CHAMADA PÚBLICA CURSOS DE VERÃO 2017 - fiocruz.br · Ênfase em aulas práticas visando dar noções básicas de laboratório referentes aos temas a ... 1. A célula em ... Citometria

CHAMADA PÚBLICA – CURSOS DE VERÃO 2017

Cursos teóricos ou teórico-práticos (duração: uma ou duas semanas) sobre assuntos

relevantes da área de pesquisa em saúde no Brasil, sobretudo na Fundação Oswaldo Cruz.

Ênfase em aulas práticas visando dar noções básicas de laboratório referentes aos temas a

serem abordados nos cursos.

Objetivo geral: Apresentar as metodologias utilizadas na pesquisa básica, conceituando e

contextualizando os diferentes assuntos à sua importância para a saúde no Brasil.

Período: 30/01/17 a 10/02/17 (a depender da data e duração do curso de escolha).

Público-alvo: alunos de graduação. Variável para cada curso.

Número de vagas: variável para cada curso.

Pré-requisitos: variável para cada curso.

Os cursos:

1. A célula em movimento: as faces do citoesqueleto

2. Biologia molecular forense

3. Citometria de Fluxo: Fundamentos e aplicações na pesquisa cientifica.

4. Cultivo de células de mamíferos: técnicas e aplicações na pesquisa científica

5. Dengue, zika e chikungunya: perfil e diagnóstico das principais arboviroses de

importância médica

6. Ecologia das doenças transmitidas por vetores: espacialização, técnicas de captura e

identificação

7. Ensaios pré-clínicos na busca de novos candidatos a fármacos contra doença de

chagas e leishmanioses

8. Estudos de helmintos parasitos de pequenos mamíferos

9. Novas alternativas para a redução da transmissão de patógenos por insetos vetores

10. Tópicos de ensino por investigação

As vagas serão preenchidas mediante a análise de currículo e carta de interesse.

Cursos teóricos ou teórico-práticos: Os cursos poderão ser teóricos ou teórico-práticos.

Seguindo os critérios de seleção, os candidatos mais bem colocados serão qualificados para os

cursos teórico-práticos.

Todos os cursos serão realizados na cidade do Rio de Janeiro, sendo de

responsabilidade do candidato custos de hospedagem, transporte e alimentação.

Certificação: Só receberão o certificado os alunos que apresentarem 80% de freqüência nas

aulas e conceito mínimo exigido em cada curso na avaliação.

Inscrições: 05/12/16 - Abertura às 9h e fechamento às 17h do mesmo dia. Os candidatos

deverão preencher devidamente o formulário eletrônico, devendo todos os campos ser

preenchidos. A carta de interesse e o currículo deverão ser inseridos nos respectivos campos,

não sendo anexados.

Após a seleção e divulgação do resultado final, os candidatos selecionados receberão através

de mensagem eletrônica confirmação de inscrição e link do boleto para pagamento da taxa,

sendo a vaga homologada apenas após o envio dos documentos solicitados também por

correio eletrônico.

Valor da inscrição: R$ 50,00 (reais)

O pagamento da inscrição somente deverá ser efetuado após a confirmação da

inscrição.

Em caso de desistência da vaga, o inscrito deverá justificar a secretaria acadêmica por

email [email protected] até 24 horas antes do início do curso. A ausência de

justificativa implicará no bloqueio de inscrição em futuras edições dos cursos de férias

do IOC.

Não haverá diferença no valor de inscrição entre as duas modalidades de cursos. Caso o

aluno não tenha 80% de presença, o certificado não será emitido e não será devolvida a

taxa de inscrição.

Seleção: 05/12/16 a 09/12/16 – Análise das cartas de interesse e currículos.

Resultado final: 09/12/16 – Resultado final será divulgado com a colocação de todos os

candidatos (www.ioc.fiocruz.br), sendo encaminhado também individualmente aos

selecionados.

http://cursodeferias.ioc.fiocruz.br/formulario.php

mailto:[email protected]

Envio da documentação: Para finalizar a inscrição após recebimento da confirmação, os

selecionados deverão enviar no período de 09/12/16 a 19/12/16, por email

[email protected] os seguintes documentos:

- formulário devidamente assinado;

- cópia da identidade;

- cópia do CPF

- cópia autenticada da declaração ou comprovante de matrícula;

- cópia autenticada do histórico escolar;

- boleto bancário de pagamento da taxa de inscrição.

O não envio da documentação no prazo determinado implicará automaticamente na

suspensão da inscrição, e o próximo classificado será convocado para completar as

vagas.

CALENDÁRIO

Inscrições 05/12/2016 – 9h às 17h

Seleção 05/12/16 a 09/12/16

Resultado final 09/12/16

Envio de confirmação 09/12/16 a 19/12/16

Informações:

Fundação Oswaldo Cruz – Instituto Oswaldo Cruz

Secretaria Acadêmica de Ensino do Instituto Oswaldo Cruz

[email protected]

Av. Brasil, 4365 – Pavilhão Arthur Neiva – Térreo

CEP 21040-900 – Manguinhos – Rio de Janeiro / RJ

Telefones: 2562-1201

Ementa dos Cursos:



1. A CÉLULA EM MOVIMENTO: AS FACES DO CITOESQUELETO

Coordenadora:

Dra. Helene Santos Barbosa – [email protected]

Professores:

Amanda Resende Tucci - [email protected]

Camilla Rodrigues de Almeida Ribeiro - [email protected]

Gabrielle Barcellos Bezerra - [email protected]

Mariana Coimbra Garcia - [email protected]

Natassia Silva de Araújo - [email protected]

Samuel Iwao Maia Horita - [email protected]

Tatiana Araújo Silva – [email protected]

Ementa:

Aulas teóricas:

Citoesqueleto: origem e principais funções. Morfologia e dinâmica: microtúbulos, filamentos de actina e

intermediários. Participação do citoesqueleto nos processos celulares como endocitose, motilidade, divisão celular

e na interação patógeno-célula hospedeira. Noções de biossegurança e boas práticas de laboratório. Métodos e

técnicas aplicados ao estudo do citoesqueleto.

Aulas práticas:

Desenvolvimento do pensamento científico frente a desafios experimentais empregando técnicas e metodologias

para revelação e dinâmica do citoesqueleto.

Período: 30/01 a 08/02/2017

Carga horária: 72 horas

Público-alvo: Alunos de graduação da área de saúde

Pré-requisito: Sem pré-requisitos

Número de vagas: 15

Critérios de avaliação: Apresentação de seminários e discussão dos resultados obtidos nos ensaios

experimentais propostos

Cronograma:

Dia Horário Local Aula Responsável

30/01/2017 9:00 - 11:00 Auditório Emmanuel Dias

Pav. Arthur Neiva Abertura dos cursos de verão IOC 2017 Coordenação

30/01/2017 11:00 - 12:30 Auditório Pav. Carlos Chagas Noções básicas de biossegurança e boas práticas

de laboratório

Camilla Ribeiro

30/01/2017 14:00 -17:00 Auditório Pav. Carlos Chagas Origem e aspectos morfológicos do citoesqueleto –

parte I Amanda Tucci e Tatiana Silva

31/01/2017 9:00 - 12:00 Auditório Pav. Carlos Chagas Origem e aspectos morfológicos do citoesqueleto –

parte II Amanda Tucci e Tatiana Silva

31/01/2017 14:00 -17:00 Auditório Pav. Carlos Chagas Endocitose Camilla Ribeiro e Mariana

Garcia

01/02/2017 9:00 - 12:00 Auditório Pav. Carlos Chagas Motilidade e divisão celular Gabrielle Bezerra e Natassia

Araújo

01/02/2017 13:30 - 17:00 Lab. de Biologia Estrutural Pav. Carlos

Chagas Aula prática (Projetos 1, 2 e 3) Todos

02/02/2017 9:00 - 12:00 Auditório Pav. Carlos Chagas Interação com patógenos Gabrielle Bezerra e Samuel

Horita

02/02/2017 13:30 – 17:00 Lab. de Biologia Estrutural Pav. Carlos


03/02/2017 9:00 - 12:00 Auditório Pav. Carlos Chagas Métodos para o estudo do citoesqueleto – parte I Natassia Araújo e Samuel Horita

03/02/2017 13:30 - 17:00 Lab. de Biologia Estrutural Pav. Carlos


06/02/2017 9:00 - 12:00 Auditório Pav. Carlos Chagas Métodos para o estudo do citoesqueleto – parte II Mariana Garcia

06/02/2017 9:00 - 12:00 Plataforma de Microscopia Eletrônica

Pav. Carlos Chagas Aula prática: MET Helene Barbosa

07/02/2017 - Auditório Pav. Carlos Chagas Preparação dos seminários -

08/02/2017 13:00 – 17:00 Auditório Pav. Carlos Chagas Apresentação dos seminários Todos

2. BIOLOGIA MOLECULAR FORENSE

Coordenadores:

Otacilio Moreira (Ex-Perito Criminal) - [email protected]

Aline dos Santos Moreira – [email protected]

Professores:

Natália Lins da Silva Gomes – [email protected]

Priscila Silva Grijó Farani – [email protected]

Roberto Ferreira – [email protected]

Paula Finamore Araujo – [email protected]

Hanna Silva Condelo – [email protected]

Ementa: Introdução à Biologia Molecular Forense e à atividade pericial. Fundamentos de biologia molecular:

estrutura e propriedades dos ácidos nucléicos, replicação do DNA, transcrição e tradução. Coleta, preparação de

amostras e extração de ácidos nucléicos. Marcadores e técnicas moleculares utilizados na área forense:

hibridização de ácidos nucleicos (RFLP, alelos VNTR), a reação em cadeia da polimerase e suas variações

(multiplex, nested, semi-nested, RT-PCR, RAPD, AFLP, alelos STR), eletroforese de DNA, PCR em Tempo Real,

sequenciamento de DNA. Softwares e análises estatísticas aplicadas à genotipagem. Aulas práticas envolvendo

simulação de local de crime contra a vida, extração de ácidos nucléicos e técnicas moleculares para a

identificação de suspeitos.

Período: 06/01/2017 a 10/02/2017

Carga horária: 40 horas.

Público-alvo: Alunos de cursos de graduação na área de saúde ou biotecnológica.

Pré-requisito: Já ter cursado a disciplina de Bioquímica, Biologia Molecular e/ou Genética.

Número de vagas:

Teórico-prático: 18

Critérios de avaliação: Avaliação por escrito sobre o conteúdo teórico e prático do curso.

Cronograma:

Data Horário Local Tema Responsável

06/01 9:00 - 10:30 Auditório Emmanuel Dias

Pav. Arthur Neiva Apresentação do curso Coordenação

06/01 11:00 - 12:00 Sala 1B Pav. Arthur Neiva Biologia Molecular Forense e Atividade Pericial Otacilio Moreira

06/01 13:00 – 15:00 Sala 1B Pav. Arthur Neiva Fundamentos de biologia molecular. Coleta, preparação de

amostras e extração de ácidos nucléicos. Natália Lins

06/01 15:00 – 17:00 Sala 1B Pav. Arthur Neiva Aula prática: Coleta de amostras Todos

07/01 09:00 – 10:00 Sala 1B Pav. Arthur Neiva Marcadores e técnicas moleculares utilizados na área forense (Aula

I) Priscila Farani

07/01 10:00 – 12:00 Sala 1B Pav. Arthur Neiva Marcadores e técnicas moleculares utilizados na área forense (Aula

II) Paula Finamore

07/01 13:00 – 17:00 Sala 1B Pav. Arthur Neiva Aula prática: Extração de ácidos nucleicos Todos

08/01 09:00 – 12:00 Sala 1B Pav. Arthur Neiva Aula prática: Análise de alelos VTNR e STR por PCR Todos

08/01 13:00 – 17:00 Laboratório de Biologia Molecular e Doenças

Endêmicas Pav. Leônidas Deane Aula prática: quantificação de DNA, identificação humana e de

gênero por PCR em tempo real Todos

09/01 09:00 – 10:00 Sala 1B

Pav. Arthur Neiva Sequenciamento de DNA e Genotipagem Humana Roberto Ferreira

09/01 10:00 – 12:00 Sala 1B

Pav. Arthur Neiva Softwares e análises estatísticas aplicadas à genotipagem. Hanna Condelo

09/01 13:00 – 17:00 Pavilhão Leônidas Deane Aula prática: Sequenciamento de DNA e genotipagem humana Todos

10/01

09:00 – 12:00 Sala 1B

Pav. Arthur Neiva Análise e discussão dos resultados Todos

13:00 – 17:00 Sala 1B

Pav. Arthur Neiva Avaliação Todos








3. Citometria de Fluxo: Fundamentos e aplicações na pesquisa cientifica.

Coordenador:

Dr. Alvaro Luiz Bertho – [email protected]

Professores:

Clarissa Ferreira Cunha - [email protected]

Jessica Ribeiro de Lima – [email protected]

Thaize Quiroga – [email protected]

Alessandro Marins – [email protected]

Ementa:

Este curso aborda fundamentos e aplicações da citometria de fluxo com enfoque na avaliação fenotípica e funcional de células que participam na resposta imune em doenças infecto-parasitárias. Serão considerados conceitos sobre os princípios da citometria de fluxo com uma abordagem de fundamentos físicos do citômetro de fluxo; análise de dados por programas especializados; conceitos básicos de imunologia. Serão discutidas, as aplicações potenciais desta técnica com ênfase na identificação de populações celulares e do perfil funcional associado à ativação, proliferação e papel das células envolvidas na resposta imune relacionadas à doenças infecto-parasitários, como AIDS, leishmanioses e Doença de Chagas. O curso terá caráter teórico e prático com avaliação através de seminários.

Carga horária: 40 horas. Vagas: 12 alunos Público-alvo: alunos de graduação da área de saúde. Pré-requisito: ter cursado a disciplina de imunologia básica. Critérios de seleção: carta de interesse. CRONOGRAMA


06/02/2017 9 – 11h Módulo Expansão sala 3

(Pav. Artur Neiva) Princípios básicos da citometria

de fluxo Alessandro

Clarissa

06/02/2017 14 - 17h Módulo Expansão sala 3

(Pav. Artur Neiva ) Aplicações gerais da citometria

de fluxo Jessica Thaize


(Pav. Artur Neiva) Análise de dados

Alessandro Clarissa


(Pav. Artur Neiva) Imunofenotipagem por citometria

de fluxo Jéssica Thaize


(Pav. Artur Neiva) CMF na resposta imune a

patógenos Jessica/ Clarissa

Alessandro/ Thaíze

08/02/2017 14 - 17h Plataforma Citometria de Fluxo Pav. 26; sl 408-A

Aula prática – Imunofenotipagem por CMF

Clarissa / Jessica Thaíze/ Alessandro

09/02/2017 08 - 12h Módulo Expansão

(Pav. Artur Neiva) Sala de computadores -2

Análise de dados – Summit/Kaluza/FloJo

Clarissa /Jessica Thaize /Alessandro

09/02/2017 13 - 17h Módulo Expansão (Pav.

Artur Neiva) Sala de computadores-2

Análise de dados – Summit/Kaluza/FloJo

Clarissa /Jessica Thaize/ Alessandro

10/02/2017 09 - 17h Módulo Expansão (Pav.

Artur Neiva) Seminários

Clarissa/ Jessica Thaize /Alessandro

Alvaro

Critérios de avaliação: Presença nas aulas e apresentação de seminário

4. CULTIVO DE CÉLULAS DE MAMÍFEROS: TÉCNICAS E APLICAÇÕES NA PESQUISA CIENTÍFICA

Coordenadores:

Flávio Alves Lara – [email protected]

Bruno Mietto - [email protected]

Professores:

Amanda de Oliveira Lopes – [email protected]

Camila Sanches Oliveira Gomes – [email protected]

Karina Girardi do Carmo de Vasconcelos – [email protected]

Katherine Kelda Gomes de Castro – [email protected]

Lidiane Santos Menezes Souza – [email protected]

Sabrina Alves dos Reis – [email protected]

Ementa: Conhecimentos gerais sobre cultura de células de mamíferos; Procedimentos e materiais aplicados no

cultivo de células; Biossegurança e boas praticas no cultivo celular; Aplicações em terapia celular, diagnóstico e

produção de imunobiológicos; Técnicas de trabalho em condições assépticas; Obtenção e cultivo de cultura

primária de neurônios a partir de camundongos recém-natos; Cultivo, subcultivo e congelamento de células de

Schwann e macrófagos; Vídeomicroscopia de células.

Período: 30/01 a 03/02/2016


Público-alvo: Alunos de graduação da área de saúde.

Pré-requisito: conhecimento básico em biologia celular (descrever na carta de interesse).

Número de vagas: Teórico-prático: 10

Critérios de avaliação: Relatório individual das aulas práticas e avaliação em grupo sobre os temas abordados.

Cronograma:



Pav. Arthur Neiva Apresentação do curso Rubem Menna-Barreto

30/01/17 11:00 - 12:00 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Apresentação do grupo e ementa Todos

30/01/17 13:00 – 14:00 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Cultura de Células – Introdução Karina Girardi

30/01/17 14:00 – 15:20 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Biologia Celular: Ciclo e fases do Crescimento Celular Katherine Kelda/ Amanda Lopes

30/01/17 15:40 – 17:00 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Biologia Celular: Nutrição e Morte Celular Camila Sanches / Karina Girardi

31/01/17 9:00 – 9:40 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Boas Práticas e Biossegurança no Cultivo Celular Sabrina Alves/ Lidiane Santos

31/01/17 9:40 – 11:00 Sala 27 Pavilhão

Hanseníase Prática 1: Esterilização e Preparo de Material para Cultivo

Sabrina Alves /Karina Girardi/ Lidiane Santos

31/01/17 11:10 – 12:00 Sala 27 Pavilhão

Hanseníase Prática 2: Avaliação de Contaminação no Ambiente

Amanda Lopes/ Camila Sanches Katherine Kelda

31/01/17 13:00 – 17:00 Sala 27 Pavilhão

Hanseníase Prática: Cultura Primária de Neurônios Sensitivos

Bruno Mietto/ Tiago Gomes Karina Girardi/ Sabrina Alves

01/02/17 9:00 – 10:00 Sala 27 Pavilhão

Hanseníase

Prática 1: Visualização da Cultura de Neurônios Bruno Mietto /Tiago Gomes

Karina Girardi / Sabrina Alves

Prática 2: Visualização Avaliação de Contaminação no Ambiente Amanda Lopes/ Camila Sanches Katherine Kelda /Lidiane Santos

01/02/17 10:20 – 12:00 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Técnicas de Obtenção e Cultivo Celular Amanda Lopes Sabrina Alves

01/02/17 13:00 – 17:00 Sala 22 Pavilhão

Hanseníase Prática: Visualização e Subcultivo de Cultura de Linhagem – Passagem de Garrafa (Células de Schwann e Macrófagos)

Todos

02/02/17 9:00 – 10:40 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Aplicações do Cultivo Celular – Diagnóstico Clínico e Terapia

Celular Amanda Lopes / Camila Sanches

02/02/17 11:00 – 12:00 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Aplicações do Cultivo Celular - Produção de Imunobiológicos Katherine Kelda/ Lidiane Santos

02/02/17 13:00 – 17:00 Sala 22 Pavilhão

Hanseníase Prática: Contagem e Plaqueamento das Células Todos

03/02/17 9:00 – 12:00 Sala 3 Pavilhão Hanseníase Prática: Videomicroscopia de Culturas Vivas Todos

03/02/17 13:00 – 15:00 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Discussão do Resultados da Videomicroscopia e dos Relatórios Todos

03/02/17 15:20 – 16:30 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Avaliação Todos

03/02/17 16:30 – 17:00 Sala 2 Pavilhão Hanseníase Fechamento do Curso Todos


5. DENGUE, ZIKA E CHIKUNGUNYA: PERFIL E DIAGNÓSTICO DAS PRINCIPAIS ARBOVIROSES DE

IMPORTÂNCIA MÉDICA

Coordenadoras:

Dra. Flavia Barreto dos Santos ([email protected])

Dra. Monique da Rocha Queiroz Lima ([email protected])

Professores:

Fernanda de Bruycker Nogueira ([email protected])

Fernanda de Oliveira Bottino ([email protected])

Jéssica Badolato Correa da Silva ([email protected])

Luciana Santos Barbosa ([email protected])

Manoela Heringer ([email protected])

Thaís Chouin Carneiro ([email protected])

Thiara Manuelle Alves de Souza ([email protected])

Ementa: Apresentar as principais arboviroses de importância médica no Brasil, envolvidas no cenário

epidemiológico atual (Dengue, Zika e Chikungunya), abordando as características gerais, epidemiológicas e as

técnicas de diagnóstico preconizadas pelo Ministério da Saúde.

Período: 30/01 a 03/02/2017


Público-alvo: Alunos de graduação das áreas das ciências biológicas e saúde.

Pré-requisito: Relatar na carta de interesse se o aluno possui noções básicas de virologia.

Número de vagas: Teórico-prático: 10

Critérios de avaliação: Debate diário dos temas abordados em aula.

Cronograma:


30/01/17 Segunda

9:00 – 10:30 Auditório Emmanuel Dias


11:00 – 12:00 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Apresentação do nosso grupo e noções básicas de biossegurança Todos

14h – 15:30 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Conceitos básicos em virologia e aspectos gerais dos arbovírus Fernanda Nogueira

15:30 – 17:00 Laboratório de Imunologia Viral Pav.

Helio e Peggy Pereira Prática Visita ao laboratório Todos

31/01/17 Terça

9:00 – 10:30 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Dengue: Características gerais e aspectos epidemiológicos Manoela Heringer

10:30 – 12:00 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Zika: Características gerais e aspectos epidemiológicos Thaís Chouin

14:00 – 15:30 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Chikungunya: Características gerais e aspectos epidemiológicos Thiara Manuelle de

Souza

15:30 – 17:00 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Diagnóstico Laboratorial: quais espécimes clínicos são utilizados e

quais técnicas são realizadas? Fernanda Nogueira

01/02/17 Quarta

09:00 – 10:30 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Isolamento viral/ Imunofluorescência Indireta (IFI) Fernanda Nogueira

10:30 - 12:00 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Métodos sorológicos Manoela Heringer

13:30 - 14:30 Salas C106/C107 Pav. Helio e Peggy

Pereira Prática Grupo I – Isolamento Viral (cultura celular e inoculação) Grupo

II - Sorologia Todos

14:30 - 15:30 Salas C106/C107 Pav. Helio e Peggy

Pereira Prática Grupo I – Sorologia

Grupo II - Isolamento Viral (cultura celular e inoculação) Todos

15:30 – 17:00

Salas C106/C107 Pav. Helio e Peggy Pereira

Prática Grupo I e II – IFI Todos

02/02/17 Quinta

09:00 – 10:30 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Imunopatogenia: Dengue e Zika Luciana Santos

10:30 - 12:00 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Imunopatogenia: Chikungunya Jessica Badolato

14:00 - 15:30

Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Vetores envolvidos na transmissão das arboviroses Thaís Chouin

15:30 – 17:00 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Primatas não-humanos como modelos experimentais para o estudo

das arboviroses Fernanda Bottino

03/02/17 Sexta

09:00 – 10:30 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira PCR e PCR em tempo real Thiara Manuelle de

Souza

11:00 – 12:30 Salas C106/C107 Pav. Helio e Peggy

Pereira Prática Grupo I - PCR

Grupo II - PCR em tempo real Todos

14:00 – 15:30 Salas C106/C107 Pav. Helio e Peggy

Pereira

Prática Grupo I - PCR em tempo real

Grupo II - PCR Todos

15:30 – 17:00 Sala 14B Pav. Helio e Peggy Pereira Análise dos resultados das práticas Todos

6. ECOLOGIA DAS DOENÇAS TRANSMITIDAS POR VETORES: ESPACIALIZAÇÃO, TÉCNICAS DE

CAPTURA E IDENTIFICAÇÃO

Coordenadores: Dr. Reginaldo Brazil e Dr. Paulo Peiter

Duração do curso: 30/01 a 09/02/2017

Carga horária: 72 horas

Professores:

Alice Ricardo Silva ([email protected])

Amanda Coutinho de Souza ([email protected])

Andressa Alencastre Fuzari Rodrigues ([email protected])

Daniel Cardoso Portela Câmara ([email protected])

José Joaquín Carvajal Cortés ([email protected])

Vanessa de Araújo Barbosa ([email protected])

Vivian Franco ([email protected])

Ementa: Este curso tem como objetivo oferecer ao aluno noções de determinantes ecológicos, espaciais e

socioambientais na dinâmica das doenças transmitidas por vetores (doença de Chagas, leishmanioses,

malária, dengue). O curso será dividido em dois módulos: o primeiro módulo consiste no estudo da dinâmica

das doenças transmitidas por vetores citadas acima (noções básicas de biossegurança em trabalho de campo,

ciclos de transmissão, identificação dos principais vetores, controle e vigilância e metodologia de campo). O

segundo módulo apresentará os principais conceitos sobre geografia da saúde, território, espaço geográfico,

determinantes socioambientais, risco e perigo de agentes infecciosos, ecologia das doenças infecciosas.

Vagas: 15

Público alvo: Alunos da área da saúde e afins, e geografia.

Avaliação: entrega dos estudos dirigidos e um bom desempenho nas discussões. Cronograma:

Dia Aula Tema Responsável

Dia 30/01/2017

9:00 – 11:00 Auditório Emmanuel Dias

Pav. Arthur Neiva Abertura oficial do Curso de Verão Coordenação

11:00 – 12:00 Sala 1 Módulo de Expansão

Pav. Arthur Neiva Logística do curso, entrega de material, entrega do

estudo dirigido Todos

12:00 -13:30 Almoço

13:30 - 15:30 Sala 1 Módulo de Expansão

Pav. Arthur Neiva Risco e perigo de agentes infecciosos Andressa

15:30 – 15:45 Intervalo


Pav. Arthur Neiva Biossegurança no trabalho de campo Andressa

Dia 31/02/2017


Pav. Arthur Neiva Ecoepidemiologia da doença de Chagas. Amanda e Alice

12:00 – 13:30 Almoço

13:30 - 17:00

Sala 10 Pav. Arthur Neiva

Observação dos cenários da dinâmica de transmissão do Trypanosoma cruzi.

Identificação de triatomíneos (principais gêneros) e métodos de capturas.

Amanda e Alice (sala 10)

Dia 01/02/2017

9:00 – 10:30

Sala 1 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva

Leishmanioses, efeito do desmatamento e ocupação de espaço

Andressa e Vanessa

12:00 – 13:30 Almoço

13:30 - 17:00

Sala 9 Pav. Arthur Neiva Flebotomíneos: Observação de caracteres para

identificação; Demonstração de captura (Instalação de armadilhas)

Andressa e Vanessa

Dia 02/02/2017


Pav. Arthur Neiva Dinâmica de transmissão da Malária no Brasil Vivian

12:00 – 13:30 Almoço

13:30 - 17:00 Sala 1 Módulo de Expansão Dinâmica ecoepidemiológica do dengue no Brasil Joaquim e








Pav. Arthur Neiva Daniel

Dia 03/02/2017

9:00 – 12:00 Sala 9 Pav. Arthur Neiva Taxonomia dos principais vetores da malária e

dengue. Vivian e Daniel

12:00 – 13:30 Almoço

13:30 - 17:00 Sala 9 Pav. Arthur Neiva Implementação do Sistema de Monitoramento dos

vetores do dengue: campus Fiocruz Todos

Dia 06/02/2017


Pav. Arthur Neiva Geografia da saúde (conceitos)

Jose Joaquim Carvajal

10:30 – 10:45 Intervalo

10:45 -12:00 Sala 1 Módulo de Expansão

Pav. Arthur Neiva Território e Espaço geográfico aplicado a saúde


12:00 – 13:30 Almoço

13:30 - 15:30 Sala 1 Módulo de Expansão

Pav. Arthur Neiva Determinantes socioambientais da saúde


15:30 – 15:45 Intervalo

15:45 – 17:00 Discussão do estudo dirigido Todos

Dia 07/02/2017


Pav. Arthur Neiva Ecologia de doenças infecciosas e parasitárias Daniel

10:15 – 10:30 Intervalo

10:30 – 12:00 Sala 9 Pav. Arthur Neiva Métodos de coleta de insetos vetores: uso de

armadilhas e GPS Todos

12:00 – 13:00 Almoço

13:00 – 17:00 Sala 9 Pav. Arthur Neiva Métodos de coleta de insetos vetores: uso de

armadilhas e GPS Todos

Dia 08/02/2017

9:00 – 10:00 Sala 9 Pav. Arthur Neiva Métodos de coleta de insetos vetores: recolhimento de

armadilhas Todos


Pav. Arthur Neiva Prática em Sistemas de Informação Geográfica

(Sala de Informática) José Joaquim

12:00 – 13:00 Almoço


Pav. Arthur Neiva Prática em Sistemas de Informação Geográfica

(Sala de Informática) Todos

Dia 09/02/2017


Pav. Arthur Neiva Avaliação Todos

13:00 – 17:00 Sala 1

Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva

Encerramento Todos

7. ENSAIOS PRÉ-CLÍNICOS NA BUSCA DE NOVOS CANDIDATOS A FÁRMACOS CONTRA DOENÇA DE

CHAGAS E LEISHMANIOSES

Coordenadores:

Dra. Tânia Zaverucha do Valle – [email protected]

Dra. Flávia de Oliveira Cardoso – [email protected]

Professores:

Carolina Salles Domingues – [email protected]

Sandy Santos Pereira – [email protected]

Yasmin Silva Rizk– [email protected]

Ementa: Importância dos ensaios pré-clínicos na busca de novos candidatos a fármacos; noções de cultura de

células; aspectos da doença de Chagas e leishmanioses; noções básicas de biossegurança e microscopia de luz;

preparo e diluição de soluções; avaliação das atividades citotóxica, tripanocida e leishmanicida in vitro de

fármacos; ensaios colorimétricos (MTT e dosagem de óxido nítrico).

Período: 06/02 a 10/02/2017


Público-alvo: Alunos de graduação na área de saúde.

Pré-requisito: A partir do 2º período.

Número de vagas:

Teórico-prático: 12

Critérios de avaliação: Análise e discussão dos resultados obtidos nas aulas práticas.

Cronograma:



Pav. Arthur Neiva Apresentação do curso Rubem Menna Barreto

06/02/17 11:00 - 11:30 Sala 29 Pav. 108 Apresentação do curso Todos

06/02/17 11:30 - 12:00 Sala 29 Pav. 108 Teórica - Noções básicas de biossegurança Sandy Pereira

06/02/17 13:00 – 14:50 Sala 29 Pav. 108 Teórica – Noções de cultura de células Carolina Salles

06/02/17 15:10 – 17:00 Lab. Imunomodulação e Protozoologia

Pav. 108, sala 10 Prática - Plaqueamento

Carolina Salles Sandy Pereira Yasmin

Rizk


Pav. 108, sala 10 Prática – Infecção das células por T. cruzi e

Leishmania sp.


Rizk

07/02/17 11:00 – 13:00 Sala 29 Pav. 108 Teórica – Ensaios pré-clínicos Yasmin Rizk

07/02/17 14:00 – 15:20

Sala 29 Pav. 108 Teórica – Grupo 1: Preparo e diluição de

soluções Carolina Salles

Lab. Imunomodulação e Protozoologia Pav. 108, sala 10

Prática – Grupo 2: Tratamento Sandy Pereira Yasmin

Rizk

07/02/17 15:40 – 17:00

Sala 29 Pav. 108 Teórica – Grupo 2: Preparo e diluição de

soluções Carolina Salles

Lab. Imunomodulação e Protozoologia Pav. 108, sala 10

Prática – Grupo 1: Tratamento Sandy Pereira Yasmin

Rizk

08/02/17 9:00 – 10:20 Sala 29 Pav. 108 Teórica - As leishmanioses Sandy Pereira

08/02/17 10:40 – 12:00 Sala 29 Pav. 108 Teórica – doença de Chagas Carolina Salles

08/02/17 13:00 – 14:00 Sala 29 Pav. 108 Teórica – Fixação e coloração Yasmin Rizk


Pav. 108, sala 10 Prática – Fixação e Coloração

Carolina Salles

Sandy Pereira Yasmin Rizk

09/02/17 09:00 – 10:40 Sala 29 Pav. 108 Teórica – Métodos colorimétricos Yasmin Rizk


Pav. 108, sala 10 Prática – Ensaio de citotoxicidade (MTT)


Rizk

09/02/17 13:00 – 14:00 Sala 29 Pav. 108 Teórica – Óxido nítrico Sandy Pereira

09/02/17 14:00 - 15:00 Lab. Imunomodulação e Protozoologia

Pav. 108, sala 10 Prática: Leitura do ensaio de citotoxicidade


Rizk


Pav. 108, sala 10 Prática: Dosagem de nitrito

Carolina Salles, Sandy Pereira e Yasmin Rizk

10/02/17 09:00 – 09:30 Sala 9 Pav. Arthur Neiva Teórica: Noções de microscopia de luz Carolina Salles

10/02/17 09:30 – 12:00 Sala 9 Pav. Arthur Neiva Prática: Leitura das lâminas Carolina Salles


10/02/17 13:00 – 17:00 Sala 9 Pav. Arthur Neiva Avaliação do curso Carolina Salles


mailto:%[email protected]





8. ESTUDOS DE HELMINTOS PARASITOS DE PEQUENOS MAMÍFEROS

Coordenador:

Dr. Arnaldo Maldonado Júnior – [email protected]

Dr. Bernardo Rodrigues Teixeira – [email protected]

Docentes:

Ana Paula Nascimento Gomes – [email protected]

Beatriz Elise de Andrade Silva - [email protected]

Fernando de Oliveira Santos - [email protected]

Natália Alves Costa – [email protected]

Raquel Gonzalez Boullosa Malheiro de Castro – [email protected]

Sócrates da Costa Fraga Neto – [email protected]

Tainá Carneiro de Castro Monte – [email protected]

Thiago dos Santos Cardoso - [email protected]

Colaboradora para aulas práticas: Dra. Joyce Gonçalves Rosário de Souza - [email protected]

Ementa: Estudos teóricos e práticos com ênfase nos aspectos: ecológicos, taxonômicos, morfológicos e

parasitológicos de pequenos mamíferos hospedeiros e helmintos parasitos. Conceitos de biossegurança na coleta

de pequenos mamíferos e armazenamento de amostras. Análises espaciais aplicadas a estudos com pequenos

mamíferos. Conhecimento dos filos dos helmintos de importância médico-veterinário. Uso de helmintos

(trematódeos) como modelo experimental. Abordagem dos parâmetros parasitológicos e sua associação com a

distribuição e ocorrência dos helmintos.

Período: 30/01 a 03/02/2017


Público-alvo: alunos de graduação da área de saúde.

Pré-requisito: não se aplica


Critérios de avaliação: discussão de artigos com base nos temas que foram abordados em sala de aula.

Cronograma:


30/01/17

9:00 - 10:30 Auditório Emmanuel Dias


11:00 - 12:00 Sala 1A

Pav. Arthur Neiva

Apresentação do curso e interação docente/discente Todos os docentes

13:00 – 15:20 Captura de mamíferos, biossegurança, coleta e armazenamento de amostras

Sócrates Neto 15:40 – 17:00

31/01/17

9:00 – 10:20

Sala 1A Pav. Arthur Neiva

Identificação taxonômica de pequenos mamíferos Thiago Cardoso

10:40 – 12:00 Mapeamento e análises espaciais Fernando Oliveira

13:00 – 15:20 Prática de identificação de pequenos mamíferos – análise de peles

e esqueletos com base em chave de identificação

Bernardo Teixeira/ Sócrates Neto/ Fernando Oliveira/

Thiago Cardoso 15:40 – 17:00

01/02/17

9:00 - 10:20


Filo Platelminto - Classe Trematoda Tainá Monte

10:40 – 12:00 Filo Platelminto - Classe Cestoda Natália Costa / Raquel

Gonzalez

13:00 – 14:30 Ferramentas utilizadas para identificação das espécies de

helmintos: microscopia de luz, microscopia eletrônica de varredura e biologia molecular.

Ana Paula Gomes / Beatriz Elise / Tainá Monte

14:40 - 17:00 Prática Filo Platelminto - Protocolo de coloração (Carmin-clorídrico); recuperação de amostras; observação de fases larvais (Trematoda)

e de estruturas do Filo (lâminas).

Tainá Monte/ Natália Costa/ Raquel Gonzalez/ Joyce Souza

02/02/17

9:00 - 10:20


Filo Acantocephala Ana Paula Gomes/ Beatriz Elise 10:40 – 12:00 Filo Nematoda

13:00 – 15:20 Prática Filo Acantocephala e Filo Nematoda: Protocolo de coloração e clarificação; montagem de lâmina; observação das estruturas no

microscópio.

Ana Paula Gomes/ Beatriz Elise/ Joyce Souza 15:40 – 17:00

03/02/17

9:00 – 11:00


Tópicos em Ecologia Parasitária: Pequenos Mamíferos e Helmintos. Thiago Cardoso / Raquel Gonzalez / Natália Costa 11:00 – 12:00 Prática de cálculo dos parâmetros parasitológicos

13:00 – 15:20 Avaliação Todos os docentes

15:40 – 17:00

9. NOVAS ALTERNATIVAS PARA A REDUÇÃO DA TRANSMISSÃO DE PATÓGENOS POR INSETOS

VETORES

Coordenadores: Dra. Mariana Rocha David - [email protected] Dr. Márcio Pavan Galvão - [email protected]

Professores: Aline Loureiro - [email protected] André Torres - [email protected] Camila Pereira - [email protected] Gabriel Negreira - [email protected] Isabella Dias - [email protected] Kate Batista - [email protected] Maiara do Valle - [email protected] Martha Petersen - [email protected] Paula Figliuolo- [email protected] Rafee Urrahman - [email protected] Ramon Lopes - [email protected]

Ementa: Definição de inseto vetor. Aspectos da biologia e ecologia dos principais grupos de mosquitos, barbeiros

e flebotomíneos vetores de patógenos no Brasil. Controle vetorial. Evolução da resistência a inseticidas. Aplicação

da microbiota na redução da transmissão de patógenos: Wolbachia e paratransgênese. Controle genético: insetos

transgênicos. Alternativas ao uso de inseticidas neurotóxicos. Controle biológico.

Período: 31/01 a 04/02/2017


Público-alvo: Alunos de graduação da área de saúde.

Pré-requisito: não há.


Critérios de avaliação: Dinâmica baseada no artigo previamente disponibilizado:

McGraw EA and O’Neill SL (2013) Beyond insecticides: new thinking on an ancient problem. Nat Rev Microbiol

11:181–193.

Cronograma Data Horário Local Tema Responsável

30/01/2017 9:00 - 10:30 Auditório Emmanuel Dias Pav. Arthur Neiva Apresentação do curso Coordenação 30/01/2017 11:00 - 12:00 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Apresentação do grupo e intro a biossegurança Todos 30/01/2017 14:00 – 15:20 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva O que faz de um inseto um vetor? Ramon Lopes 30/01/2017 15:40 – 17:00 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Introdução a biologia e ecologia de triatomíneos vetores Maiara do Valle 31/02/2017 8:00 – 9:20 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Introdução a biologia e ecologia de mosquitos vetores Isabella Dias 31/02/2017 09:40 - 11:00 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Introdução a biologia e ecologia de flebotomíneos vetores Gabriel Negreira 31/02/2017 11:00 - 12:20 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Introdução ao controle de vetores* Rafi ur Rahman

31/02/2017 13:30 - 17:00 Sala 9 Pav. Arthur Neiva Observação da morfologia de insetos vetores e

identificação dos principais grupos de importância médica TODOS

01/02/2017 8:00 – 9:20 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Inseticidas químicos: mecanismos de ação Aline Loureiro

01/02/2017 09:40 - 11:00 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Porque precisamos de alternativas aos inseticidas

químicos? André Torres

01/02/2017 11:00 - 12:20 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Microbiota Kate Batista

01/02/2017 13:30 - 17:00 Sala 9 Pav. Arthur Neiva P: Dissecção de insetos e cultivo de bactérias da

microbiota intestinal TODOS

02/02/2017 8:00 – 9:20 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Aplicação de simbiontes no controle da transmissão -

Wolbachia Martha Petersen

02/02/2017 09:40 - 11:00 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Aplicação de simbiontes no controle da transmissão:

paratransgênese I Gabriel Negreira


paratransgênese II Kate Batista


paratransgênese III André Torres

02/02/2017 15:00 - 17:00 - Visita ao insetário do projeto Eliminar a Dengue Brasil TODOS 03/02/2017 8:00 – 9:20 Sala 4 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva Controle genético: insetos transgênicos Camila Pereira

03/02/2017 09:40 - 11:00 Sala 4 Módulo de Expansão

Pav. Arthur Neiva Uso do pyriproxyfen para reduzir populações de

mosquitos vetores Paula Figliuolo


Pav. Arthur Neiva Controle biológico: fungos entomopatogênicos Isabella Dias


Pav. Arthur Neiva Avaliação: "Convencendo os gestores de Resistolândia" TODOS

*Esta aula poderá ser ministrada em inglês com slides e material de apoio em português.

10. TÓPICOS DE ENSINO POR INVESTIGAÇÃO

Coordenadora:

Deise Miranda Vianna – [email protected] / [email protected]

Professores:

Eduardo Oliveira Ribeiro de Souza – [email protected]

Marco Adriano Dias - [email protected]

Período: 30/01 a 03/02/2017

Carga horária: 40h


Público-alvo: Alunos de licenciatura de curso de ciências: Física, Química e Biologia

Ementa: Com o objetivo de valorizar uma postura mais ativa dos alunos, este curso tem como proposta o ensino por investigação. Essa metodologia impulsiona a participação dos alunos e desenvolve a liberdade de pensar, discutir e construir seus conhecimentos, de forma que o aprender ciência faça sentido. Durante o curso, discutiremos o que é ensino por investigação, suas formas e características. Através de aulas práticas serão apresentados exemplos e materiais já desenvolvidos por professores de ciências. Os professores e colaboradores apresentaram materiais produzidos para os alunos vivenciarem, de forma prática, a proposta. O curso busca sensibilizar os futuros professores para uma mudança de postura e de seus futuros alunos, pois para que o ensino por investigação aconteça o professor deve sair da posição de transmissão do conhecimento para uma postura de mediador e guia, e as questões passam a ser os pontos de partida para construção do conhecimento científico. Muitos licenciandos não têm oportunidade de conhecer essa metodologia em seus cursos universitários, portanto é o objetivo deste curso divulgar e propagar essa metodologia para a pratica dos futuros docentes.

Pré-requisito: Não se aplica

Avaliação: A avaliação do curso será através da apresentação das atividades produzidas pelos alunos. Os alunos

deverão produzir atividades investigativas a partir do que foi discutido durante o curso. Além disso, faremos uma

avaliação do curso, os professores e os alunos se auto avaliarão.

Cronograma:


30/01/17 9:00-11:00 Auditório Emmanuel Dias Pav. Arthur Neiva

Abertura do Curso de Férias Coordenação

30/01/17 11:30-13:00 Sala 3 Módulo de Expansão Pav. Arthur Neiva

Apresentação do curso e do grupo de professores e

colaboradores Deise Miranda


Tópicos de ensino por investigação I

Marco Adriano


Argumentação na sala de aula e Enfoque CTS

Eduardo Oliveira


Apresentação dos vídeos “Física no Ensino Fundamental”

Marco Adriano e Eduardo Oliveira


Discussão sobre o TEXTO I Todos professores e

alunos


Práticas no ensino por investigação I

Eduardo Oliveira


Práticas no ensino por investigação II

Marco Adriano


Práticas no ensino por investigação III

Eduardo Oliveira


Práticas no ensino por investigação IV

Marco Adriano


Oficina de Quadrinhos Instigadores

Eduardo Oliveira


Apresentação dos trabalhos produzidos pelos alunos

Os alunos


Avaliação Todos

Rio de Janeiro, 24 de Outubro de 2016

Coordenação dos Cursos de Férias

Instituto Oswaldo Cruz/ FIOCRUZ

Documents

CHAMADA PÚBLICA CURSOS DE VERÃO 2017 - fiocruz.br · Ênfase em aulas práticas visando dar noções básicas de laboratório referentes aos temas a ... 1. A célula em ... Citometria