQUIL”.

Considero que dicho trabajo reúne los requisitos y méritos suficientes para

ser sometido a la presentación pública y evaluación por parte del jurado

examinador que se designe.

Quito, a los 28 días del mes de Septiembre del 2016.

Dr. Renán Mena Pérez

CI: 1717090433

vi

vii

viii

ix

ÍNDICE GENERAL

DEDICATORIA……………………………………………………………….….ii

AGRADECIMIENTOS……………………………………………………….…iii

© DERECHOS DE AUTOR……………………….…………………………..iv

INFORME DEL TUTOR………………………………………………...………v

CALIFICACIÓN DEL INFORME FINAL/ PRESIDENTE...........................vi

CALIFICACIÓN DEL INFORME FINAL/ VOCAL PRINCIPAL................vii

CALIFICACIÓN DEL INFORME FINAL/ VOCAL PRINCIPAL...............viii

ÍNDICE GENERAL……………………………………..………………….…...ix

LISTA DE CUADROS………………………..………….………………...….xii

LISTA DE FIGURAS…………………………………..……………………..xiv

RESUMEN…………………………………………………………..………..xvii

ABSTRACT…………..………………………………………..…………..…xvii

CAPÍTULO I……………...……..……………………………………………… 1

INTRODUCCIÓN…………….....…………………………………………… 1

OBJETIVOS…………………..……………………………………………… 3

HIPÓTESIS……………………………………………………………………3

CAPÍTULO II……………………………………………………………………..4

REVISIÓN DE LITERATURA………………………………………………….4

ANTECEDENTES………………………………………………………….…4

PRINCIPALES ENFERMEDADES HEMATOZOÁRICAS

TRANSMITIDAS POR VECTORES………………………………………..5

FUNDAMENTOS SOBRE LOS VECTORES: GARRAPATAS Y

CULÍCIDOS……………………………………………………………………8

x

Garrapatas como Vectores……………………………………………...8

Culícidos como Vectores………………………………………………..9

ENFERMEDADES TRANSMITIDAS POR GARRAPATAS Y

CULÍCIDOS……………………………………………………………………9

EHRLICHIOSIS CANINA………………………………………………….9

Epidemiología y Transmisión………………………………………...9

Patogenia……………………………………………………………….10

Signos Clínicos………………………………………………………..10

Diagnóstico…………………………………………………………….11

Tratamiento…………………………………………………………….11

Aspectos Zoonóticos…………………………………………………12

ANAPLASMOSIS CANINA…………..………………………………….12

Generalidades………………………………………………..……...…12

DIROFILARIASIS CANINA……………………………………………...13

Epidemiología y Transmisión……………………………………….13

Patogenia……………………………………………………………….13

Signos Clínicos………………………………………………………..14

Diagnóstico…………………………………………………………….14

Tratamiento…………………………………………………………….14


ENFERMEDAD DE LYME O BORRELIOSIS DE LYME…………….14

Epidemiología y Transmisión……………………………………….14

Patogenia……………………………………………………………….15

Signos Clínicos………………………………………………………..15

xi

Diagnóstico…………………………………………………………….16

Tratamiento…………………………………………………………….16


FUNDAMENTO PRUEBAS RÁPIDAS DE DIAGNÓSTICO…………16

CAPíTULO III…………………………………………………………………..18

MATERIALES Y MÉTODOS………………………………………………18

MATERIALES……………………………………………………………..18

METODOLOGÍA…………………………………………………………..18

Tipo de Investigación………………………………………………...18

Ubicación Geográfica………………………………………………...18

Factores en estudio…………………………………………………..19

Población Objeto de Estudio………………………………………..21

Muestra………………………………………………………………….21

Procedimiento de la Investigación…………………………………22

CAPíTULO IV…………………………………………………………………..26

RESULTADOS Y DISCUSIÓN…………………………………………….26

Análisis de Resultados según la Ubicación de la Ciudad……….31

Análisis de Resultados según la Edad de los Animales………...32

Análisis de Resultados según el Sexo de los Animales………...33

CAPÍTULO V…………………………………………………………………...34

CONCLUSIONES……………………………..…………………………….34

BIBLIOGRAFÍA…………………………………………………………..……35

ANEXOS……………………………………….………………………….……41

xii

LISTA DE CUADROS

CUADRO pág.

Cuadro 1. Principales Enfermedades Transmitidas por Vectores en

Caninos…………………………...………………………………………………7

Cuadro 2. Ciclo de vida de la garrapata……………………..………...…8

Cuadro 3. Reorganización de Grupos Genéticos de la Familia

Anaplasmataceae……………………………………………..…………….…10

Cuadro 4. Curso de la Ehrlichiosis……………………………………...11

Cuadro 5. Protocolos de Terapia para Hemoparásitos……………….12

Cuadro 6. Principales pruebas rápidas comerciales para determinar

enfermedades hematozoáricas……………………………………………....17

Cuadro 7. Centros de Rescate y Hogares Temporales Tomados en

Cuenta para la Investigación……………………………………………….…19

Cuadro 8. Sensibilidad y Especificidad del Kit SNAP 4Dx

IDEXX………………………………………………………………………....21

Cuadro 9. Resultados de Presencia y Ausencia de Animales Seropositivos

a Enfermedades Hematozoáricas: Ehrlichiosis, Anaplasmosis, Dirofilariasis

y Enfermedad de Lyme en Caninos Callejeros de la Ciudad de

Guayaquil……………………………………………………26

Cuadro 10. Resultados de Presencia y Ausencia de Animales

Seropositivos a Enfermedades Hematozoáricas: Ehrlichiosis,

Anaplasmosis, Dirofilariasis y Enfermedad de Lyme en Caninos Callejeros

de la Ciudad de Guayaquil, Clasificados según la Ubicación (Centro y Norte

de la Ciudad)…………………………………………………………….31




xiii

de la Ciudad de Guayaquil, Clasificados según la

Edad……………………………………………………………………………..32




de la Ciudad de Guayaquil, Clasificados según el

Sexo…………………………………………………………………………..…33

xiv

LISTA DE FIGURAS

FIGURAS pág.

Gráfico 1. Ehrlichia spp y Anaplasma spp en frotis sanguíneo…..….…6

Gráfico 2. Garrapata encontrada durante la investigación…………...…6

Gráfico 3. Dirofilaria immitis en frotis sanguíneo……………………..…13

Gráfico 4. Borrelia burgdorferi en frotis sanguíneo 1000X…...............15

Gráfico 5. Funcionamiento de los kits ELISA SNAP IDEXX en el caso

de detección de antígenos……………………………………………………20

Gráfico 6. Toma de muestra de canino……………………………….....23

Gráfico 7. Homogenización de la muestra……………………………...23

Gráfico 8. Procesamiento de los kits diagnósticos………………….…24

Gráfico 9. Resultados en kit…………………………………………..….24

Gráfico 10. Interpretación de Resultados del Kit ELISA SNAP 4Dx Plus

IDEXX…………………………………………………………………..……..25

Gráfico 11. Resultados en porcentaje de Presencia y Ausencia de



de la Ciudad de

Guayaquil……………………………………………………………..………...27

Gráfico 12. Resultados en porcentaje de Presencia de Seropositivos a

Ehrlichiosis de manera general (sola y en asociación con otra patología),

en Caninos Callejeros de la Ciudad de

Guayaquil……………………………………………………………………….28


Anaplasmosis de manera general (sola y en asociación con otra patología),


Guayaquil……………………………………………………………………….29

xv


Dirofilariasis de manera general (sola y en asociación con otra patología),


Guayaquil………………………………………………..…………………...…30

xvi



CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

“IDENTIFICACIÓN DE ANIMALES SEROPOSITIVOS A

ENFERMEDADES HEMATOZOÁRICAS: EHRLICHIOSIS,

ANAPLASMOSIS, DIROFILARIASIS Y ENFERMEDAD DE LYME EN

CANINOS CALLEJEROS DE LA CIUDAD DE GUAYAQUIL”.

Autor: David Andrés Tutachá Soria

Tutor: Dr. Renán Mena Pérez

Fecha: 26 de Octubre del 2016

RESUMEN

Las garrapatas y mosquitos son parásitos que constituyen un alto riesgo

para la salud pública, estos son vectores de varias enfermedades

zoonósicas y el perro sirve como reservorio de estas enfermedades

denominadas hematozoáricas. El objetivo de la presente investigación fue

identificar animales seropositivos a las siguientes patologías: Ehrlichiosis,

Anaplasmosis, Dirofilariasis y Enfermedad de Lyme; mediante el kit ELISA

SNAP 4Dx PLUS IDEXX®, en caninos que son o fueron callejeros en la

ciudad de Guayaquil. El estudio se realizó en varios centros de rescate

animal y hogares temporales de varios rescatistas, con una totalidad de 100

animales. En el muestreo que se realizó, se obtuvo los siguientes

resultados seropositivos: Ehrlichiosis sola 50%, ehrlichiosis en asociación

con anaplasmosis 18%, ehrlichiosis en asociación con dirofilariasis 5% y

anaplasmosis sola 3%. En el caso de la Enfermedad de Lyme no se

encontró animales seropositivos.

Palabras claves: Vectores/ seropositivos/ Ehrlichiosis, Anaplasmosis,

Dirofilariasis y Enfermedad de Lyme/ kit ELISA SNAP 4DX PLUS IDEXX®.

xvii

ABSTRACT

Ticks and mosquitoes are parasites with a high risk for the public health;

they are vectors for zoonotic diseases and the dog is used as a reservoir of

so-called hematozoan diseases. The purpose of the current investigation

was identifying seropositive animals to the following pathologies:

Ehrlichiosis, Anaplasmosis, Dirofilariasis and Lyme’s diseases, by using

ELISA SNAP 4Dx PLUS IDEXX® kit for street dogs in Guayaquil city. The

study was conducted in several animal rescue centers and temporary

shelters of various rescue people, in total 100 animals. During the sampling,

the following seropositive results were found: Ehrlichiosis alone 50%,

ehrlichiosis associated to anaplasmosis 18%, ehrlichiosis associated to

dirofilariasis 5% and anaplasmosis alone, 3%. For Lyme’s disease, no

positive animals were found.

Keywords: Vectors / seropositive / Ehrlichiosis, Anaplasmosis,

Dirofilariasis and Lyme’s Disease / ELISA SNAP 4DX PLUS IDEXX® kit.

1

CAPÍTULO I

INTRODUCCIÓN

Actualmente la relación de los seres humanos con los animales de

compañía y estima, es un hecho vivaz que ha crecido abismalmente, ya

que han pasado a formar parte de la familia; las personas tienen un

sinnúmero de animales con los que comparten incluso el medio donde

viven. Uno de los animales más popular entre las familias es el canino, el

cuál puede ser portador de varios parásitos y enfermedades; las

estimaciones estadísticas indican que alrededor de 1400 microorganismos

vendrían a ser patógenos para los seres humanos, de los cuales un 60 por

ciento son de origen animal (Ferri, 2002).

Es claro que el perro es afectado por muchos parásitos, entre los cuáles se

encuentran la garrapata y el mosquito; estos son artrópodos hematófagos,

transmisores de muchas patologías incluso algunas de orden zoonótico.

Estos vectores son los responsables de transmitir a posteriori al hombre

con su picadura, una serie de enfermedades y a su vez difundirlas al resto

de la población (ESCCAP, 2012).

La garrapata es un animal que posee un fidedigno sistema de adaptabilidad

a distintos medios ambientes; se las puede encontrar en diversidad de

zonas climáticas, pero el medio ideal para su desarrollo son las zonas

tropicales o subtropicales (Mena, 2015). Es un hecho que las zonas cálidas

del Ecuador se encuentran infestadas de estos arácnidos; su erradicación

sería una utopía, lo cual no es algo imposible, pero demandaría un gran

esfuerzo en el que deberían poner de parte profesionales de la salud

humana y animal (ESCCAP, 2012). Los mosquitos tienen como medio ideal

para su desarrollo las zonas tropicales o subtropicales, pero en el caso de

estos agentes es imprescindible la presencia de agua; ya que una parte de

su ciclo vital lo desarrolla en este medio (Mucha, Sorribas, & Pellegrino,

2005).

2

Las enfermedades transmitidas por vectores; provocan una serie de

molestias en el individuo, desde reacciones alérgicas locales hasta la

muerte. Estas patologías se denominan enfermedades hematozoáricas o

enfermedades hemoparasitarias, ya que el agente transmitido en la

picadura completa su ciclo biológico en el torrente sanguíneo;

reproduciéndose al interior o alrededor de células sanguíneas circulantes

(Manzano Román, Días Martín, & Perez Sanchéz, 2012).

Existen muchas patologías causadas por estos hematozoarios, en el

presente estudio se toma en cuenta a las afecciones más importantes de

este tipo, las cuales son: Ehrlichiosis, Anaplasmosis, Dirofilariasis y

Enfermedad de Lyme (Mena, 2015). Siendo esta última la de mayor

relevancia para el estudio por ser una enfermedad zoonótica, que en áreas

endémicas como Estados Unidos o Europa, tiene una amplia difusión

afectando a un número considerable de individuos (Gern & Falco, 2000).

Este es un problema de salud pública grave para el Ecuador, la presencia

de zoonosis y enfermedades emergentes, las cuales son transmitidas por

vectores cuyo reservorio es el canino. Al haber un desordenado control de

la fauna callejera, existe una gran cantidad de animales vagabundos en las

calles de muchas ciudades y la población se encuentra en riesgo constante

de adquirir estas patologías. Guayaquil no es una excepción; ciudad con

un clima ideal para el desarrollo de los vectores y con antecedentes de

animales seropositivos (Mena, 2013).

3

OBJETIVOS

Objetivo general

Determinar la presencia o ausencia de animales seropositivos a

enfermedades hematozoáricas: Ehrlichiosis, Anaplasmosis, Dirofilariasis y

Enfermedad de Lyme en caninos callejeros de la ciudad de Guayaquil.

Objetivos específicos

- Identificar la tasa de pacientes infectados por uno o más agentes

infecciosos; mediante el uso de los kits IDEXX 4DX Plus.

- Reportar la presencia o ausencia de Borrreliosis en perros callejeros de la

ciudad de Guayaquil.

HIPÓTESIS

H0: En la ciudad de Guayaquil no existe animales seropositivos a


Enfermedad de Lyme.

H1: En la ciudad de Guayaquil existe animales seropositivos a


Enfermedad de Lyme.

4

CAPÍTULO II

REVISIÓN DE LITERATURA

ANTECEDENTES

En el Ecuador existe un antecedente de estudios de identificación de

enfermedades hematozoáricas utilizando el mismo kit diagnóstico, los

trabajos realizados son: el de Marquez (2011) en el cantón Milagro, el de

Calvache (2014) en la ciudad de Santo Domingo, y el de Segovia (2015)

utilizando los registros de la Universidad San Francisco de Quito. En el caso

específico de la Enfermedad de Lyme, existen tanto estudios en medicina

humana como veterinaria (Mena, 2015). En el caso de medicina humana,

hubo un caso seropositivo en 2004, de un individuo masculino de 12 años

proveniente de la ciudad de Portoviejo; el cual ingresa a atención médica

por sintomatología similar a la influenza, el paciente presentaba cefalalgia,

mialgia generalizada, pirexia y molestias óculo-motoras. Dicha persona

había, viajado al zoológico de Ibarra, donde supuestamente sufrió la

mordida de una garrapata; cabe recalcar que esta persona toda su vida

había tenido contacto con animales de granja y fue tratado como tal para la

afección, con una recuperación satisfactoria (Alarcón-Guzmán, Santos, &

Alarcón-Avilés, 2004).

En el campo de medicina veterinaria, en el año 2002 fue publicado en la

revista ACOA-ECUADOR; un caso de un canino importado de Alemania, el

cual fue diagnosticado seropositivo y recibió tratamiento. En dicho año, otro

animal fue diagnosticado seropositivo a la patología; se trataba de un

caniche gigante cuyo origen era Estados Unidos. El diagnóstico de ambos

animales, se realizó en la ciudad de Quito, pero al ser animales de

importación bien se podría hablar de una infección en sus países de origen.

Subsecuentemente, en el año 2006 se realiza el diagnóstico de un canino

de raza bóxer en la ciudad de Quito, pero el animal era originario de la

ciudad de Guayaquil, resultando seropositivo para Ehrlichia canis. A

posteriori, en el año 2007 en Quito se recibe una muestra del mismo

5

individuo y es procesada mediante el kit SNAP 4DX PLUS, resultando

seropositiva para la Enfermedad de Lyme. Dicho animal, toda su vida se

había mantenido en su misma localidad, es por esto que se afianza la

sospecha de que la enfermedad fue adquirida en la ciudad de Guayaquil

(Mena, 2013).

PRINCIPALES ENFERMEDADES HEMATOZOÁRICAS TRANSMITIDAS

POR VECTORES

Gran número de artrópodos, entre los que tenemos garrapatas

principalmente del género Rhypicefalus sanguineus e Ixodes spp y

mosquitos respectivamente del genero Aedes, Culex y Anopheles (Quijada

et al., 2012); son vectores de varios agentes microscópicos capaces de

generar un sinnúmero de patologías en varios vertebrados, incluido el

hombre, a estas enfermedades se las denomina hematozoáricas,

hemoparasitarias o hemotrópicas; ya que completan parte de su ciclo

biológico en el torrente sanguíneo del huésped (Rodríguez-Vivas, Cob-

Galera, & Domínguez-Alpizar, 2000).

Entre los muchos microorganismos capaces de generar una condición

hemoparasitaria, tenemos en primera instancia a las rickettsias; las cuales

son bacterias gramnegativas que a su vez son parásitos intracelulares

obligados (Gómez & Nora, 2010). En este caso, las patologías más

representativas de este grupo son la Ehrlichiosis y Anaplasmosis.

También existen agentes como bacterias propiamente definidas, en el caso

de la Enfermedad de Lyme, la cual es causada por una espiroqueta

denominada Borrelia burgdorferi (Gern & Falco, 2000); la cual es una

zoonosis de alta relevancia porque es un riesgo para la salud pública,

especialmente en las zonas donde es endémica como Estados Unidos y

Europa (AVEPA, 2012).

6

Gráfico 1. Ehrlichia spp y Anaplasma spp en frotis sanguíneo.

Gómez, M. (2014). Piroplasmosis y ehrlichiosis. Figura. Recuperado de:

https://elblogdeabritos.wordpress.com/2014/05/12/piroplasmosis-y-erhlichiosis/

Algunos microorganismos son capaces de producir babesiosis canina, cuyo

agente causal son protozoos del género Babesia. Todas estas patologías

tienen como vector a la garrapata (Rodríguez-Morales, 2007).

Finalmente, se menciona que existen nematodos que son considerados

hemoparásitos como las anteriores patologías. Varias especies de

mosquito principalmente son transmisores de la filariosis; una de las

principales afecciones de este tipo es la dirofilariasis canina (Nelson &

Couto, 2010).

Gráfico 2. Garrapata encontrada durante la investigación.

Fuente: El Autor.

Ehrlichia spp

Anaplasma spp

7

Cuadro 1. Principales Enfermedades Transmitidas por Vectores en

Caninos.

Nota: Tomado de ESCCAP ( 2012).

Enfermedad Agentes causales Hospedador Vectores

Enfermedades Transmitidas por Garrapatas (Bacterias y Rickettsias)

Borreliosis

(Enfermedad de

Lyme)

Borrelia

burgdorferi

Roedores,

perro, gato,

humanos, entre

otros.

Ixodes ricinus,

Ixodes

scapularis,

otros Ixódidos

Ehrlichiosis

(monocítica)

Ehrlichia canis y

Ehrlichia

chaffensis

Perro, gato Rhipicefalus

sanguineus

Anaplasmosis

(Ehrlichiosis

granulocítica)

Anaplasma

phagocytophilum

Perros, gatos,

humano, entre

otros.

Ixodes ricinus

Anaplasmosis

(Trombocitopenia

cíclica infecciosa)

Anaplasma platys Perro Rhipicefalus

sanguineus

Enfermedades Transmitidas por Garrapatas (Protozoos)

Babesiosis

(Piroplasmosis)

Babesia canis,

Babesia gibsoni y

similares

Perro Rhipicefalus

sanguineus,

Dermacentor

reticulatus

Enfermedades Transmitidas por Insectos

Filariosis Dirofilaria immitis Perro, gato Culícidos

8

FUNDAMENTOS SOBRE LOS VECTORES: GARRAPATAS Y

CULÍCIDOS

Garrapatas como Vectores

Las garrapatas son parásitos hematófagos, de tamaño macroscópico

perteneciente a la clase Arachnida, los cuales infestan a gran parte de

vertebrados y son transmisores de muchas enfermedades (Manzano

Román et al., 2012). Estos arácnidos presentan una gran adaptabilidad y

el cambio climático ha beneficiado a éstos; lo que ha provocado que estos

vectores colonicen nuevos ecosistemas, siendo antes propios de climas

tropicales y subtropicales (Acero, Calixto, & Prieto, 2011).

En cuanto al medio ambiente que posee el país, se puede encontrar

garrapatas pertenecientes a la Familia Ixodide; entre las cuales tenemos a:

Ixodes ricinus, Ixodes pacificum, Rhipicephalus sanguineus y Dermacentor

reticulatus (Mena, 2015).

Cuadro 2. Ciclo de vida de la garrapata.

Estadio Características Duración

Huevo La hembra deposita en el suelo de

1500 a 2000 huevos

Maduran entre 17 a

30 días.

Larva Sube a un primer huésped del cual se

alimenta por un tiempo y se deja caer

Las garrapatas

pueden transmitir

enfermedades en

estos tres periodos de

su vida, que

aproximadamente

duran 2 años.

Ninfa Sube a un segundo huésped, se

alimenta y se deja caer nuevamente.

Adulto Sube al último huésped, se alimenta

del mismo, realizan la cópula y

finalmente se dejan caer. Las hembras

colocan huevos en el suelo, repitiendo

el ciclo.

Nota: Tomado de Mena (2015).

9

Culícidos como Vectores

Estos vectores pertenecen a la clase Insecta, son parásitos hematófagos y

son vectores del paludismo, el dengue o la filariosis (Bueno-Marí, 2013).

Son mosquitos, de poco volumen y patas largas; con respecto a su ciclo

vital comprende 4 etapas: huevo, larva, pupa y adulto. Durante las etapas

que corresponden a larva y pupa, se desarrollan en un medio acuático

(Muñoz, 2003). De manera más específica, es la hembra adulta el potencial

vector, ya que la misma al ingerir sangre contaminada puede transmitir

varias enfermedades (Mucha et al., 2005).

Los climas ideales para los mosquitos son tropicales o subtropicales y la

presencia de esteros o fuentes de agua, propicia el desarrollo de las larvas.

Según el INSPI (2016), en el Ecuador encontramos varias especies de

culícidos como el Anopheles y Aedes, estos son potenciales vectores.

ENFERMEDADES TRANSMITIDAS POR GARRAPATAS Y CULÍCIDOS

EHRLICHIOSIS CANINA

Epidemiología y Transmisión

El agente causal de la enfermedad es la Ehrlichia spp, la cual es un

organismo cocoide gramnegativo intracelular obligado (AVEPA, 2012).

También, conocida como ehrlichiosis monocítica canina, es transmitida por

garrapatas del género y especie Rhipicephalus sanguineus.

La distribución de este patogenia es mundial, con reporte de casos en

varios continentes (Leon, Demedio, & Marquez, 2008). Miden 0,5 µm de

diámetro, son aerobios y la nomenclatura de algunos microorganismos

ehrlichiales, ha sufrido sustanciales cambios (Gómez & Nora, 2010).

Greene (2008), menciona que: “Se realizaron análisis moleculares de las

secuencias genéticas de groESL y 16S de ARNr bacteriano en

10

2001.”(p.227). Por dicha razón, en la actualidad los géneros Ehrlichia,

Anaplasma, Cowdria y Neorickettsia, pertenencen a la familia

Anaplasmataceae dentro del orden Rickettsiales y se encuentran

reorganizadas en cuatro grupos genéticos.

Cuadro 3. Reorganización de Grupos Genéticos de la Familia

Anaplasmataceae.

Grupo I Anaplasma phagocytophilum (antes conocida como Ehrlichia

phagocytophila), Anaplasma platys (conocida antes como

Ehrlichia platys), Anaplasma marginale, Anaplasma centrale,

Anaplasma caudatum y Anaplasma bovis.

Grupo II Ehrlichia canis, Ehrlichia chaffeensis, Ehrlichia muris,

Ehrlichia ewingii, Ehrlichia ruminatum (antes conocida como

Cowdria ruminatum).

Grupo III Constituido por Neorickettsias: Neorickettsia risticii (conocida

antes como Ehrlichia risticii), Neorickettsia sennetsu

(conocida antes como Ehrlichia sennetsu) y Neoricketssia

helminthoeca.

Grupo IV En este grupo consta solo Wolbachia pipientis.

Nota: Tomado de Lorente (2004).

Patogenia

Estos organismos cocoides tienen tropismo por el torrente sanguíneo, por

lo que se dirigen al mismo y tienen predilección por los leucocitos,

parasitando su citoplasma, formando mórulas (Mayors, 2008).

Signos Clínicos

El curso y pronóstico de la enfermedad es variable, depende de muchos

factores. Si bien no existe una predisposición por edad, sexo o raza; en el

caso del ovejero alemán presenta más susceptibilidad (Greene, 2008).

11

El periodo de incubación después de la exposición al patógeno es de 8 a

20 días, se reproducen por fisión binaria. El curso de la ehrlichiosis posterior

se divide en tres fases: aguda, subclínica y crónica (Rojas et al., 2013).

Cuadro 4. Curso de la Ehrlichiosis.

Fase Características

Aguda Comprendida entre 2 a 4 semanas; los caninos no presentan

una sintomatología específica. Puede estar acompañada de

fiebre, anorexia, petequias en la piel, entre otros síntomas.

Subclínica Con una duración de varios semanas e incluso meses,

caracterizada por trombocitopenia e hipergamaglobulinemia.

Crónica Presenta varias afecciones concomitantes. En algunos

casos acompañada de insuficiencia renal.

Nota: Tomado de Mena (2015) y ESCCAP (2012).

Muchas veces los pacientes pueden cursar con varias afecciones como:

lesiones hemorrágicas, afecciones oculares, miositis, poliartritis, molestias

neurológicas y cardiorrespiratorias. Si el animal no es tratado a tiempo,

incluso puede tener un desenlace fatal (AVEPA, 2012).

Diagnóstico

El diagnóstico de la enfermedad se puede realizar mediante varios métodos

ya sea por observación del frotis sanguíneo; con la característica de la

formación de mórulas. Existen otras pruebas diagnósticas como: ELISA,

IFA, PCR, cultivos o microscopía electrónica (Vaden, 2011).

Tratamiento

El tratamiento específico para los hemoparásitos o hematozoarios se

detalla a continuación, pero el paciente se debe manejar, si es necesario,

con una terapia de mantenimiento de acuerdo a la sintomatología que

presente.

12

Cuadro 5. Protocolos de Terapia para Hemoparásitos.

Fármaco Tratamiento

Doxiciclina Dosis: 10 mg/kg/SID/28 días.

Dipropionato

de Imidocarb

Dosis: 5-7 mg/kg/IM o SC; repitiendo cada 14 días.

Puede haber efectos secundarios.

Nota: Tomado de Mena ( 2015).

Aspectos Zoonóticos

Entre los agentes causales de esta afección, pertenecientes al mismo

genogrupo, tenemos: E. canis, E. ewingii y E. chaffensis; que son

considerados patógenos para otros mamíferos (Benavides A.J. & Ramirez,

2003). Tanto esta patología como la mayoría de las enfermedades

hematozoáricas son contraídas por el hombre, por la picadura de

garrapatas, por lo que este vector debe fijarse al individuo cerca de 48 horas

(Greene, 2008).

ANAPLASMOSIS CANINA

Generalidades

Enfermedad cuyos agentes causales también son bacterias intracelulares

Gram negativas. En los perros se han aislado dos especies, Anaplasma

platys y Anaplasma phagocytophilum. Se ha reportado casos de esta última

en humanos (ESCCAP, 2012).

Cursa con una sintomatología similar a la ehrlichiosis y con tropismo

principalmente hacia neutrófilos, tanto el tratamiento como diagnóstico para

estas patologías es igual al de la ehrlichiosis(Gómez & Nora, 2010).

En el caso de Anaplasma platys, los posibles vectores vendrían a ser

ixódidos y es el agente causal de la anaplamosis trombocitotrópica canina,

por otro lado, la anaplasmosis granulocítica canina tiene como agente

13

causal a Anaplasma phagocytophilum, y su difusión es global (Troncoso,

Fischer, Villarroel, & Herzberg, 2014).

DIROFILARIASIS CANINA


Esta enfermedad es causada por un nematodo denominado Dirofilaria

immitis, es una zoonosis transmitida por culícidos principalmente de los

géneros: Aedes, Anopheles, Culex y Taeoniorhynchus según Sánchez,

Calvo, & Mutis (2011).

Gráfico 3. Dirofilaria immitis en frotis sanguíneo.

Ruedisueli, F. (2015). Nemátodo Dirofilaria immitis. Figura. Recuperado de:

http://www.animaldisease.org/PIC/PIC/Parasite-Image-Collection/Dirofilaria-

nematode.html

Patogenia

El mosquito hembra, al alimentarse del animal enfermo ingiere microfilarias

o L1, las fases L2 y L3 se completan en el vector y al ingerir sangre

nuevamente transmite el nematodo; el cual en su estado adulto se ubica en

las arterias pulmonares (Muñoz, 2003).

En el caso de que el número de vermes aumentase, estos se movilizarán

al ventrículo derecho; provocando hipertrofia del mismo e insuficiencia

cardíaca, los vermes muertos pueden formar trombos (Mucha et al., 2005).

14

Signos Clínicos

Muchos pacientes cursan cuadros asintomáticos en su etapa inicial. A

posteriori pueden manifestar tos, disnea, pérdida de peso y hemoptisis. En

cuadros avanzados se puede apreciar ascitis, coagulación intravascular

diseminada y la muerte (Muñoz, 2003).

Diagnóstico

Existen variedad de técnicas para diagnosticar esta enfermedad: la

observación directa en frotis sanguíneo, técnicas de concentración, ELISA,

radiología y necropsia.

Tratamiento

Se implementa en primera instancia un tratamiento adulticida, a base de

tiacetarsamida a 2,2 mg/kg/IV/BID/ durante 48 horas o melarsamida 2,5

mg/kg/IM/SID durante 48 horas. Para eliminación de las microfilarias se

instaura un tratamiento a base de ivermectina 0,006 mg/kg o milbemicina

0,5 mg/kg una vez al mes (Bowman, 2004).


Esta enfermedad puede ser transmitida al ser humano por los culícidos,

causando lesiones cutáneas y pulmonares; pero algo característico es que

el hombre no desarrolla la filaremia como el canino (Sánchez et al., 2011).

ENFERMEDAD DE LYME O BORRELIOSIS DE LYME


Su agente causal es una bacteria la espiroqueta Borrelia burgdorferi y su

distribución es global; las zonas endémicas de la enfermedad corresponde

a Estados Unidos y Europa (Miranda, Mattar, & Perdomo, 2009).

Es transmitida por la picadura de garrapatas del género Ixodes spp y en

América se han identificado dos especies: Ixodes scapularis e Ixodes

pacificus (Mena, 2015).

15

Gráfico 4. Borrelia burgdorferi en frotis sanguíneo 1000X.

Charis D. (2015) Borrelia burgdorferi (up close). Figura. Recuperado de:

https://www.studyblue.com/notes/note/n/lab-1-2-3/deck/15579850

Patogenia

En este caso las espiroquetas al ingresar al tejido afectado se diseminan

por el tejido conjuntivo, en ocasiones migran a articulaciones y tejido

nervioso; es muy raro que se diseminen por vía hemática a diferencia de

las anteriores patologías y se reproducen al exterior de las células

(ESCCAP, 2012).

Signos Clínicos

Después de que el animal fue expuesto, genera sintomatología en

aproximadamente 3 a 5 meses (University Iowa State, 2006).

Así un animal puede cursar con un estado febril, acompañado de

inapetencia y presentar linfoadenomegalia. Se han documentado casos de

poliartritis, pero solo de manera experimental y algunos animales han

presentado falla glomerular grave; pero este hecho no está comprobado

(AVEPA, 2012).

En el caso de los seres humanos es común la presencia de eritema

migratorio y meningitis; en caninos existe una irritación rojiza en la piel y

pocos casos han desarrollado meningitis (Ettinger & Feldman, 2007).

16

Diagnóstico

Al igual que las anteriores patologías, el diagnóstico puede ser llevado a

cabo por pruebas serológicas, ELISA, IFA, detección de anticuerpos

específicos para C6, wertern blot, PCR y cultivo (Vaden, 2011).

Tratamiento

En menester que esta patología sea manejada con una terapia

antimicrobiana, en estadios tempranos se la puede manejar con doxiciclina

a razón de 10 mg/kg, amoxicilina 20 mg/kg o azitromicina a 25 mg/kg;

durante 30 días. En cuadros persistentes o manifestaciones neurológicas,

el tratamiento debe ser manejado con penicilina G, ceftriaxona, cefotaxima

o cloranfenicol durante 14 a 20 días (Greene, 2008).


Esta patología causa una sintomatología similar a la influenza en primera

instancia, algo característico de la enfermedad es el eritema migratorio, que

se distribuye desde la zona donde la garrapata se fijó. Son comunes las

manifestaciones neurológicas de la enfermedad, acompañadas de

radiculitis y meningitis.

En las zonas donde es endémica se encuentra ampliamente difundida; en

USA y Europa, 10 de cada 1000 personas contraen esta afección al año

(Lantos, 2011).

FUNDAMENTO PRUEBAS RÁPIDAS DE DIAGNÓSTICO

En el mercado existen varios test rápidos, los cuales permiten obtener un

diagnóstico inmediato a estas patologías y están basados en tecnología

ELISA (Test Snap) o inmunocromatografía. Estas pruebas son fáciles de

transportar y no necesitan de un laboratorio para ser llevadas a cabo, el

fundamento de las mismas en el siguiente:

17

Cuadro 6. Principales pruebas rápidas comerciales para determinar

enfermedades hematozoáricas.

Prueba Fundamento

ELISA Este inmunoensayo tiene como principio la

unión de un antígeno o anticuerpo ligado a una

enzima en la muestra problema, que al

reaccionar con un antígeno o anticuerpo fijo;

forma el inmunocomplejo. Este inmunocomplejo

al ser lavado y al cual se le agrega un sustrato,

da una reacción en color. En caso de buscar

antígenos se habla de un ELISA directo y si se

busca anticuerpos es un ELISA indirecto.

Inmunocromatografía Esta prueba se realiza en una tira de

nitrocelulosa donde al agregar la muestra y si

esta posee un antígeno reacciona a un

anticuerpo y se forma un inmunocomplejo, al

atravesar la zona de captura que posee un

segundo anticuerpo reaccionará marcando el

resultado positivo.

Nota: Tomado de Vaden (2011) y IDEXX Laboratories (2016).

18

CAPÍTULO III

MATERIALES Y MÉTODOS

MATERIALES

En la presente investigación se utilizaron los siguientes materiales:

- 100 kits micro ELISA SNAP 4Dx PLUS IDEXX

- 100 sueros caninos problema

- Jeringas estériles 3 ml

- Caja de tubos microcollet EDTA

- Caja de guantes desechables

- Torniquete

- Isotermos de varios tamaños

- Material de antisepsia en general

METODOLOGÍA

Tipo de Investigación

El presente estudio fue de tipo transversal, observacional y analítico.

Ubicación Geográfica

La ciudad se encuentra ubicada a 6 msnm, con las siguientes coordenadas

Latitud: -2°10 S; Longitud: 79°54 O. Posee un clima tropical y una

temperatura promedio de 25 C durante todo el año. Tanto el clima como

la presencia de fuentes de agua, permite el desarrollo de varios vectores

biológicos.

La investigación se realizó en varios refugios y en hogares temporales de

animales rescatados de las calles de la ciudad de Guayaquil, Cantón

Guayaquil, provincia del Guayas; los cuales se encontraban distribuidos en

el centro y norte de la ciudad, detallados a continuación:

19

Cuadro 7. Centros de Rescate y Hogares Temporales Tomados en Cuenta

para la Investigación.

Centro de Rescate u Hogar

Temporal

Dirección

Rescate Animal Ecuador/URRA Centro: Parroquia Pascuales

Centro Temporal: Sector Puente Lucía

GIVA Samanes 3

Amigos con Cola Sucre 2206 y Tungurahua

GPA Claudia Poppe Escuela Superior Politécnica del Litoral;

Km 30, Vía Perimetral 5

Animales en Hogares

Temporales

Parque Chile, Guayacanes y Calle

Capitán Nájera

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: El Autor

Factores en estudio

En la presente investigación se realizó la identificación de animales

seropositivos a enfermedades hematozoáricas: ehrlichiosis, anaplasmosis,

dirofilariasis y enfermedad de Lyme; utilizando el kit micro ELISA SNAP 4Dx

PLUS IDEXX en caninos callejeros de la ciudad de Guayaquil, los cuales

se encontraban en varios refugios u hogares temporales.

El kit es un ELISA, el cual permite detectar la presencia de antígenos para

Dirofilaria inmmitis y anticuerpos para Ehrlichia canis, Ehrlichia ewingii,

Anaplasma phagocytophilum, Anaplasma platys y Borrelia burgdorferi. En

el caso particular de enfermedad de Lyme, según la FDA, reconoce dos

test de ELISA para reconocimiento de anticuerpos contra Borrelia, los

cuales son: Prevue B y el péptido C6 (Rodríguez-González, 2013). Este test

utilizá el péptido C6; el cual es una proteina de superficie única y es

20

altamente específica que funciona como antígeno, al formarse anticuerpos

contra la misma se da la reacción de color (IDEXX Laboratories, 2016).

Gráfico 5. Funcionamiento de los kits ELISA SNAP IDEXX en el caso de

detección de antígenos.

1 El antígeno queda fijado cuando

el anticuerpo conjugado ligado a

la enzima y la muestra de sangre

se combinan

2 La matriz ha sido tapizada con

anticuerpos específicos

específicos

3 El conjugado y el antígeno se

unen al anticuerpo ligado a la

matriz

4 Se activa el dispositivo

5 La etapa de

lavado elimina

de la matriz

inespecificidade

s

6 El sustrato fluye

por la matriz

limpia. El sustrato

reacciona con el

conjugado para

amplificar la

presencia del

antígeno. Dando

una lectura.

IDEXX Laboratories. (2016). Kit ELISA SNAP 4Dx PLUS. Figura. Recuperado de:

http://www.idexx.es/smallanimal/inhouse/snap/4dx.html

21

Cuadro 8. Sensibilidad y Especificidad del Kit SNAP 4Dx IDEXX.

Enfermedad Sensibilidad Especificidad

Ehrlichia spp 96,2 % 100 %

Anaplasma spp 99,1 % 100 %

Filaria 99,2 % 100 %

Borrelia burgdorferi 98,8 % 100 %

Nota: Tomado de IDEXX Laboratories (2016).

Población Objeto de Estudio

Como ya se mencionó anteriormente los animales centinelas de la

enfermedad son los caninos y los climas tropicales por lo general son

favorables para el desarrollo de los vectores; razón por la cual el estudio se

realizó en la ciudad de Guayaquil.

Se trabajó con animales que son o fueron callejeros, debido a esto se

muestreó caninos en refugios, hogares temporales y los que reciben

atención médica gratuita por parte de organizaciones del estado.

Se contó con el apoyo de varias organizaciones particulares como Rescate

Animal Ecuador/URRA, Amigos con Cola, GPA Claudia Poppe, GIVA y

varios rescatistas particulares.

Se tomó en cuenta solo animales mestizos para evitar sesgos en el estudio

o complicaciones el momento de la elaboración de la parte estadística.

Cada refugio u hogar temporal no tiene un número fijo de animales, por lo

que el número de los mismos en cada refugio es variable.

Muestra

En la ciudad de Guayaquil se contó con el apoyo de varios centros de

rescate y rescatistas particulares, se estima que por lo menos se maneja

una rotación promedio de 650 animales por mes, los cuales podrían ser

22

portadores de las enfermedades en el presente estudio. Por lo tanto, el

tamaño del Universo es de 650 perros y la fórmula aplicada es la siguiente:

n =𝑍2pqN

N𝐸2 + 𝑍2pq

Donde:

n es el tamaño de la muestra;

Z es el nivel de confianza;

p es la variabilidad positiva;

q es la variabilidad negativa;

N es el tamaño de la población;

E es la precisión o el error.

Se consideró una confianza del 95%, un porcentaje de error del 9% y la

variabilidad positiva utilizada es de 57%; tomando en cuenta estudios

previos afines como el de Marquez (2011).

n =(1.96)2(0.57)(0.43)(650)

(650)(0.09)2+(1.96)2(0.57)(0.43)=98.60

Por tanto, para garantizar que la muestra aleatoria representa a la

población de caninos rescatados de Guayaquil debía ser de 99 animales,

pero por presentación comercial de los kits diagnósticos se realizó 100

muestras.

Procedimiento de la Investigación

1. Fase de campo (muestreo)

La identificación de animales seropositivos a enfermedades

hematozoáricas: ehrlichiosis, anaplasmosis, dirofilariasis y enfermedad de

Lyme; se realizó tomando muestras de sangre de 100 animales los cuales

son o fueron callejeros en varios centros de rescate y hogares temporales

de Guayaquil.

23

- Se sujetó a cada animal, con la ayuda de un acompañante; el mismo

que realizó torniquete a una de los miembros anteriores del canino.

- Posteriormente se realizó el proceso de antisepsia adecuado.

- Se tomó la muestra de sangre con una jeringa estéril de 3 ml, para

colocarla lentamente en un tubo EDTA con homogenización de la misma.

Gráfico 6. Toma de muestra de canino.

Fuente: El Autor.

- La muestra se dejó reposar 10 minutos a temperatura ambiente y

fue colocada en un cooler; para su posterior procesamiento con el kit.

Gráfico 7. Homogenización de la muestra.

Fuente: El Autor.

24

2. Fase de laboratorio.

Procesamiento

- Tanto el kit como la muestra debían ser mantenidas a temperatura

ambiente antes de su procesamiento, por lo que se las dejó reposar entre

15 a 20 minutos sobre la mesa de laboratorio.

- Terminado el reposo con una pipeta se tomó 3 gotas de sangre y

esta se colocó en un tubo de ensayo pequeño, con 4 gotas del conjugado;

este compuesto se homogenizó invirtiéndolo entre 3 y 5 veces.

- El kit debió mantenerse sobre una superficie plana y completamente

horizontal, este kit poseía un pocillo para las muestras donde se agregó

todo el contenido del tubo de ensayo; a posteriori la muestra fluiría por la

ventana de resultados hasta alcanzar el círculo de activación en

aproximadamente 30 a 60 segundos.

Gráfico 8. Procesamiento de los kits diagnósticos.

Fuente: El Autor.

- Una vez presente la muestra en el círculo de activación se presionó

el dispositivo snap hasta activarlo y los resultados se coloreaban.

Gráfico 9. Resultados en kit.

Fuente: El Autor.

- Los resultados se interpretaron de la siguiente manera:

25

Gráfico 10. Interpretación de Resultados del Kit ELISA SNAP 4Dx Plus

IDEXX.

IDEXX Laboratories. (2016). Kit ELISA SNAP 4Dx PLUS. Figura. Recuperado de:

http://www.idexx.es/smallanimal/inhouse/snap/4dx.html

Registro y Análisis de Datos

a. Registro de Datos

Los resultados positivos y negativos fueron registrados manualmente en

hojas de encuesta, para posteriormente registrarlos en una hoja de cálculo

de Microsoft Excel.

b. Análisis de los Datos

Los resultados obtenidos para todas estas enfermedades fueron

representados con estadística descriptiva y fue elaborada una tabla

binomial multivariante. Los resultados tanto para: ehrlichiosis,

anaplasmosis, y enfermedad de Lyme, son interpretados como positivo o

negativo; lo que denota que fueron expuestos a la enfermedad mas no

asegurar que están enfermos, a diferencia de la dirofilariasis ya que el kit

busca antígenos en el caso de esta patología.

26

CAPÍTULO IV

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Presentación de Resultados

La identificación de animales seropositivos a enfermedades

hematozoáricas: ehrlichiosis, anaplasmosis, dirofilariasis y enfermedad de

Lyme, en caninos callejeros de la ciudad de Guayaquil; se realizó utilizando

el kit ELISA Snap 4DX Plus de Idexx, siguiendo el protocolo recomendado

por los fabricantes.

Se realizó el muestreo de 100 animales, provenientes de varios refugios y

hogares temporales de rescatistas particulares; en varios sectores de la

ciudad.

El muestreo se realizó durante dos semanas de acuerdo a la disponibilidad

de tiempo de los rescatistas y encargados de los centros de rescate; cada

centro poseía cantidades variables de animales por lo que se tomaba

muestras de los animales que estén disponibles.

Cuadro 9. Resultados de Presencia y Ausencia de Animales Seropositivos

a Enfermedades Hematozoáricas: Ehrlichiosis, Anaplasmosis, Dirofilariasis

y Enfermedad de Lyme en Caninos Callejeros de la Ciudad de Guayaquil.

RESULTADOS CANTIDAD DE ANIMALES

Ehrlichiosis 50

Anaplasmosis 3

Borreliosis 0

Ehrlichiosis y Anaplasmosis 18

Ehrlichiosis y Dirofilariasis 5

Negativos 24

Total 100


Elaborado por: El Autor

27

Gráfico 11. Resultados en porcentaje de Presencia y Ausencia de



de la Ciudad de Guayaquil.



De manera general se identificó la presencia de animales seropositivos a:

Ehrlichiosis sola 50%, ehrlichiosis en asociación con anaplasmosis 18%,

ehrlichiosis en asociación con dirofilariasis 5%, anaplasmosis sola 3%,

borreliosis 0 % y negativos 24 %.

En comparación a otros estudios similares realizados con antelación, la

cantidad de seropositivos es bastante superior; la razón principal es que el

estudio se realizó en animales que son o fueron callejeros, es decir fueron

expuestos a los vectores con mayor facilidad, ya que los estudios previos

se realizaron en animales que eran tratados en clínicas. Márquez (2011)

tuvo un porcentaje de 57% de seroposititivos a todas las enfermedades en

el cantón Milagro y Calvache (2014) un 19 % en la ciudad de Santo

Domingo.

En el caso de otro medio geográfico, tenemos el estudio realizado por

Segovia (2015); el cual utilizó la base de datos del Hospital Docente de la

BORRELIOSIS0%

EHRLICHIOSIS50%

ANAPLASMOSIS3%

EHRLICHIOSIS Y ANAPLASMOSIS

18%

EHRLICHIOSIS Y DIROFILARIASIS

5%

NEGATIVOS24%

28

USFQ del 2011 al 2015, en el cual se realizaron 148 muestreos y de los

cuales 16,89% fueron resultados seropositivos, obteniendo mayor

presencia de ehrlichiosis, seguido de anaplasmosis, dirofilariasis y ningun

caso de borreliosis.

Con respecto a la borreliosis no existió ningún resultado seropositivo; como

antecendente Calvache (2014) obtuvo 1 % de seropositivos, en dicho

estudio se muestreo animales de clínica por lo que pudo tratarse de un

animal importado ya que no se indica su origen. En el campo internacional

un estudio realizado en tres ciudades Medellín, Barranquilla y Cartagena

en Colombia por Mccown, Monterroso, & Cardona (2015), no obtuvo

animales seropositivos a borreliosis.


Ehrlichiosis de manera general (sola y en asociación con otra patología),

en Caninos Callejeros de la Ciudad de Guayaquil.



En el caso de la ehrlichiosis fue la que más seropositivos presentó 73%

sobre el total muestreado; lo que difiere con el trabajo de Calvache (2014),

el cual obtuvo en su investigación mayor presencia de seropositivos a

anaplasma en relación al total y con un 7% de seropositivos para

ehrlichiosis, siendo la zona de Santo Domingo menos afectada por este

agente.

EHRLICHIOSIS 73%

29

Con respecto a otras investigaciones afines tanto a nivel nacional como

internacional, guarda mucha relación ya que en todos estos estudios la

ehrlichiosis siempre obtiene mayor cantidad de seropostivos en relación a

los demás agentes. Por ejemplo; Márquez (2011) en el cantón Milagro

obtiene 25% de seropositivos a ehrlichiosis. Caraguay (2015) realizó el

estudio en animales provenientes de las zonas rurales del cantón

Catamayo obteniendo 56,25% de seropositivos a Ehrlichia spp. Con

respecto a estudios internacionales Almao, García, & Mujica (2013)

obtuvieron 45,16% de seropositivos a Ehrlichia spp. en la comunidad “La

Isla” en Venezuela y McCown, Monterroso, & Cardona (2015) obtuvieron

62% de seropositivos en la ciudad de Medellín, Barranquilla y Cartagena

en Colombia.


Anaplasmosis de manera general (sola y en asociación con otra patología),




Se obtiene el 21% de seropositivos a Anaplasma spp siendo la segunda

patología con más seropositivos, en el caso del estudio de Calvache (2014)

esta ocupa el primer lugar, con un 10% sobre el total muestrado. Por otro

lado, la anaplasmosis ocupa el segundo puesto con más seropositivos en

los trabajos de Márquez (2011) con un 9% de seropositivos en Milagro y el

de McCown, Monterroso, & Cardona (2015) con un 33% en tres ciudades

de Colombia.

ANAPLASMOSIS 21 %

30

Otro estudio realizado por Morales (2010) en la Universidad de San Carlos

de Guatemala utilizando el mismo kit, pero solo enfocado a identificación

de anaplasmosis; obtiene un 10% de seropositivos a esta patología.


Dirofilariasis de manera general (sola y en asociación con otra patología),




La dirofilariasis fue la patología que menos seropositivos presentó con un

5% del total muestreado y en el caso de esta investigación siempre se la

encontró asociada a otra patología.

En otras investigaciones afines la dirofilariasis es la enfermedad que menos

seropositivos tiene; en el caso de Calvache (2014) obtuvo 3% de

seropositivos y Marquez (2011) incluso no obtuvo ningún seropositivo.

Fernández (2016) realizó un estudio, el cual fue enfocado solo al

diagnóstico de Dirofilaria immitis en la ciudad de Guayaquil obteniendo

9,5% de resultados seropositivos.

Y en el campo internacional McCown, Monterroso, & Cardona (2015) en

Colombia, obtuvieron 1,2% seropositivos del total muestreado.

DIROFILARIASIS 5 %

31

Análisis de Resultados según la Ubicación de la Ciudad

Los distintos refugios y hogares temporales se encuentran ubicados

indistintamente en el norte y centro de la ciudad comprendiendo zonas

rurales, urbanas y marginales. Por lo que los resultados son clasificados en

norte y centro.




de la Ciudad de Guayaquil, Clasificados según la Ubicación (Centro y Norte

de la Ciudad).

RESULTADOS NORTE CENTRO

Número % Número %

Ehrlichiosis 26 49% 24 51%

Anaplasmosis 2 4% 1 2%

Borreliosis 0 0% 0 0%

Ehrlichiosis y Anaplasmosis

7 13% 12 26%

Ehrlichiosis y Dirofilariasis

3 6% 1 2%

Negativos 15 28% 9 19%

Total 53 100% 47 100%



Es claro que existe una diferencia significativa entre los animales negativos

del centro y el norte de la ciudad, presentándose más casos negativos en

el norte y más infecciones mixtas en el centro. Hay que recalcar que los

centros de rescate animal ubicados en el norte de la ciudad poseen un

veterinario de planta, ya que pertenecen a una organización vinculada al

gobierno; es evidente que al tener un profesional al frente del sitio que

brinda tratamiento a los animales y realiza un manejo sanitario de los

mismos se evidencia en los resultados.

32

Análisis de Resultados según la Edad de los Animales

Los resultados son clasificados según los grupos etarios; tomando en

cuenta a los cachorros como menores de 1 año, a los adultos de 1 a 7 años

y a los geriátricos a los que tienen 7 años o más, de esta manera se analiza

si existe alguna relación entre los resultados. Lo que se expresa en la

siguiente tabla.




de la Ciudad de Guayaquil, Clasificados según la Edad.

RESULTADOS Cachorros

Menos de 1 año

Adultos

1 – 7 años

Geriátricos

Más de 7 años

Número % Número % Número %

Ehrlichiosis 0 0% 44 54% 6 46%

Anaplasmosis 0 0% 3 4% 0 0%

Borreliosis 0 0% 0 0% 0 0%

Ehrlichiosis y Anaplasmosis

0 0% 15 19% 3 23%

Ehrlichiosis y Dirofilariasis

0 0% 2 2% 3 23%

Negativos 6 100% 17 21% 1 8%

Total 6 100% 81 100% 13 100%



Los cachorros no presentaron ningún caso seropositivo, la razón principal

es que fueron abandonados recientemente y no han sido expuestos a los

vectores por mucho tiempo.

Los seropositivos a dirofilariasis en el caso de los animales geriátricos es

más alta, la razón principal es que estos animales han permanecido más

tiempo en las calles, por lo que han sido expuestos más tiempo a vectores.

33

Análisis de Resultados según el Sexo de los Animales

La clasificación de los resultados por sexo es importante en el estudio; ya

que se puede saber si machos o hembras son más predisponentes.




de la Ciudad de Guayaquil, Clasificados según el Sexo.

RESULTADOS MACHOS HEMBRAS

Número % Número %

Ehrlichiosis 18 42% 32 56%

Anaplasmosis 2 5% 1 2%

Borreliosis 0 0% 0 0%

Ehrlichiosis y Anaplasmosis 12 28% 7 12%

Ehrlichiosis y Dirofilariasis 3 7% 1 2%

Negativos 8 18% 16 28%

Total 43 100% 57 100%



En el caso de los machos presentan más seropositivos en relación a las

hembras; una razón es que estos individuos deambulan más por la calle en

búsqueda de hembras en celo y por marcaje de territorio, son expuestos a

los vectores con mayor facilidad por dicha razón. Donde más se evidencia

la diferencia significativa es en las infecciones mixtas, que en los machos

es mucho más alta que en las hembras. En este caso la investigación

directa manifiesta una diferencia entre los animales muestreados, aunque

la literatura nos dice que no existe predisposición por raza, edad o sexo

(Greene, 2008).

34

CAPÍTULO V

CONCLUSIONES

- Se determinó la presencia de animales seropositivos a

enfermedades hematozoáricas: ehrlichiosis, anaplasmosis y dirofilariasis, y

la ausencia de animales seropositivos a Enfermedad de Lyme; en caninos

callejeros de la ciudad de Guayaquil. Siendo la Ehrlichiosis la enfermedad

que mayor cantidad de seropositivos presentó con un 73% del total

muestreado, seguido de la anaplasmosis con un 21% y finalmente la

dirofilariasis con un 5%.

- Se confirma que la presencia de seropositivos es superior a otras

investigaciones; la razón principal para este hecho es que son animales

provenientes de la calle, por lo que fueron expuestos a los vectores con

mayor facilidad.

- Se identificó la tasa de pacientes infectados por uno o más agentes

infecciosos; mediante el uso de los kits IDEXX 4DX Plus. Determinando

que existe relación de los resultados ya sea por ubicación de la ciudad,

edad o sexo de los caninos muestreados.

- Se reporta la ausencia de seropositivos a Borrreliosis o Enfermedad

de Lyme en perros callejeros de la ciudad de Guayaquil, en las zonas de

influencia donde fue realizada la investigación.

35

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ANEXOS

ANEXO 1 TABLA BINOMIAL MULTIVARIANTE

ANIMAL SITIO SECTOR RAZA SEXO EDAD FECHA EHRLICHIOSIS ANAPLAMOSIS DIROFILARIASIS BORRELIOSIS

1 Rocky Parque Chile Hogar Temporal CENTRO Mestizo Macho 9 meses 04/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

2 King kong Parque Chile Hogar Temporal CENTRO Mestizo Macho 11 años 04/07/2016 Positivo Negativo Positivo Negativo

3 Thiago Parque Chile Hogar Temporal CENTRO Mestizo Macho 1 año 04/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

4 Pata Pata Parque Chile Hogar Temporal CENTRO Mestizo Hembra 3 años 04/07/2016 Negativo Positivo Negativo Negativo

5 s/n Rescate Animal/URRA Puente Lucía NORTE Mestizo Hembra 2 años 05/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

6 s/n Rescate Animal/URRA Puente Lucía NORTE Mestizo Hembra 1 año 05/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

7 s/n Rescate Animal/URRA Puente Lucía NORTE Mestizo Hembra 2 años 05/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

8 s/n Rescate Animal/URRA Puente Lucía NORTE Mestizo Hembra 3 años 05/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

9 s/n Rescate Animal/URRA Puente Lucía NORTE Mestizo Macho 2 años 05/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

10 s/n Rescate Animal/URRA Puente Lucía NORTE Mestizo Macho 1 año 05/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

11 s/n Rescate Animal/URRA Puente Lucía NORTE Mestizo Macho 2 años 05/07/2016 Negativo Positivo Negativo Negativo

12 s/n Rescate Animal/URRA Puente Lucía NORTE Mestizo Macho 4 años 05/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

13 s/n Rescate Animal/URRA Puente Lucía NORTE Mestizo Macho 4 años 05/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

14 Telma Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Hembra 4 años 05/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

15 Blanca Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Hembra 3 años 05/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

16 Oliver Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Macho 4 años 05/07/2016 Positivo Negativo Positivo Negativo

17 Chiquitin Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Macho 4 años 05/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

18 Celia Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Hembra 3 años 05/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

19 Layla Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Hembra 6 años 05/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

20 Sheyla Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Hembra 4 años 05/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

21 Pipo Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Macho 3 años 05/07/2016 Negativo Positivo Negativo Negativo

22 s/n Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Hembra 3 años 05/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

23 Lula Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Hembra 3 años 05/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

24 Rufo Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Macho 3 años 05/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

25 Willy Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Macho 6 años 05/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

26 Chicho Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Macho 9 años 05/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

27 Negra Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 2 años 06/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

28 Bambi Amigos con Cola CENTRO Mestizo Macho 4 años 06/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

29 Colombiana Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 2 años 06/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

30 Atahulfa Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 5 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

31 Tribilín Amigos con Cola CENTRO Mestizo Macho 8 años 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

32 Patricia Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 5 años 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

33 Vicky Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 6 años 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

34 Chola Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 2 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

35 Sambo Amigos con Cola CENTRO Mestizo Macho 2 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

36 Gringa Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 4 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

37 Patuleca Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 3 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

38 Patas Largas Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 6 meses 06/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

39 Vecina Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 1 año 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

40 Mariposa Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 4 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

41 Kimbala Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 1 año 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

42 Cuco Amigos con Cola CENTRO Mestizo Macho 6 años 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

43 Bonita Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 6 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

44 Loba Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 3 años 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

45 Orejas Amigos con Cola CENTRO Mestizo Macho 6 meses 06/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

46 Figurita Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 6 meses 06/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

47 Siriaca Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 5 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

48 Pacharaca Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 3 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

49 Enrique Amigos con Cola CENTRO Mestizo Macho 4 años 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

50 Enano Amigos con Cola CENTRO Mestizo Macho 3 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

51 Zapato Amigos con Cola CENTRO Mestizo Macho 2 años 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

52 Tímida Amigos con Cola CENTRO Mestizo Hembra 3 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

53 Nerón Amigos con Cola CENTRO Mestizo Macho 1 año 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

54 Blanco GIVA NORTE Mestizo Macho 2 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

55 Toto GIVA NORTE Mestizo Macho 5 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

56 s/n Rescate Animal/URRA Puente Lucía NORTE Mestizo Macho 3 años 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

57 Chester Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Macho 8 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

58 Gorda Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Hembra 6 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

59 s/n Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Macho 3 años 06/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

60 Alcides Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Macho 5 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

61 Niña Rescate Animal/URRA Centro NORTE Mestizo Hembra 2 años 06/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

62 Pinky GPA Claudia Poppe CENTRO Mestizo Hembra 2 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

63 Bombón GPA Claudia Poppe CENTRO Mestizo Hembra 2 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

64 Crístofer GPA Claudia Poppe CENTRO Mestizo Macho 3 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

65 s/n GPA Claudia Poppe CENTRO Mestizo Macho 3 años 06/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

66 Nerón Parque Chile Hogar Temporal CENTRO Mestizo Macho 15 años 06/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

67 Mía Parque Chile Hogar Temporal CENTRO Mestizo Hembra 1 año 06/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

68 Snoppy Parque Chile Hogar Temporal CENTRO Mestizo Macho 7 meses 06/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

69 Analí Guayacanes Hogar Temporal NORTE Mestizo Hembra 5 años 07/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

70 Fiona Guayacanes Hogar Temporal NORTE Mestizo Hembra 3 años 07/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

71 Cristina Guayacanes Hogar Temporal NORTE Mestizo Hembra 8 años 07/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

72 Malu Guayacanes Hogar Temporal NORTE Mestizo Hembra 3 años 07/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

73 Nena Guayacanes Hogar Temporal NORTE Mestizo Hembra 4 años 07/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

74 Luna Guayacanes Hogar Temporal NORTE Mestizo Hembra 2 años 07/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

75 Max Guayacanes Hogar Temporal NORTE Mestizo Macho 2 años 07/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

76 Max Guayacanes Hogar Temporal NORTE Mestizo Macho 2 años 07/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

77 Pinky Capitán Najera Hogar Temporal CENTRO Mestizo Macho 2 años 07/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

78 Abby Capitán Najera Hogar Temporal CENTRO Mestizo Hembra 2 años 07/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

79 Preciosa Capitán Najera Hogar Temporal CENTRO Mestizo Hembra 6 años 07/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

80 Sasha Capitán Najera Hogar Temporal CENTRO Mestizo Hembra 2 años 07/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

81 Pandillero Capitán Najera Hogar Temporal CENTRO Mestizo Macho 8 años 07/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

82 Oso Capitán Najera Hogar Temporal CENTRO Mestizo Macho 5 años 07/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

83 Muñeca Capitán Najera Hogar Temporal CENTRO Mestizo Hembra 4 años 07/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

84 Pirata Capitán Najera Hogar Temporal CENTRO Mestizo Macho 2 años 07/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

85 Hana Parque Chile Hogar Temporal CENTRO Mestizo Hembra 8 años 07/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

86 Misty GIVA NORTE Mestizo Hembra 3 años 09/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

87 Tifón GIVA NORTE Mestizo Macho 10 años 09/07/2016 Positivo Negativo Positivo Negativo

88 Sofy GIVA NORTE Mestizo Hembra 2 años 09/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

89 Scobby GIVA NORTE Mestizo Macho 5 años 09/07/2016 Positivo Negativo Positivo Negativo

90 Blanca GIVA NORTE Mestizo Hembra 1 año 09/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

91 Choco GIVA NORTE Mestizo Hembra 2 años 09/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

92 Pata Pata GIVA NORTE Mestizo Macho 4 años 09/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

93 Pelusa GIVA NORTE Mestizo Hembra 7 años 09/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

94 Negra GIVA NORTE Mestizo Hembra 2 años 09/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

95 Cucky GIVA NORTE Mestizo Hembra 10 años 09/07/2016 Positivo Negativo Positivo Negativo

96 Victoria GIVA NORTE Mestizo Hembra 10 años 09/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

97 Blanca 2 GIVA NORTE Mestizo Hembra 10 años 09/07/2016 Positivo Positivo Negativo Negativo

98 Negra 2 GIVA NORTE Mestizo Hembra 7 meses 09/07/2016 Negativo Negativo Negativo Negativo

99 Mona GIVA NORTE Mestizo Hembra 3 años 09/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo

100 Maximiliano GIVA NORTE Mestizo Macho 5 años 09/07/2016 Positivo Negativo Negativo Negativo


Elaboración: El Autor

42

ANEXO 2

HOJA DE ENCUESTA



PROYECTO SEMILLA

IDENTIFICACIÓN DE ENFERMEDADES HEMATOZOÁRICAS EN

CANINOS CALLEJEROS DE LA CIUDAD DE GUAYAQUIL

HOJA DE ENCUESTA

FECHA…………………………………

DATOS DEL PACIENTE

NUMERO DE ANIMAL………………

NOMBRE……………………………………………………………….………

….

SECTOR O SITIO DEL

MUESTREO…………………………………………..

RAZA…………………………………………………………………………

……

SEXO…………………………………………………………………………

……

EDAD…………………………………………………………………………

……

EXAMEN CLÍNICO

MUCOSAS……………………………. DESHIDRATACIÓN………

TLLC…………….. T R……………….

FC………………... FR………………..

CAMPOS PULMONARES D…………….…… I…………………….

LESIONES EVIDENTES EN EL ANIMAL SI………… NO…………

RESULTADOS OBTENIDOS

- EHRLICHIOSIS POSITIVO……….. NEGATIVO………..

- ANAPLASMOSIS POSITIVO……….. NEGATIVO………..

- DIROFILARIASIS POSITIVO……….. NEGATIVO………..

- BORRELIOSIS POSITIVO……….. NEGATIVO………..

43

ANEXO 3

HOJAS DE ENCUESTA REALIZADAS DURANTE LA

INVESTIGACIÓN

Fuente: El Autor.

Fuente: El Autor.

ANEXO 3

44

MAPA ESQUEMÁTICO DE GUAYAQUIL

Ministerio de Transporte y Obras Públicas. (2011). Mapa.

Recuperado de: http://www.zonu.com/fullsize/2011-11-03-

14795/Plano-de-Guayaquil.html

ANEXO 4

TRANSPORTE DE MATERIALES

Fuente: El Autor.

ANEXO 5

45

REFUGIO RESCATE ANIMAL/URRA

Fuente: El Autor.

ANEXO 6

REFUGIO AMIGOS CON COLA

Fuente: El Autor.

46

ANEXO 7

HOGAR TEMPORAL GRUPO GIVA

Fuente: El Autor.

ANEXO 8

HOGAR TEMPORAL UBICADO EN SECTOR CAPITÁN

NAJERA

Fuente: El Autor.

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