Embed Size (px)
Citation preview
UNIVERSIDADE FEDERAL DE MATO GROSSO FACULDADE DE ENGENHARIA FLORESTAL
DEPARTAMENTO DE ENGENHARIA FLORESTAL
RESISTÊNCIA BIOLÓGICA DA MADEIRA TRATADA E NÃO TRATADA
DE Corymbia citriodora
WESLLEY CANDIDO DE OLIVEIRA
CUIABÁ - MT
2018
WESLLEY CANDIDO DE OLIVEIRA
RESISTÊNCIA BIOLÓGICA DA MADEIRA TRATADA E NÃO TRATADA
DE Corymbia citriodora
Orientador: Prof. Dr. Aylson Costa Oliveira
Monografia apresentada à Disciplina de Trabalho de Curso do Departamento de Engenharia Florestal, Faculdade de Engenharia Florestal – Universidade Federal de Mato Grosso, como parte das exigências para obtenção do título de bacharel em Engenharia Florestla.
CUIABÁ-MT 2018
AGRADECIMENTOS
À minha mãe Rosicler Dias Gomes, mulher descendente das Amazonas da ilha paradisíaca Themyscira, antiga nação de mulheres guerreiras da mitologia grega. Mandada à Terra para propagar o amor incondicional pelos seus filhos, sendo a defensora da vida e da verdade. Possuindo habilidades super-humanas, serviu-me de escudo e inspiração durante minha caminhada até o atual momento. Aos meus orientadores Dr. Aylson Costa Oliveira e Dra. Bárbara Luísa Corradi Pereira por todo tempo dedicado mim, hora sendo professores, outra sendo amigos, pais e até mesmo psicólogos. Obrigado pela mão que sempre se estendeu quando eu precisei mesmo em momentos críticos, onde tudo parecia impossível. A humildade e cumplicidade de vocês foi um dos maiores aprendizados. À minha namorada Leonora Goes, por ser a minha dupla, meu co-piloto da estrada da vida, por me apoiar, dar conselhos, aulas, torcer, me motivar e ficar mais feliz que eu mesmo pelas minhas conquistas. Ao jiu-jitsu, arte marcial na qual eu aprendi que nada se conquista sem disciplina, força de vontade e dedicação. Aos meus irmãos que são quase de sangue, Hugo ali, Brunão, Indião, Nêne, Pedrão, Pepe, Pitta, Matuza, Romulo, Reiche e Zuzu. À Ana Carolina Silva Costa pela participação na banca avaliadora. Ao Laboratório de Tecnologia da Madeira – UFMT e demais envolvidos. À Faculdade de Engenharia Florestal da Universidade de Mato Grosso campus Cuiabá.
À todas as pessoas que de alguma forma, contribuíram para minha formação acadêmica e profissional. À Unidade de Tratamento de Madeira Santo André pelo fornecimento do material. Ao Laboratório de Engenharia de Alimentos, pelo fornecimento do equipamento de colorimetria.
SUMÁRIO Página
1. INTRODUÇÃO ................................................................................... 1
2. OBJETIVO...........................................................................................3
2.1. OBJETIVO GERAL ....................................................................... 3
2.1. OBJETIVOS ESPECÍFICOS ......................................................... 3
3. REVISÃO BIBLIOGRÁFICA .............................................................. 4
3.1. DURABILIDADE NATURAL DA MADEIRA .................................. 4
3.2. BIODETERIORAÇÃO DA MADEIRA ............................................ 5
3.3. FUNGOS XILÓFAGOS ................................................................. 7
3.4. INSETOS .................................................................................... 10
3.5. PRESERVAÇÃO DA MADEIRA ................................................. 11
3.6. COLORIMETRIA..........................................................................12
4. METODOLOGIA..................................................................................16 4.1. OBTENÇÃO DO MATERIAL ...................................................... 16
4.2. PREPARAÇÃO DOS CORPOS DE PROVA .............................. 16
4.3. INSTALAÇÃO DO EXPERIMENTO COM CUPINS .................... 16
4.4. FUNGOS XILÓFAGOS E CONDIÇÕES DE ENSAIO ............ Erro! Indicador não definido.
4.5. INSTALAÇÃO DO EXPERIMENTO COM FUNGOS .................. 18
4.6. AVALIAÇÃO COLORIMÉTRICA ................................................. 20
4.7. ANÁLISE ESTATÍSTICA..............................................................22 5. RESULTADOS E DISCUSSÃO ....................................................... 23
5.1. RESISTÊNCIA DA MADEIRA TRATADA E NÃO TRATADA CONTRA CUPINS ................................................................................ 23
5.2. RESISTÊNCIA DA MADEIRA TRATADA E NÃO TRATADA CONTRA FUNGOS .............................................................................. 24
5.3. ALTERAÇÃO DOS PADRÕES COLORIMÉTRICOS ................. 26
5.4. CORRELAÇÃO DOS PADRÕES COLORIMÉTRICOS E A DETERIORAÇÃO DA MADEIRA...........................................................30
6. CONCLUSÃO ................................................................................... 33
7. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ................................................ 34
LISTA DE TABELAS Página
TABELA 1. CLASSIFICAÇÃO DA VARIAÇÃO TOTAL DA COR (ΔE) DA
MADEIRA..................................................................................................15
TABELA 2. CLASSIFICAÇÃO DO DESGASTE PROVOCADO POR
CUPINS.....................................................................................................17
TABELA 3. CLASSIFICAÇÃO DA RESISTÊNCIA NATURAL DE
MADEIRAS SUBMETIDAS AO ATAQUE DE ORGANISMOS
XILÓFAGOS..............................................................................................20
TABELA 4. CLASSIFICAÇÃO DA VARIAÇÃO TOTAL DE COR DA
MADEIRA..................................................................................................22
TABELA 5. VALORES MÉDIOS DE PERDA DE MASSA (%) E
DESGASTE (NOTA) DA MADEIRA DE Corymbia citriodora SOB A AÇÃO
DO CUPIM nasutitermes sp......................................................................23
TABELA 6. VALORES MÉDIOS DE PERDA DE MASSA (%) E CLASSE
DE RESISTÊNCIA PARA A MADEIRA DE Corymbia citriodora SOB A
AÇÃO DOS FUNGOS Trametis versicolor E G Gloeophyllum
trabeum.....................................................................................................24
TABELA 7. CORRELAÇÃO DOS PARÂMETROS COLORIMÉTRICOS E
VARIAÇÃO DE COR (ΔE) DA MADEIRA DE Corymbia citriodora COM OS
VALORES MÉDIOS DE PERDA DE MASSA
(PM)...........................................................................................................30
LISTA DE FIGURAS Página
FIGURA 1. CLASSIFICAÇÃO DA VARIAÇÃO TOTAL DA COR (ΔE) DA
MADEIRA..................................................................................................14
FIGURA 2. VARIAÇÃO DOS PADRÕES COLORIMÉTRICOS DA
MADEIRA DE C. citriodora EM CONDIÇÃO NATURAL (TESTEMUNHA)
E APÓS O ATAQUE DOS FUNGOS Trametis versicolor E Gloeophyllum
trabeum.....................................................................................................27
FIGURA 3. CORRELAÇÃO DA VARIAÇÃO TOTAL DA COR (ΔE) COM A
PERDA DE MASSA (%) OCASIONADA PELO ATAQUE DOS
FUNGOS...................................................................................................32
RESUMO
OLIVEIRA, Weslley Candido. Resistência biológica da madeira tratada e não tratada de Corymbia citriodora. 2018. Monografia (Graduação em Engenharia Florestal) – Universidade Federal de Mato Grosso, Cuiabá-
MT. Orientador: Prof. Dr. Aylson Costa Oliveira. O trabalho objetivou avaliar a resistência biológica da madeira de alburno tratada com CCA e não tratada da espécie C. citriodora com idade de quatro anos, sob ação de agentes biodeterioradores em ensaios de laboratório, e utilizar a técnica de colorimetria para avaliar a alteração dos parâmetros colorimétricos de luminosidade L*, as coordenadas cromáticas a*b*, saturação C*, e ângulo de tinta da madeira não tratada após ataque dos fungos. Foram doados três mourões tratados com CCA (tipo B), e três não tratados, posteriormente transformados em corpos-de-prova nas dimensões de 2,5x2,5x1,0cm. Os corpos-de-prova foram adicionados dentro de frascos (360ml) junto dos fungos, e encubados pelo período de 12 semanas. No ensaio de preferência alimentar, os corpos-de-prova foram dispostos dentro de uma caixa d’água com uma camada de areia, ao redor da colônia de cupins pelo período de 15 dias. A massa seca das amostras, foi medida antes e depois da ação dos agentes biodeterioradores para determinar a perda de massa. Os parâmetros colorimétricos da madeira sem tratamento, foram obtidos antes e após o ataque dos fungos pelo aparelho espectrofotômetro. A madeira não tratada foi classificada como moderadamente resistente aos fungos. A madeira tratada foi muito resistente aos fungos. A nota do desgaste para o ataque dos cupins foi de 1,2 para madeira não tratada e 10 para tratada. O ataque dos fungos causou alterações semelhantes nos padrões colorimétricos. Apenas os parâmetros b*C*h° aumentaram significativamente, tornando a madeira muito amarela. A variação total de cor da madeira ∆E* foi muito perceptível. Palavras-chave: Fungos, Cupins, Colorimetria.
1
1. INTRODUÇÃO
O vasto território brasileiro associado às excelentes condições
edafoclimáticas para silvicultura e o desenvolvimento de programas de
melhoramento genético e clonagem de espécies florestais de rápido
crescimento, tem impulsionando o desenvolvimento do setor de
reflorestamento. Segundo dados da Indústria Brasileira de Árvores – IBÁ
(2017), com uma área de 7,84 milhões de hectares de árvores plantadas,
esse setor é responsável por 91% de toda a madeira produzida para fins
industriais.
Entretanto, espécies de rápido crescimento atingem dimensões
de comercialização ainda muito jovens, apresentando menor durabilidade
natural em relação às madeiras obtidas de espécies tropicais, quando
expostas a ambientes mais agressivos, como em contato com o solo e
umidade, conforme trabalho de Gonçalves et al. (2013). A resistência
natural ou durabilidade natural da madeira é a capacidade de resistir à
deterioração ocasionada pela ação de agentes deterioradores, incluindo
os biológicos, físicos e químicos, sendo os fungos e os cupins os
responsáveis pelos maiores danos (MELO et al., 2010).
O conhecimento sobre a durabilidade natural e as restrições
referentes ao uso da madeira, fornece informações básicas a respeito da
utilização de seus produtos sob diferentes condições de exposição à
agentes deterioradores. Paes et al. (2009), ressaltaram que o emprego
adequado da madeira a situações de risco de deterioração, poupa gastos
desnecessários com a reposição e manutenção de peças, reduzindo os
impactos ao meio ambiente.
Embora a madeira com baixa durabilidade natural apresente
susceptibilidade ao ataque de organismos xilófagos em condições
específicas, o tratamento preservativo pode tornar o material mais
durável. Segundo Barillari e Freitas (2012), após o tratamento com
produtos químicos preservantes, a madeira torna-se mais resistente ao
ataque de organismos biológicos, aumentando consideravelmente sua
2
vida útil. Vivian et al. (2015), afirmaram que pode-se obter uma proteção
efetiva de até 50 anos para madeiras menos resistentes quando realizado
o tratamento preservativo de forma eficiente.
Para definir o grau de resistência da madeira e eficiência do
tratamento torna-se necessário a realização de ensaios de campo ou
laboratório. Nos ensaios de laboratório é possível utilizar peças de
menores dimensões, em um curto período de tempo, possibilitando o
levantamento de informações relacionadas à resistência natural de forma
mais ágil. Stangerlin (2012) ressalta que a aplicação de ensaios de
laboratório tem sido utilizada com a finalidade de fornecer respostas
rápidas para os setores econômicos e de tecnologia.
Para que o conhecimento prévio das propriedades da madeira
seja dinâmico e reduza gastos, é necessário a implementação de novas
tecnologias. Dentro desse contexto, as técnicas não destrutivas como a
colorimetria quantitativa tem sido utilizada, para caracterização da
madeira e na avaliação da durabilidade (COSTA et al., 2011,
STANGERLIN et al., 2013, OKINO et al., 2015), pois permite avaliar
peças de maiores dimensões, sem a necessidade de extrair amostras
como nos ensaios destrutivos e conseguindo resultados mais rápido.
Portanto, trabalhos desta natureza são importantes, pois
permitem determinar padrões de alteração de cores da madeira visando
seu uso final, e a necessidade ou não de tratamento químico, indicando a
resistência natural da madeira para as mais diversas situações.
3
2. OBJETIVO
2.1. Objetivo geral
Avaliar a resistência biológica da madeira de alburno de
Corymbia citriodora não tratada e tratada com Arseniato de Cobre
Cromatado - CCA preservativo hidrossolúvel sob ação de agentes
biodeterioradores em ensaios de laboratório.
2.2. Objetivos Específicos
Avaliar a eficiência do tratamento com CCA na durabilidade da
madeira sob ação de cupins e fungos;
Verificar a resistência da madeira não tratada e tratada ao
ataque dos cupins e fungos, através da perda de massa;
Classificar a madeira de alburno tratada e não tratada em
classes de resistência a fungos xilófagos;
Avaliar as alterações dos parâmetros colorimetricas da madeira
não tratada após a ação de fungos apodrecedores, por meio da técnica
de colorimetria.
4
3. REVISÃO BIBLIOGRÁFICA
3.1. Durabilidade natural da madeira
De acordo com Eaton e Hale (1993) a durabilidade natural da
madeira pode ser conceituada sendo a capacidade que uma determinada
espécie apresenta de resistir a ação dos diferentes agentes
deterioradores. O ataque de agentes deterioradores à madeira depende
de condições ambientais favoráveis como temperatura, oxigênio e
umidade, assim como a quantidade de água da própria madeira, e
dependendo da aptidão de cada organismo, pode ocorrer o ataque
isolado ou em conjunto com vários tipos de organismos simultaneamente
(MELO et al., 2010).
Existem diversos fatores que podem influenciar a durabilidade
natural da madeira, como exemplo, a idade, taxa de crescimento,
quantidade de extrativos, características físicas e o comportamento da
espécie em ambientes distintos (CARNEIRO et al., 2009). Botelho et al.
(2000) ressalta ainda, que estas características podem variar entre as
espécies e dentro da mesma árvore.
Um dos principais fatores que afetam a durabilidade natural da
madeira é a quantidade de extrativos presentes na mesma (MOTTA et al.,
2013). Normalmente, maior quantidade de extrativos são encontradas na
região do cerne, estes contêm substâncias inibidoras ou tóxicas, e não
possui material de reserva (SILVA, 2007). A região do alburno é mais
suscetível a deterioração quando comparado ao cerne, por ser a parte da
madeira que apresenta maior quantidade de material nutritivo
armazenado, e menor de extrativos (SILVA, 2007).
A durabilidade natural é uma das principais propriedades de
interesse da madeira, sendo um dos fatores que pode limitar o uso de
diversas espécies em vários segmentos (PINHEIRO, 2011). Fatores
físicos, químicos e biológicos, entre os quais a umidade, a temperatura, e
a baixa durabilidade natural, são importantes no estabelecimento de uma
5
determinada espécie em função da sua aplicação (ARAÚJO et al., 2012).
Quando a madeira é exposta a condições adversas ou em contato com o
solo, torna-se necessário o uso de espécies de alta durabilidade natural
(BARILLARI e FREITAS, 2002), para recomendar o seu emprego
adequado, e evitar gastos desnecessários com a reposição de peças
deterioradas (PAES et al, 2009).
Para definição do grau de durabilidade natural de uma
determinada espécie, basicamente, dois tipos de ensaios, dependendo do
proposito, podem ser executados: ensaios em laboratório e ensaios de
campo (STANGERLIN, 2012).
Em ensaios de campo, é possível reproduzir as situações de
uso da madeira com/sem tratamento químico. Nesta condição a madeira
fica exposta a ciclos irregulares de exposição à luz solar, lixiviação,
secagem, além dos agentes químicos e físicos do solo, e diversos
organismos xilófagos que atuam em conjunto. Porém, existem certas
dificuldades para elaboração de ensaios de campo, sendo a principal
delas o longo período (anos) necessário para conseguir realizar a análise
(VIVIAN, 2011).
Em ensaios de deterioração de laboratório é possível utilizar
peças de pequenas dimensões, possibilitando o levantamento de
informações relacionadas à resistência natural das madeiras em curto
espaço de tempo (VIVIAN, 2011).
3.2. Biodeterioração da madeira
A biodeterioração da madeira, está associada a ação de
agentes biodeterioradores que a decompõem para utilizar seus
constituintes como fonte de energia e abrigo, atuando em conjunto com
agentes físicos e químicos que aceleram o processo de deterioração
(VIVIAN et al., 2014). Os agentes biodeterioradores que atacam a
madeira são conhecidos como “xilófagos”. Estes podem ser divididos em
três grupos: fungos e bactérias, insetos e perfuradores marinhos
(MENDES e ALVES, 1988).
6
Segundo Levy (1979), estes organismos podem atacar a
madeira de 2 formas:
a) Fungos e bactérias – A deterioração é causada pela
liberação de enzimas, que reagem com os constituintes da
parede celular a nível molecular, quebrando esta estrutura.
b) Cupins, besouros e perfuradores marinhos – Deterioração
ocorre com a escavação do organismo, através da estrutura
da madeira, a procura de abrigo e alimento.
Durante este processo os agentes biodeterioradores têm maior
interesse pelos compostos fundamentais da estrutura da madeira:
celulose, hemiceluloses e lignina. Materiais nitrogenados, amido,
açucares, entre outros, que se encontram em menores quantidades,
também podem servir de alimento para estes microrganismos (REMADE,
2013).
A deterioração da madeira é mais expressiva quando atacada
por fungos, estes organismos consomem componentes presentes na
parede celular causando alterações nas propriedades físicas e químicas
da madeira, assim como sua estrutura anatômica e como consequência
há uma grande diminuição da resistência da madeira (OLIVEIRA et al.,
2005). Os fungos se relacionam com a madeira de diferentes formas,
podendo apenas manchá-la, ou decompô-la totalmente, sendo
classificados como manchadores, emboloradores e apodrecedores
(MOTTA et al., 2013).
As bactérias atacam a madeira em estado úmido. Esta
condição é possível quando a madeira é recém cortada, ainda na forma
de tora, ou quando está úmida na forma de peças ou lâminas após o
processamento industrial primário, ou ainda, esteja submersa em água
ou, por alguma razão, venha a readquirir umidade. (MORESCHI, 2013).
Entre os insetos, as principais ordens que se alimentam da
madeira são: Isoptera (térmitas), Coleóptera (coleobrocas) e, em menor
escala, Himenóptera (vespas e formigas) (TREVISAN, 2006). Segundo
Gonçalves et al. (2013), os insetos denominados de coleobrocas estão
entre os mais prejudiciais à madeira, sendo altamente importante devido
7
aos grandes danos que causam às espécies de plantios florestais, sendo
as do gênero Eucalyptus sp as mais afetadas.
Entre os indivíduos da ordem Isóptera, os de importância como
deterioradores de madeira e subprodutos ou produtos, encontram-se os
cupins. São predominantemente encontrados nas regiões tropicais, são
caracterizados por serem insetos sociais com um sistema de castas bem
desenvolvidas. Os cupins se alimentam exclusivamente de celulose e
normalmente atacam a madeira pelo caminho mais fácil, deteriorando em
primeiro lugar o lenho mais mole da madeira (MORESCHI, 2013).
Para os perfuradores marinhos é atribuído um grande número
de organismos de diversos grupos tais como, algas, esponjas, crustáceos,
moluscos e equinodermos. O ambiente marinho é o mais agressivo em
relação à utilização de madeiras, onde vários são os grupos de
organismos que causam a biodeterioração com consequente destruição
das estruturas construídas em madeira (MONTANA QUÍMICA, 2017).
Sendo assim, o conhecimento do desenvolvimento e
comportamento dos diferentes organismos xilófagos torna-se
imprescindível, de forma a buscar eliminar ou mitigar os danos aos
produtos madeireiros, potencializando seus usos.
3.3. Fungos Xilófagos
Segundo Moreschi (2013), dentre os grupos mais importantes
responsáveis pela deterioração da madeira, nos variados produtos
florestais, estão os fungos. A classe Basidiomicetos é a responsável pelo
apodrecimento da madeira, dividida entre os fungos de podridões parda,
branca e mole, que possuem características enzimáticas próprias em
relação à decomposição dos elementos primários da madeira (OLIVEIRA
et al., 2005).
A ação desses fungos apodrecedores se dá através da
penetração de suas hifas pelo lúmen das células, e assim que instalados,
produzem uma variedade de metabólitos extracelulares que atuam
8
deteriorando os componentes presentes na parede celular do vegetal
(ARANTES e MILAGRES, 2009).
A produção de metabólitos extracelulares durante o processo
de deterioração da parede celular é influenciada de acordo com o fungo
atuante. As enzimas responsáveis pela deterioração da celulose e das
polioses são hidrolases, que apresentam certa especificidade, enquanto
as enzimas envolvidas na deterioração da lignina são oxidases, estas
geralmente são pouco especificas (ARANTES e MILAGRES, 2009).
Zabel e Morrell (1992) descrevem que o processo de
deterioração ocasionada por fungos ocorre em estágios gradativos e
constantes, e dependem das características do microrganismo que está
se desenvolvendo na madeira. O primeiro estágio ou estágio incipiente
tem início quando o microrganismo entra em contato com a superfície da
madeira, dando início a colonização, liberando enzimas. Nesta etapa não
se verifica manifestações macroscópicas de contaminação. Com o
desenvolvimento da deterioração, alguns sinais passam a ser
perceptíveis, dando início a etapa seguinte definida como recente. No
estágio intermediário, as mudanças na textura e colocação da madeira
são claramente observadas, porém, a estrutura ainda não apresenta
sinais de degradação. No último estágio, o avançado, ocorre o
rompimento da estrutura da madeira. Para vários microrganismos as
etapas gerais da deterioração são semelhantes, porém, a intensidade da
deterioração é variável.
Os fungos da podridão branca, representam cerca de 94% dos
Basidiomicetos, sendo um pequeno grupo de organismos que possuem a
capacidade de despolimerizar, degradar e mineralizar todos os
componentes da parede celular vegetal incluindo a celulose,
hemicelulosese e a lignina, que é a mais recalcitrante deles (KERSTEN e
CULLEN, 2007).
Macroscopicamente, a madeira atacada pelos fungos da
podridão branca, tende a perder seu aspecto lustroso e a sua cor natural,
tornando-se assim esbranquiçada, como resultado da destruição dos
pigmentos, adquirindo uma consistência esponjosa e linhas escuras que
demarcam a área atacada e microscopicamente, em certas ocasiões, é
9
possível observar um afinamento gradual da parede secundária das
células atacadas (SANTINI, 1988). Moreschi (2013), ressalta que, além do
aspecto visual da madeira atacada, ocorre uma crescente perda de peso,
e resistência da madeira, pelo constante consumo da celulose,
hemiceluloses e lignina.
Para os fungos da podridão parda, a degradação é orientada
para a mineralização dos polissacarídeos, porém a lignina não é
solubilizada, permanecendo como um resíduo amorfo (AGUIAR e
FERRAZ, 2007).
Macroscopicamente, a madeira deteriorada por fungos da
podridão parda apresenta aspecto levemente queimado, adquirindo
coloração parda devido à contínua deterioração da celulose e
hemiceluloses, deixando a lignina praticamente intacta, mantendo a
estrutura original da madeira enquanto o material permanece com
umidade. Depois que a madeira seca, a estrutura mantida pela lignina
sofre colapso com facilidade, e acontece a separação em blocos pelo
desenvolvimento de fissuras paralelas e perpendiculares na direção da
grã da madeira, sucedendo uma proporcional perda de peso e um
decrescimento na sua resistência pelo consumo da celulose e
hemiceluloses (MORESCHI, 2013).
Microscopicamente, a hifa do fungo, situada no lume, secreta
enzimas que se disseminam através da parede celular, destruindo
carboidratos. Assim que a lignina residual não resiste à força da difusão
das enzimas, ocorre o colapso da parede celular, sendo o ataque não
uniforme nas células da mesma região, o que resulta em áreas
colapsadas da madeira com podridão parda (SANTINI, 1988).
Os fungos da podridão mole englobam os microrganismos com
capacidade limitada de degradação, uma vez que seu desenvolvimento
ocorre na superfície da madeira, dificilmente penetrando mais que dois
centímetros de profundidade. No estado úmido, a madeira atacada pelo
fungo da podridão mole, apresenta superfície amolecida, e ao secar, a
superfície apresenta uma coloração mais escura, áspera e com várias
fissuras no sentido das fibras (MORESCHI, 2013).
10
3.4. Insetos
Dentre os grupos de insetos mais importantes com relação à
degradação de materiais celulósicos, são incluídas as térmitas ou cupins
pertencentes à ordem Isóptera. Existem mais de 281 gêneros e mais de
2.600 espécies, sendo encontrados no Brasil cerca de 200 espécies
(GONÇALVES et al., 2013).
Os cupins apresentam características sociais, vivem em
colônias com atividades distribuídas pelas castas com funções definidas:
reprodutores, soldados e operários. Podem ser encontrados em uma
ampla faixa do meio ecológico, distribuídos pelas regiões mais quentes do
mundo (TREVISAN, 2006). De acordo com o mesmo autor, de modo
geral, as espécies que atacam a madeira podem ser divididas em
subterrâneas e de madeira seca.
Os cupins de solo ou subterrâneos são os responsáveis pelos
maiores volumes de perda de madeira no mundo (RICHARDSON, 1993).
As colônias são localizadas no solo, compostas por milhares de indivíduos
e sua ocorrência pode ser observada pela presença de túneis de terra
sobre a madeira (CAVALCANTE, 1985). A dispersão destes cupins se dá
através das revoadas e da formação de casais que fundarão uma nova
colônia. Contudo, operários de um ninho já estabelecido no solo, podem
infestar uma edificação a procura de alimento (OLIVEIRA et al. 1986).
Os cupins subterrâneos constroem túneis, geralmente feitos
com terra, saliva e fezes que têm a função de proteger os cupins da baixa
umidade do ar e da predação. Eles alimentam-se exclusivamente de
celulose, normalmente iniciam a deterioração da madeira pelo lenho mais
mole e em seguida, quando o lenho mais mole se torna insuficiente,
passam a atacar a parte do lenho mais dura (MORESCHI, 2013).
Os Coleópteras constituem a maior ordem de insetos,
compreendendo mais de 40% dos insetos conhecidos, com cerca de
350.000 espécies descritas. Variam de tamanho, desde aqueles menores
que 1,0 mm, até 200 mm de comprimento, podendo ser encontrados em
todos os ambientes habitados por outros insetos (COSTA et al., 2009).
11
Podem ser encontrados em todos os estágios de desenvolvimento da
floresta causando danos às árvores, como desfolhadores ou xilófagos,
dependendo da idade da árvore atacada e de sua capacidade de
recuperação ao dano, o ataque destes insetos pode leva-la à morte
(TREVISAN, 2006).
Os Coleópteras são dominantes nos trópicos, e são
considerados de importância secundária, porque só atacam ou tem
preferência em atacar árvores que apresentem alterações fisiológicas, ou
seja, já estão doentes (HOSKING, 1977).
Segundo Oliveira et al. (1986), as brocas possuem hábito
alimentar rigorosamente relacionado com o teor de umidade da madeira,
atacando apenas sob as seguintes condições: madeira com umidade
abaixo de 30%; madeira em fase de secagem, árvores recém-abatidas,
com alto teor de umidade e liberando compostos químicos e, por fim, a
faixa que compreende desde árvores vivas até troncos em adiantada
decomposição.
3.5. Preservação da madeira
A preservação da madeira surgiu como uma ferramenta de
proteção, auxiliando no aumento do tempo de uso de produtos obtidos de
espécies de menor durabilidade natural, sendo estas, encontradas em
maior abundância na natureza, e obtidas com facilidade através de
reflorestamentos (VIVIAN, 2011).
Segundo Tufolo Netto (2010), em 2010 a indústria de
preservação de madeira empregou aproximadamente, 1,3 milhões de
metros cúbicos de madeiras, sendo 60% destinados ao setor rural.
Atualmente, segundo dados do IBA (2017) o consumo de madeira tratada
no ano de 2016 foi de 1,46 milhões de metros cúbicos, sendo as espécies
mais utilizadas do gênero Eucalyptus, Pinus e Corymbia.
O setor de madeira tratada no Brasil tem como principais
produtos moirões, estacas, postes, dormentes e peças roliças e serradas
para a construção civil. Estes produtos apresentam inúmeras vantagens e
12
potencialidades de maior consumo, principalmente no setor rural e de
construção civil (TUFOLO NETTO, 2010).
Vidal (2015) afirma que o mourão é o produto de madeira
tratada mais utilizado no Brasil, principalmente no meio rural. O mesmo
autor ainda ressalta a competitividade da madeira tratada como poste,
visto que, além da vida útil prolongada, apresenta custo anual inferior aos
postes produzidos com outros materiais, como o concreto. Calil Júnior e
Dias (2005) apontam o uso da madeira tratada na construção civil como
promissor, afirmando que a relação resistência/densidade da madeira é
cerca de três vezes maior que para o aço e 10 vezes maior que para o
concreto.
Alves e Sinay (2005) indicam inúmeras vantagens no uso de
dormentes de madeira tratada como: baixo consumo de energia na sua
produção; leve e fácil manuseio; fácil serragem, furação e entalho; são
pouco afetados durante seu transporte durante sua instalação na via
férrea; não sofrem influência de resíduos industriais poluidores da
atmosfera; além de uso da matéria-prima renovável.
Tufolo Netto (2010) ressalta que a preservação de madeiras,
na construção civil, possibilitou o uso de madeiras de baixa resistência
natural em áreas expostas ao intemperismo, umidade permanente,
contato com o solo, bem como aquelas utilizadas em projetos estruturais.
Com isso, recomenda-se o uso de madeira tratada em estruturas para
telhados, lambris e forros, peças roliças perfiladas para sistemas
construtivos log homes, pisos, vigas roliças estruturais, vigas perfiladas e
peças serradas para pisos (VIDAL, 2015).
Quando realizado o tratamento preservativo, é possível obter
proteção efetiva por períodos de até 50 anos ou mais (VIVIAN, 2015).
Madeiras de eucalipto tratadas com CCA a serem utilizadas em contato
com o solo (postes, estacas e mourões) tem garantia de durabilidade,
oferecida pelas empresas de preservação em autoclaves, de 15 anos,
enquanto que as indústrias químicas fabricantes dos produtos
preservativos, indicam que essa durabilidade que pode alcançar de 20 a
30 anos em serviço (MONTANA, 2017).
13
3.6. Colorimetria
De acordo com Camargos e Gonçalez (2001), a qualidade da
madeira quanto à cor é uma importante característica que pode ser
utilizada para identificação e indicação de uso de diversas espécies de
madeira. É uma das formas mais recentes de classificar e caracterizar a
madeira (COSTA, 2009).
A colorimetria é definida sendo o ramo da ciência, física ótica e
geométrica, que tem por objetivo a medição de cores. Esta técnica foi
adaptada para ser aplicada à madeira, através da metodologia do uso de
coordenadas cromáticas, baseando-se no modelo definido pela
Comission Internationale de I´Eclairage – CIEL*a*b* 1976 (COSTA, 2009).
A colorimetria foi adaptada, tomando como base no sistema de
notação de cores de Munsell criado em 1905 utilizando tabelas de cor
para comparação visual das amostras, que são classificadas de acordo
com sua tonalidade (“Matiz” - “Hue”), luminosidade (“Valor” - “Value”) e
saturação (“Croma” - “Chroma”) (CAMARGOS; GONÇALEZ, 2001).
A fim de proporcionar maior uniformidade na leitura das cores
dos materiais em relação as interpretações visuais, foi desenvolvido pelo
CIElab o espaço de cores L*; a*; b* (Figura 1). Este sistema consiste em
um método de expressão numérica da cor, definindo valores de
luminosidade (L*), escala cinza entre o branco e o preto, com valores de 0
a 100, em que 0 é preto absoluto e 100 é branco total; valores de
tonalidades ou coordenadas cromáticas (a*) que corresponde à posição
do ponto de cor sobre o eixo verde-vermelho, e (b*) que corresponde à
posição do mesmo ponto de cor sobre um eixo azul-amarelo, em posição
retangular com o eixo verde-vermelho dentro do plano da cor, ambas com
valores que variam entre -60 e +60; e a saturação (C*) que é denominada
como sendo o desvio a partir do ponto correspondente ao cinza no eixo
L*, assim, quanto mais distante do eixo, mais saturada será a cor.
14
Fonte: Adaptado De Color Models (2011).
FIGURA 1 - SISTEMA DE COORDENADAS DE CORES CIElab.
A diferença de cor entre uma amostra e a referência pode ser
observada pela direção no espaço tridimensional, descrita pela
importância e o sinal algébrico das coordenadas L*, a* e b*. Assim,
valores de ΔL*, Δa* e Δb* positivos podem indicar cores mais claras, com
maior presença e/ou aumento nas cores vermelho e amarelo, e valores
negativos indicam amostras mais escuras, com maior presença e/ou
aumento nas cores verde e azul (KONICA MINOLTA, 1998).
A Saturação (C) é a distância radial entre a localização da cor e
o centro do espaço, e está diretamente ligada com a concentração do
pigmento ou corante da tinta. O ângulo do tom - ou ângulo tonal - (hº)
define a cor em si e através dela, sabemos se, durante a formulação da
tinta da amostra, foram usados os mesmos pigmentos ou corantes do
padrão (COSTA, 2009).
A direção da diferença de cor, entre uma amostra e a
referência, no espaço tridimensional é descrito pela magnitude e o sinal
algébrico das coordenadas L*, a* e b*. A partir destes parâmetros, é
possível avaliar por meio de medições instrumentais a variação total da
15
cor (ΔE), e determinar cinco diferentes níveis de percepção da cor,
conforme Tabela 1 (CUI et al, 2004).
TABELA 1 - CLASSIFICAÇÃO DA VARIAÇÃO TOTAL DA COR (ΔE) DE MADEIRAS.
Variação total da cor (ΔE) Classificação colorimétrica
0 – 0,5 Percepção inexistente
0,5 – 1,5 Levemente perceptível
1,5 – 3,0 Notável
3,0 – 6,0 Apreciável
6,0 – 12,0 Muito apreciável
Fonte: Adaptado de Hikita, Toyada e Azuma (2001).
Devido à sua facilidade de aplicação e informação precisa, o
sistema CIE-Lab vem sendo utilizado em pesquisas para avaliar as
alterações de cor da madeira sob influência de diversos fatores como
qualidade do sítio, espaçamento, tratamentos silviculturais, ataque de
organismos xilófagos, degradação por fatores abióticos, composição
química e influência de tratamentos térmicos (COSTA et al., 2011; MOYA
et al. 2012; LOPES et al., 2014; LAZAROTTO et al., 2016).
Ribeiro (2009) afirma que a colorimetria também pode auxiliar
na localização de áreas com potencial deterioração da estrutura da
madeira, identificando características como: fotodeterioração, perda de
cor, presença de defeitos, podridões ou manchas, e nós, considerando-se
o número, tamanho e a localização dos mesmos.
16
4. METODOLOGIA
4.1. Obtenção do material
Foram obtidas três peças de madeira roliça tratadas e três não
tratadas de Corymbia citriodora (Hook.) K.D. Hill & L.A.S. Johnson) com
idade de quatro anos, e diâmetro médio de 10cm. As peças foram
produzidas e comercializados pela Unidade de Tratamento de Madeira
Santo André, localizada em Várzea Grande, MT. O tratamento
preservativo foi realizado em autoclave industrial, por meio do processo
de célula cheia, método de Bethell, sendo o Arseniato de Cobre
Cromatado (CCA tipo B) o preservativo utilizado, na concentração de 2%
do princípio ativo.
As etapas do processo envolveram carregamento da madeira
no cilindro da autoclave, aplicação de vácuo inicial a 560 mmHg por 30
minutos, enchimento com a solução preservativa, aplicação de pressão de
12 kgf/cm² por 90 minutos, retirada do produto do cilindro, vácuo final a
560 mmHg por 10 minutos e descarregamento. Após o tratamento, a
madeira foi armazenada em local protegido de umidade e sem contato
com solo, por 15 dias.
4.2. Preparação dos corpos de prova
Os corpos de prova foram confeccionados no laboratório de
Tecnologia da Madeira da Faculdade de Engenharia Florestal da
Universidade Federal do Estado do Mato Grosso, campus Cuiabá. Para o
ensaio de deterioração acelerado foram produzidos 60 corpos de prova
de madeira tratada de alburno e 60 de madeira não tratada, também de
alburno, totalizando 120 peças com dimensões de 2,5 x 2,5 x 1,0 cm. Os
corpos de provas foram lixados e identificados.
4.3. Ensaio de preferência alimentar de cupins
17
No ensaio de preferência alimentar foi utilizado uma colônia de
cupins Nasutitermes sp, sendo a colônia coletada em Cuiabá – Mato
Grosso, no viveiro florestal da Faculdade de Engenharia Florestal do
campus da Universidade Federal de Mato Grosso. O preparo do ensaio foi
realizado em uma caixa d’água de 1000 litros, forrada com uma camada
de aproximadamente de 10 cm de areia úmida. A colônia foi disposta na
areia, no interior da caixa d’água, e as amostras foram distribuídas
aleatoriamente, contendo 20 repetições para cada tratamento (madeira
tratada e não tratada), totalizando 40 corpos de prova. Foram adicionados
10 corpos de prova de Ochroma pyramidale (pau-de-balsa) como
referência conforme recomendado pela norma ASTM D-3345 (ASTM,
2008), para avaliar o vigor dos cupins.
Os corpos de prova foram secos em estufa a 103±2°C, e
pesados para determinação da massa seca inicial. As amostras ficaram
expostos aos cupins pelo período de 15 dias, em uma sala sob condições
de temperatura de 27±2°C.
Ao final do ensaio, os corpos-de-prova foram levados
novamente a estufa, nas mesmas condições descritas anteriormente, e
determinou-se a massa seca final. A avaliação da perda de massa
individual (Pmi) foi realizada com base nos valores de massa inicial (Mi) e
massa final (Mf) de cada corpo de prova.
A avaliação do desgaste provocado pelos cupins na madeira
foi realizada de acordo com a classificação estabelecida pela norma
ASTM D - 3345 (ASTM, 2008), conforme a Tabela 2.
TABELA 2 - CLASSIFICAÇÃO DO DESGASTE PROVOCADO POR CUPINS.
Desgaste Notas
Sadio, permitindo escarificações superficiais. 10
Ataque superficial 9
Ataque moderado, havendo penetrações. 7
Ataque intensivo 4
Falha, havendo ruptura dos corpos de prova. 0
Fonte: Adaptado de ASTM D – 3345 (2008).
18
4.4. Preparo dos fungos xilófagos
Para o ensaio de deterioração por fungos, foram empregadas
duas espécies: Trametes versicolor (Linnaeus ex Fries) Pilat, espécie
causadora de podridão-branca; e Gloeophyllum trabeum (Persoon. ex
Fries.) Murr., espécie causadora de podridão-parda, provenientes da
coleção do laboratório de Produtos Florestais do Serviço Florestal
Brasileiro, localizado em Brasília, DF.
Para cada espécie de fungo foram inoculadas 10 placas de
Petri. O inóculo consiste em uma amostra com cerca de 1 cm de diâmetro
contendo o micélio do fungo, retirado de uma placa-mãe com idade
inferior a três meses, mantida sob refrigeração. Após a inoculação, as
placas foram levadas à incubadora por 30 dias para o crescimento do
micélio. Posteriormente, para cada espécie de fungo, foram selecionadas
quatro placas, com bom crescimento, para servirem como fonte de inóculo
para as culturas em meio sólido.
O meio de cultura foi preparado com Batata, Dextrose e Ágar
(BDA), preparado com 200 g de batata, 10 g de ágar e 1 litro de água
destilada. Foram preparadas 24 placas de Petri, 12 para cada fungo.
Estas foram esterilizadas a 121°C por 15 minutos para evitar
contaminações. Foram adicionados 12 mL de meio de cultura nas placas,
sendo 12 placas de BDA. Após o preparo, foram acondicionadas por 15
dias em temperatura média de 27°C.
4.5. Instalação do experimento com fungos
Para o ensaio de apodrecimento em laboratório, foram
utilizados 80 frascos de 200 mL com tampa de plástico rosqueável. Para
preparação do ensaio, foram adicionados 70 g de solo latossolo vermelho
em cada frasco. O solo recebeu uma adição previa de calcário, para
elevar o pH para 6,5, sendo nessa faixa o melhor desenvolvimento de
fungos, e foi armazenado para secagem em temperatura ambiente. Foi
19
necessária a adição de 20 mL de água destilada, afim de que a umidade
fosse ajustada para aproximadamente 130% da sua capacidade de
retenção de água, conforme estabelecida pela American Society for
Testing and Materials - ASTM D - 2017 (2005).
Para o desenvolvimento inicial dos fungos, foram
confeccionadas placas suportes de madeiras susceptíveis, nas dimensões
de 0,3 x 3,0 x 3,0 cm. Foram utilizadas placas de suporte de pinus (Pinus
sp.), para o crescimento de G. trabeum; e, pau de balsa (Ochroma
pyramidale) para o T. versicolor. Os frascos foram esterilizados em
autoclave a 121°C por uma hora, para matar os agentes existentes.
Antes da inoculação dos frascos de vidro, o meio de cultura
com fungos foi transferido para o copo de um liquidificador, devidamente
esterilizado, sendo então, levemente batido. Este procedimento foi
realizado para obtenção de uma distribuição homogênea dos micélios do
fungo no meio de cultura. A inoculação dos frascos de vidro efetuou-se
em capela de fluxo laminar, utilizando uma seringa, com a qual foram
distribuídos três mL do meio de cultura líquida, contendo micélios de
fungo, parte sobre a placa suporte e parte sobre o solo. Depois de
inoculados, os frascos retornaram para incubação, pelo período de 30
dias, tempo necessário para que os micélios dos fungos recobrirem
homogeneamente a superfície do substrato. Após a colonização das
placas de suporte, cada frasco recebeu um corpo-de-prova
Após a colonização das placas de suporte, os corpos de prova
foram distribuídos nos frascos, sendo 40 corpos-de-prova de alburno
tratado (20 para o fungo T. versicolor, e 20 para o G. trabeum) e 40
corpos-de-prova de alburno não tratado (20 para o fungo T. versicolor, e
20 para o G. trabeum) sobre a placa suporte, e posteriormente
permanecendo incubados em contato com os fungos pelo período de 12
semanas, de acordo com o trabalho desenvolvido por Stangerlin (2012),
em temperatura de 27°C e umidade relativa de 70%. Todas as operações
de manipulação de fungo foram realizadas sob condições assépticas.
Após a retirada dos frascos da incubadora, os corpos de prova
foram submetidos a uma limpeza, e secos em estufa a temperatura de
103±2°C, por 24hrs, para atingir a massa constante, para serem pesados
20
novamente em balança de 0,0001 g de precisão para determinar a massa
final. A avaliação da perda de massa individual (Pmi) foi realizada com
base nos valores de massa inicial (Mi) e massa final (Mf) de cada corpo
de prova.
A classificação da resistência natural das madeiras não tratada
e tratada de C. citriodora submetidas ao ataque de organismos xilófagos
foi realizada de acordo com a ASTM D - 2017 (2005) conforme tabela 3.
TABELA 3 - CLASSIFICAÇÃO DA RESISTÊNCIA NATURAL DE MADEIRAS SUBMETIDAS AO ATAQUE DE ORGANISMOS XILÓFAGOS.
Perda de massa (%)
Massa residual (%)
Classe de resistência
0 a 10 90 a 100 Muito resistente
11 a 24 76 a 89 Resistente
25 a 44 56 a 75 Moderadamente resistente
45 ou mais 55 ou menos Pouco resistente ou não
resistente Fonte: ASTM D – 2017 (2005).
4.6. Avaliação colorimétrica.
Os parâmetros colorimétricos foram determinados no
Laboratório da Faculdade de Engenharia de Alimentos da Universidade
Federal de Mato Grosso, campus Cuiabá. Os dados foram obtidos por
meio do espectrofotocolorímetro CR-400 Chroma Meter. Antecedendo as
análises procedeu-se à calibração do colorímetro com auxílio de duas
referências fornecidas pelo equipamento, uma com L*= 100 (branco total)
e outra com L*= 0 (preto total).
A metodologia adotada para a determinação dos parâmetros
colorimétricos L* (luminosidade ou claridade), a* (Matizes do eixo verde-
vermelho) e b* (Matizes do eixo amarelo-azul) foi o sistema CIELab,
descrito por Camargos e Gonçalez (2001), sendo os mesmos obtidos
diretamente no mostrador digital do espectrofotocolorímetro. Realizaram-
se três leituras dos parâmetros colorimétricos, na seção transversal, para
21
cada corpo-de-prova da madeira não tratada, sendo utilizado o valor
médio dessas medições.
Para determinar os parâmetros C*(1) h°(2) e a variação total de
cor ΔE(3), foram utilizadas as seguintes equações de acordo com o
procedimento da ASTM D2244 (2009):
𝐶∗ = (𝑎∗2 + 𝑏∗2)1/2
(1)
C* = saturação ou cromacidade da cor
a = coordenada verde-vermelho
b = coordenada amarelo-azul
ℎ° = 𝑡𝑎𝑛𝑔−1(𝑏∗/𝑎∗) (2)
h° = ângulo de tinta ou de tonalidade
a = coordenada verde-vermelho
b = coordenada amarelo-azul
ΔE = √(𝑳)𝟐 + (𝒂)𝟐 + (𝒃)𝟐 (3)
ΔE = Variação de cor
L = Luminosidade
a = coordenada verde-vermelho
b = coordenada amarelo-azul
Após obter os valores médios de variação de cor, foi realizada
a classificação baseando-se em níveis de observação visual conforme
tabela 4 elaborada por Hikita et al. (2001) citado por Barreto e Pastore
(2009).
22
TABELA 4 – CLASSIFICAÇÃO DA VARIAÇÃO TOTAL DA COR ΔE* DE MADEIRAS.
Alteração total Variação de cor (%)
0,0 – 0,5 Desprezível
0,5 – 1,5 Ligeiramente perceptível
1,5 – 3,0 Notável
3,9 – 6,0 perceptível
6,0 – 12,0 Muito perceptível
Fonte: Adaptado de Hikita, Toyada e Azuma (2001).
Os dados colorimétricos foram coletados em duas etapas: A
primeira antes do ensaio, tido como a condição natural da cor da madeira,
e após a madeira ter sido submetida à ação dos fungos pelo período de
12 semanas.
4.7. Análise Estatística
Os dados de perda de massa do ataque de cupins foram
analisados em um delineamento inteiramente casualizado, com 20
repetições para cada um dos 2 tratamentos (madeira tratada e não
tratada). Os dados foram submetidos à análise de variância e as médias
comparadas pelo teste t (p > 0,05).
Os dados de perda de massa do ataque dos fungos foram
analisados segundo um delineamento inteiramente casualizado, com
arranjo fatorial, em dois níveis; fungos xilófagos, com dois níveis; madeira
tratada e não tratada, com 20 repetições, os dados foram submetidos à
análise de variância e as médias comparadas pelo teste Tukey (p > 0,05).
Os parâmetros colorimétricos foram submetidos à análise de
variância para verificar existência de diferenças significativas, pelo test F.
Realizou-se correlação de Pearson entre os parâmetros estudados, e foi
testado o nível de significância pelo teste t (p > 0,05).
23
5. RESULTADOS E DISCUSSÃO
5.1. Resistência da madeira tratada e não tratada ao ataque de cupins
Na Tabela 5 são apresentados os valores médios observados
para perda de massa e desgaste da madeira da região de alburno de
Corymbia citriodora sem tratamento preservativo e tratada com CCA, sob
ataque de cupins do gênero Nasutitermes.
TABELA 5 – VALORES MÉDIOS DE PERDA DE MASSA (%) E DESGASTE DA MADEIRA DE Corymbia citriodora SOB A AÇÃO DO CUPIM Nasutitermes sp.
Madeira Perda de massa (%) Nota do desgaste Coef. Variação
(%)
Não tratada 88,73 a 1.2 13,9
Tratada 4,40 b 10 9,7
*Nota atribuída de acordo com a norma ASTM D – 3345 (2008). Médias seguidas pela mesma letra na coluna, não diferem estatisticamente entre si pelo test t (p > 0,01).
Com base nos resultados apresentados na Tabela 5, os
valores médios de perda de massa na madeira de alburno não tratada, foi
próxima de 90% e assim, foi susceptível ao ataque de cupins deste
gênero. Durante o ensaio, observou-se que as amostras foram
rapidamente atacadas e destruídas, sendo que algumas foram reduzidas
a pó, sendo assim atribuída a nota de desgaste 1,2 que corresponde a
“falha, havendo ruptura dos corpos de prova” (Tabela 2). Lopes et al.
(2015) avaliando a resistência da madeira de C. citriodora em ensaios de
preferência alimentar com Nasutitermes encontram valores médios de
perda de massa de 97,8%, evidenciando a baixa resistência da madeira
desta espécie ao ataque de cupins.
O Tratamento preservativo com CCA foi eficiente na prevenção
ao ataque de cupins. Não foram observados ataque dos cupins em
nenhuma das amostras, sendo atribuída nota 10 que corresponde a
24
“corpos de prova sadios” (Tabela 2). O baixo valor médio de perda de
massa (4,40%) representa um aumento expressivo (20x) na resistência da
madeira de C. citriodora aos cupins. Araújo et al. (2012) avaliando a
resistência de C. citriodora tratada com CCA em campo, observaram que
as madeiras estavam completamente isentas de qualquer dano causado
por organismos xilófagos entre eles, os cupins, após 5 anos de ensaio.
Em função dos valores médios de perda de massa e de
desgaste obtidos pela madeira tratada, verifica-se que o tratamento
preservativo com CCA foi capaz de conferir a madeira de C citriodora
resistência semelhante a espécies nativas como Marmeleiro preto (Croton
sonderianus Muell. Arg.), Sabiá (Mimosa caesalpiniifolia Benth.), Jurema
preta (Mimosa tenuiflora (Willd.) Poir.) e louro pardo (Cordia trichotoma
Vell. ex. Steud.), madeiras com resistência elevada contra cupins (PAES
et al., 2007).
5.2. Resistência da madeira tratada e não tratada contra fungos
Ao analisar os resultados da Tabela 6, observa-se diferentes
graus de ataque ocasionados pelos fungos. A madeira não tratada
apresentou baixa resistência para ambos os fungos apodrecedores,
enquanto a madeira tratada com CCA não apresentou sinais de
deterioração, com perdas de massa inferiores a 1%, sendo altamente
resistente ao ataque dos fungos.
25
TABELA 6 – VALORES MÉDIOS DE PERDA DE MASSA (%) E CLASSE DE RESISTÊNCIA PARA A MADEIRA DE Corymbia citriodora SOB A AÇÃO DOS FUNGOS T. versicolor E G. trabeum.
Fungo Tratamento Perda de
Massa (%) Coef.
Variação (%) Classe de
resistência*
T. versicolor Não tratada 25,37b 24,9
Moderadamente resistente
Tratada 0,60c 5,3 Muito
resistente
G. trabeum Não tratada 34,92a 15,8
Moderadamente resistente
Tratada 0,60c 5,8 Muito
resistente *Atribuídas de acordo com a norma ASTM D – 2017 (2005). Médias seguidas pela mesma letra na coluna, não diferem estatisticamente entre si pelo test tukey(p > 0,01).
Considerando os tipos de fungos, foi constatado diferença nos
valores médios de perda de massa, o ataque do fungo G. trabeum foi
significativamente maior na madeira não tratada com valor médio próximo
de 35%, em relação ao T. versicolor que foi 25,3%. Silva et al. (2014) e
Carvalho et al. (2015) também observaram maiores danos ocasionados
pelo fungo G. trabeum em relação ao T. versicolor, para espécies de
eucalipto. Segundo Martinez et al. (2005) o fungo G. trabeum ataca toda a
parede celular rapidamente, enquanto o fungo T. versicolor ataca
progressivamente, de forma mais seletiva.
O tratamento preservativo aumentou significativamente a
resistência da madeira, tornando-a segundo a ASTM D-2017 (2005) muito
resistente a fungos apodrecedores, enquanto que as madeiras não
tratadas, foram classificadas como moderadamente resistentes. Bobadilha
et al. (2007) e Vivian et al. (2015) também observaram a melhora na
resistência de espécies de pinus e eucaliptos sob ação de fungos após o
tratamento preservativo com CCA.
Segundo Castro Silva (2007), ao aplicar o CCA a madeira, o
cromo precipita grande quantidade de cobre e arsênio, e reage com a
madeira, essa reação de fixação desencadeada, deixa o arsênio como
agente inseticida, e o cobre como fungicida, totalmente aderidos às
estruturas celulares. Vivian et al. (2015) ressaltam que tal fato, justifica o
aumento da resistência da madeira ao ataque de fungos apodrecedores.
26
Esta susceptibilidade da madeira de alburno da espécie C.
citriodora ao ataque de fungos e cupins já era esperado, visto que, para
praticamente todas as espécies o alburno não é resistente, e geralmente
sua vida útil é curta quando em condições favoráveis a deterioração
(CLAUSEN, 2010). O maior teor de holocelulose o torna mais susceptível
ao ataque de organismos xilófagos (MOYA et al., 2012), em vista disto,
torna-se importante a realização de tratamento preservativo visando o
aumento da resistência da madeira, possibilitando outras utilizações.
Ao comparar a deterioração por cupins e fungos, observou-se
que o ataque dos cupins foi mais agressivo, isto pode estar associado a
madeira de alburno apresentar menor densidade. Stallbum et al. (2017)
afirma que madeiras com baixa densidade, influenciam nas habilidades
dos cupins de fragmentar mecanicamente o lenho, facilitando o consumo.
Madeiras de reflorestamento como o C. citriodora em estudo,
geralmente são comercializadas ainda muito jovens apenas como material
energético. Conforme os resultados apresentados, o uso de tratamento
químico, conferiu a madeira maior resistência aos organismos xilófagos,
permitindo assim, que a madeira possa ser utilizada mesmo em situações
de contato com solo e umidade, ambientes propícios a ocorrência destes
agentes biológicos, como mourões, estacas, postes, dormentes e peças
roliças e serradas para a construção civil.
5.3. Alteração dos padrões colorimétricos
A Figura 2 apresenta os parâmetros colorimétricos da espécie
C. citriodora na sua condição natural, antes e após a ação dos fungos dos
fungos T. versicolor e G. trabeum.
27
Médias seguidas pela mesma letra na coluna, não diferem estatisticamente entre si pelo
test de Tukey(p > 0,01). L* luminosidade; a* matrizes eixo verde-vermelho; b* matrizes
eixo azul-amarelo, C* intensidade, h° tonalidade.
FIGURA 2 – VARIAÇÃO DOS PADRÕES COLORIMÉTRICOS DA MADEIRA DE C. citriodora EM CONDIÇÃO NATURAL (testemunha) E APÓS O ATAQUE (atacado) DOS FUNGOS T .versicolor E G. trabeum.
28
Ao considerar as amostras testemunhas, foram encontrados os
seguintes valores médios: 75,06, para a luminosidade L* que indica ser
uma madeira muito clara, uma vez que este valor se encontra próximo de
100 (branco absoluto); 7,88 para coordenada cromática a*, com a
presença da pigmentação vermelho; 14,76 para coordenada cromática b*,
ou seja, presença da pigmentação amarela; 61,64 para o ângulo da
tonalidade h° com maior proximidade a cor amarela-laranja, e 16,76 para
a saturação da cor C* maior presença de cinza. Analisando estes valores,
é possível classificar a madeira de C. citriodora como uma madeira
amarela-alaranjada.
Observa-se na Figura 2A uma redução na luminosidade para
ambos os fungos em relação às amostras padrão (testemunhas).
Entretanto, apenas a redução de Luminosidade ocasionada pelo fungo da
T. versicolor foi estatisticamente significativa. Para o fungo G. trabeum, a
luminosidade da madeira reduziu 2,78 (ΔL), valor inferior ao encontrado
pelo fungo da T. versicolor de 4,43(ΔL).
O escurecimento das amostras ocasionado pela ação dos
fungos pode estar associado aos mecanismos de deterioração em que os
mesmos atacam a madeira. Segundo Hon, (2001) e Temiz et al. (2005), a
redução dos valores do parâmetro L*, pode ser atribuída à formação de
compostos de quinina resultantes da deterioração de lignina. Além disso,
Martinez et al. (2005) afirmaram, que os fungos da podridão branca (T.
versicolor) têm a capacidade de degradar as celuloses, hemiceluloses e
lignina, enquanto os fungos da podridão parda (G. trabeum) degradam
apenas os polissacarídeos (celuloses e hemiceluloses).
O parâmetro a* (verde-vermelho) Figura 2B apresentou a
menor variação, ou seja, a ação dos fungos não provocou alterações
significativas nesse parâmetro. Porém, é interessante observar que o
valor de a* foi positivo igual a (0,32 Δa) para o fungo T. versicolor,
indicando que a alteração da cor se tornou mais vermelha, enquanto que
para as amostras atacadas pelo G. trabeum, o valor reduziu (-0,14 Δa),
indicando alteração da cor em direção ao verde. Este mesmo padrão foi
identificado por Lazarotto et al. (2016) após ensaio de deterioração com
C. citriodora e Eucalyptus sp com fungos da podridão branca e parda.
29
O parâmetro azul-amarelo (b*) Figura 2C foi o que apresentou
maior variação de cor da madeira, com aumento significativo após o
ataque de ambos os fungos, sendo 10,82 (Δb) para o fungo T. versicolor e
11,82 (Δb) para o fungo G. trabeum. Os valores de b* após o ataque dos
fungos foram superiores a 25 indicaram uma tendência ao
amarelecimento da madeira.
A saturação ou cromacidade C* (Figura 2D) também
apresentou aumento significativo semelhante após o ataque dos fungos
(Figura 2). O valor próximo de 30 aponta uma alteração da cor reduzindo
a quantidade de cinza e aumentando da intensidade da cor amarela.
Ao analisar a tonalidade ou ângulo de tinta h° (Figura 2E),
houve um aumento semelhante desse parâmetro após o ataque dos
fungos. O aumento de 72,62 para o fungo T. versicolor e 73,68 para o G.
trabeum, indicam o aumento do ângulo da tonalidade em direção ao eixo
da cor amarela.
De forma geral, os fungos promoveram alterações nos
parâmetros colorimétricos, não sendo significativo apenas para o a*, e L*
para o fungo G. trabeum. A coordenada cromática b* e o ângulo de tinta
h° foram os parâmetros que sofreram as maiores alterações. Assim,
evidencia-se que a ação dos fungos sobre a madeira, promoveu alteração
dos parâmetros colorimétricos.
Baseando-se nos valores médios dos parâmetros L*, a* e b*,
após a ação dos fungos, foi possível calcular a variação total de cor (ΔE).
A variação total de cor após o ataque de ambos os fungos, foi de 12,55
para T. versicolor e 13,40 para o G. trabeum. A partir destes valores,
segundo a classificação elaborada por Hikita et al. (2001)(Tabela 4), a
alteração de cor após o ataque dos fungos foi muito perceptível.
Ao comparar o dano causado pelos fungos na madeira (Tabela
6), apesar do menor valor médio de perda de massa ter sido evidenciado
após o ataque do fungo T. versicolor, foi possível observar níveis de
percepção (ΔE) de forma semelhante para ambos os fungos, superando o
intervalo máximo de classe estabelecido por Hikita et al. (2001), que é de
6,0 a 12,0 como muito perceptível (Tabela 4), ou seja, é possível
visualizar alterações na cor da madeira de C. citriodora em danos a partir
30
de 25% de perda de massa. Costa et al. (2011) evidenciaram este mesmo
padrão para madeira de Carapa guianensis, que após baixo valor de
perda de massa pelo fungo G. trabeum (17,51%), observaram valores de
ΔE de 13,02, também muito perceptível. Stangerlim et al. (2013) para
madeira de Dipteryx odorata após perda de massa inferior a 5%
ocasionada pelos fungos T. versicolor e G. trabeum, também observaram
valores de ΔE acima de 12.
5.4. Correlação dos padrões colorimétricos e a deterioração da
madeira
A Tabela 7 estão as correlações de Pearson, entre os
parâmetros colorimétricos (ΔL, Δa, Δb, ΔE) e a perda de massa
ocasionada pelos fungos G. trabeum e T. versicolor. Observou-se
correlação significativa entre os parâmetros Δa e Δb, a variação da cor ΔE
e a perda de massa da madeira apenas para o fungo da T. versicolor.
Não houve correlação entre os parâmetros e a perda de massa
ocasionada pelo fungo da G. trabeum.
TABELA 7 – CORRELAÇÕES ENTRE OS PARÂMETROS COLORIMÉTRICOS E VARIAÇÃO DE COR (ΔE) DA MADEIRA DE Corymbia citriodora E A PERDA DE MASSA (PM).
Groeophyllum trabeum Δa Δb ΔE PM
ΔL -0,6017* -0,4048NS -0,6196* -0,3392NS
Δa 0,7925** 0,7783** 0,4416NS
Δb 0,9299** 0,4327NS
ΔE 0,4327NS
Trametes versicolor Δa Δb ΔE PM
ΔL -0,6866** -0,6073* -0,79** -0,4395NS
Δa 0,9213** 0,8987** 0,7343**
Δb 0,9385** 0,7085**
ΔE 0,7339**
**= significativo a 1% de probabilidade; *= significativo a 5% de probabilidade; NS= não significativo.
31
Considerando os resultados após o ataque do fungo T.
versicolor, a luminosidade (L*) foi influenciada significativamente pelo
pigmento da cor vermelho-verde (a*), o pigmento da cor amarelo-azul (b*)
a variação total de cor (ΔE), conforme o aumento destes dois parâmetros
houve uma tendência na redução da luminosidade. Com relação ao fungo
G. trabeum a correlação entre a luminosidade, só foi significativa
pigmento da cor vermelho-verde (a*). Segundo Costa el al. (2011) a
luminosidade é influenciada pelas cores vermelho-verde (a*) e amarelo-
azul (b*), as quais caracterizam a coloração da madeira.
A pigmentação vermelho-verde (a*), apresentou correlação
significativa com a cor amarelo-azul (b*) e a variação total de cor (ΔE)
para ambos os fungos. Porém, a correlação foi significativa com a perda
de massa, apenas após o ataque do T. versicolor.
A pigmentação amarela-azul (b*) foi o parâmetro responsável
pela maior alteração da cor ocorrida na variação total de cor (ΔE) após o
ataque de ambos os fungos, a correlação significativa entre estas
variáveis, indicaram a tendência ao amarelecimento para (ΔE). Entretanto,
novamente a correlação com a perda de massa só foi observada após o
ataque do fungo T. versicolor.
É interessante observar, que apesar de o fungo da G. trabeum
ocasionar maior perda de massa e maior variação total de cor na madeira
de C. citriodora, não foi identificado correlação significativa entre estas
variáveis, contrário ao observado após o ataque do fungo da T. versicolor
(Figura 3). Uma explicação para este comportamento, pode estar
associado a forma com que estes organismos, se alimentam da madeira.
32
FIGURA 3 - CORRELAÇÃO DA VARIAÇÃO TOTAL DA COR (ΔE) COM A PERDA DE MASSA (%) OCASIONADA PELO ATAQUE DOS FUNGOS.
A relação foi mais representativa para o fungo T. versicolor.
Este padrão observado pode estar associado as características
bioquímicas que distinguem estes fungos. Os fungos da podridão branca
são um pequeno grupo de organismos que possuem a capacidade de
despolimerizar, degradar e mineralizar todos os componentes da parede
celular vegetal incluindo a celulose, hemicelulosese e a lignina (KERSTEN
& CULLEN, 2007). Já os fungos da podridão parda a degradação orienta
a mineralização dos polissacarídeos, porém a lignina não é solubilizada,
permanecendo como um resíduo amorfo (AGUIAR e FERRAZ, 2007). Em
complemento, Okino et al. (2009) afirmam que a análise colorimétrica da
madeira após o ataque de fungos, é influenciada pela presença de
estruturas de lignina residual e, ou, modificação das hemiceluloses.
33
6. CONCLUSÃO
O tratamento preservativo com Arseniato de Cobre Cromatado
(CCA tipo C) foi eficiente para aumento da durabilidade da madeira de
alburno de C. citriodra em relação ao ataque dos fungos T. versicolor e G.
trabeum, e cupins do gênero Nasutitermes.
A madeira não tratada de C.citriodora apresentou baixa
resistência para o cupim Nasutitermes sp. e moderada resistência à ação
dos fungos T.versicolor e G.trabeum.
A madeira tratada com CCA foi classificada como muito
resistente para os cupins e os fungos.
Houve alterações nos parâmetros de cores da madeira após o
ataque dos fungos, caracterizadas como muito perceptíveis.
A técnica de colorimetria se mostrou eficiente para avaliação da
deterioração da madeira sob o ataque do fungo T. versicolor. Recomenda-
se mais estudos, com diferentes fungos e madeiras para verificar a
eficiência da técnica de colorimetria na avaliação da deterioração.
34
7. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
AGUIAR, A.; FERRAZ, A. Fe3+ and Cu2+ -reduction by phenol derivates associated with Azure B degradation in Fenton-like reactions. Chemosphere, Oxford, v.66, n.5, p. 947-954, 2007. ALVES, G. K. A.; SINAY, M. C. F. Os dormentes ferroviários, seu tratamento e o meio ambiente. In: RIO DE TRANSPORTES. Anais... Rio de Janeiro, v. 3, 2005. AMERICAN SOCIETY FOR TESTING AND MATERIALS (ASTM). ASTM D 2017: Standard method for accelerated laboratory test of natural decay resistance for woods. Philadelphia, 2005. AMERICAN SOCIETY FOR TESTING AND MATERIALS (ASTM). ASTM D 2244: Standard practice for calculation of color tolerances and color differences from instrumentally measured color coordinates. Philadelphia, 2009. AMERICAN SOCIETY FOR TESTING AND MATERIALS (ASTM). ASTM D-3345: standard test method for laboratory evaluation of wood and other cellulosic materials for resistance to termites. Philadelphia, 2008. 3p. ARANTES, V.; MILAGRES, A. M. F. Relevância de compostos de baixa massa molar produzidos por fungos e envolvidos na biodegradação da madeira. Quim. Nova, Vol. 32, n. 6, p. 1586-1595, 2009. ARAUJO, H. J. B.; MAGALHÃES, W. L. E.; OlIVEIRA, L. C. Durabilidade de madeira de Eucalipto Citriodora (Corymbia citriodora (Hook.) K.D. Hill & L.A.S. Johnson) tratada com CCA em ambiente amazônico. Rev. Acta Amazônica, Acre. vol. 42, n.1, p. 49–58. 2012. ASSOCIAÇÃO BRASILEIRA DE PRESERVADORES DA MADEIRA – ABPM. Boletim Eletrônico Mensal, Frequent Asked Questions, 2012. Acessado em 23/01/2018, disponível no link: <http://www.abpm.com.br/faq>. BARILLARI, T. C.; FREITAS, V. P. Preservação. Revista da Madeira, São Paulo - SP, n. 68, dez. 2002. BARRETO, C. C. K.; PASTORE, T. C. M. Resistência ao intemperismo de quatro madeiras tropicais: o efeito dos extrativos. Ciência Florestal, Santa Maria, v.19, n. 1, p. 23-30, 2009. BOBADILLA, E. A.; SUIREZS, T. M.; PERYRA, O.; WEBER, E.; SILVA, F.; STEHR, A. M. Durabilidad de la madera del Pinus taeda impregnado
35
con arseniato de cobre cromatado, frente a hongos xilófagos, misiones, Argentina. Floresta, Curitiba, PR, v. 37, n. 1, 2007. BOTELHO, G. M. L.; SANTANA, M. A. E.; ALVES, M. V. S. Caracterização química, durabilidade natural e tratabilidade da madeira de seis espécies de Eucalyptos plantadas no Distrito Federal. Revista Árvore, Viçosa - MG, v. 24, n. 1, p. 115-121, 2000. CALIL JÚNIOR, C. et al. Manual de projeto e construção de pontes de Madeira. Suprema. São Carlos - SP, 252 p. 2006. CAMARGOS, J. A. A.; GONÇALEZ. A colorimetria aplicada como instrumento na elaboração de uma tabela de cores para a madeira. Brasil Floresta, Brasilia: MMA, n. 17, 2001. CARNEIRO, J.S.; EMMERT, L.; STERNADT, G.H.; MENDES, J.C.; ALMEIDA, G.F. Decay susceptibility of Amazon wood species from Brazil against white rot and brown rot decay fungi. Holzforschung, Berlin, v.63, n.6, p.767-772, 2009. CARVALHO, D. S.; SANTINI, E. J.; GOUVEIA, F. N.; ROCHA, M. P. Resistência natural de quatro espécies florestais submetidas a ensaio com fungos apodrecedores. Floresta e Ambiente, v. 22, n. 2, p. 271-276, 2015. CASTRO SILVA, J. Madeira preservada e seus conceitos. Revista da Madeira. n. 103, mar. 2007. CAVALCANTE, M. S. Métodos para aumentar a durabilidade da madeira. Boletim Técnico, Associação Brasileira de Preservadores de Madeira, São Paulo, n. 36, p. 159-170, 1985. CLAUSEN, C. A. Biodeterioration of wood. Wood Handbook, Wood as an Engineering Material. Forest Products Laboratory, General Technical Report FPL–GTR–190, v. 14, p. 312-327, 2010. COSTA, C.M.Q., SILVA, F.A.B., FARIAS, A.I. & MOURA, R.C. Diversidade de Scarabaeinae (Coleoptera, Scarabaeidae) coletados com armadilha de interceptação de vôo no Refúgio Ecológico Charles Darwin. Rev. Bras. Entomol, Igarassu - PE, v. 53, n. 1, p. 88-94, 2009. COSTA, J.A.; GONÇALEZ, J.C.; CAMARGOS, J.A.A.; GOMES, I.A.S. Fotodegradação de duas espécies de madeiras tropicais: Jatobá (Hymenaea courbaril) e Tauari (Couratari oblongifolia) submetidas à radiação ultravioleta. Cerne, Lavras, v.17, n.1, p.133-139, 2011. COSTA, M. A. Avaliação de metodologias alternativas para a caracterização dos fungos apodrecedores de madeiras. Dissertação (Mestrado em Ciências Florestais) – Universidade de Brasília, Brasília, 82 p., 2009.
36
COSTA, M. A.; COSTA, A. F.; PASTORE, T. C. M.; BRAGA, J. W. B. GONÇALEZ, J. C. Caracterização do ataque de fungos apodrecedores de madeiras através da colorimetria e da espectroscopia de infravermelho. Ciência Florestal, Santa Maria - RS, v. 21, n. 3, p. 567-577, 2011. CUI, W.; KAMDEM, D.P.; RYSPTRA, T. Diffuse reflectance infrared Fourier transform spectroscopy (DRIFT) and color changes of artificial weathered wood. Wood and Fiber Science, v.46, p.289-290, 2004. EATON, R.A.; HALE, M.D.C. Wood: decay, pests and protection. Londres: Chapman e Hall, 546 p., 1993. GONÇALVES, F. G.; PINHEIRO, D. T. C.; PAES, J. B.; CARVALHO, A. G.; OLIVEIRA, G. L. Durabilidade natural de espécies florestais madeireiras ao ataque de cupim de madeira seca. Floresta e Ambiente, Seropédica - RJ, v. 20, n. 1, p. 110-116, 2013. HIKITA, Y.; TOYODA, T.; AZUMA, M. Weathering testing of timber: discoloration, in: IMAMURA, Y. High performance utilization of wood for outdooor uses. Kyoto, Japão: Press-net, 2001. HON, D. N. S. Weathering and photochemistry of wood. Wood and cellulosic chemistry. New York: Marcel Dekker, v. 2, p.513-546, 2001. HOSKING, G. P.; BAIN, J. Arhopalus ferus (Coleoptera: Cerambycidae); its biology in New Zealand [forest and ornamental trees]. New Zealand Journal of Forestry Science, 1977. INSTITUTO BRASILEIRO DE ARVORES- IBÁ. Relatório anual. 2017. 80 p. Disponível em: <iba.org/images/shared/Biblioteca/IBA_RelatorioAnual2017_.pdf>. Acesso em: 10 nov. 2017. KERSTEN, P.; CULLEN, D. Extracellular oxidative systems of the lignin degrading Basidiomycete Phanerochaete chrysosporium. Fungal Genetics and Biology, Orlando, v.44, n.2, p.77-87, 2007. KONICA MINOLTA SENSING. Comunicação precisa da cor. 1998. 57 p. LAZAROTTO, M., CAVA, S. D. S., BELTRAME, R., GATTO, D. A., MISSIO, A. L., GOMES, L. G., & MATTOSO, T. R. Resistência biológica e colorimetria da madeira termorretificada de duas espécies de eucalipto. Revista Árvore, Viçosa-MG, v.40, n.1, p.135-145, 2016. LEVY, J. S. Fundamental record in wood preservation (lectures deliveed to the thirty-sixth session of the timber comunittee). 1979. LOPES, D. J. V.; PAES, J. B ; MEDEIROS NETO, P. N. ; BOBADILHA, G. S . Durability of treated wood Corymbia torelliana and Eucalyptus grandis
37
x Eucalyptus urophylla against subterranean termite. Proceedings IRG Annual, Viña del Mar: Stockholm, v. 46, p. 1-6, 2015. LOPES, J. O.; GARCIA, R. A.; NASCIMENTO, A. M.; LATORRACA, J. V. F. Uniformização da cor da madeira jovem de teca pela Termorretificação. Revista Arvore, v. 38, n. 3, p. 561-568, 2014. MELO, R. R. M.; STANGERLIN, D. M.; SANTINI, E. J.; HASELEIN, C. R.; GATTO, D. A.; SUSIN, F. Durabilidade natural da madeira de três espécies florestais em ensaios de campo. Ciência Florestal, Santa Maria - RS, v. 20, n. 2, p. 357-365, 2010. MENDES, A. S.; ALVES, M. V. S. A degradação da madeira e sua preservação. Instituto Brasileiro de Desenvolvimento Florestal, Brasília, 57 p, 1988. MONTANA QUÍMICA S. A. Guia da Madeira: Agentes biodeterioradores da madeira - Perfuradores marinhos. 2017. Disponível em <http://www.montana.com.br/Guia-da- Madeira/Tratamento/Agentes-Biodeterioradores/Perfuradores-Marinhos>. Acessado no dia 10/05/2017. MORESCHI, J.C. Biodegradação e preservação da madeira. Departamento de Engenharia e Tecnologia Florestal - UFPR. V. 1, n. 4, abril. 2013. MOTTA, J. P.; OLIVEIRA, J. T. S.; PAES, J. B.; ALVES, R. C.; DAMBROZ, G. B. V. Resistência natural da madeira de Tectona grandis em ensaio de laboratório. Ciência Rural, Santa Maria - RS, v. 43, n. 8, p. 1393-1398, 2013. MOYA, R.; FALLAS, R. S.; BONILLA, P. J.; TENORIO, C. Relationship between wood color parameters measured by the CIELab system and extractive and phenol content in Acacia mangium and Vochysia guatemalensis from fast-growth plantations. Molecules, v. 17, p. 3639-3652, 2012. OKINO, E. Y. A.; PASTORE, T. C. M.; CAMARGOS, J. A. A.; CORADIN, V. T. R.; TEIXEIRA, D. E.; SANTANA, M. A. E.; FAGG, C. W. Ensaio acelerado de laboratório de três espécies de madeiras da Amazônia chamadas de Tauari, expostas aos fungos de podridão branca e parda e resposta colorimétrica de acordo com o sistema CIEL* a* b*. Ciência Florestal, Santa Maria - RS, v. 25, n. 3, p. 581-593, 2015. OLIVEIRA, A. M. F.; LELIS, A. T.; LEPAGE, E. S.; LOPEZ, G. A. C.; OLIVEIRA, L. C. S.; CAÑEDO, M. D.; MILANO, S. Agentes destruidores da madeira. Manual de preservação de madeiras, São Paulo: IPT, v.1, p. 99-278, 1986.
38
OLIVEIRA, J. T. S.; HELLMEISTER, J. C.; TOMAZELLO FILHO, M. Variação do teor de umidade e da densidade básica na madeira de sete espécies de eucalipto. Revista da Árvore, v.29, n.1, p.115-127, 2005. PAES, J. B.; MELO, R. R.; LIMA, C. R. Resistência natural de sete madeiras a fungos e cupins xilófagos em condições de laboratório. Cerne, Lavras, v. 13, n. 2, p. 160-169, 2007. PAES, J. B.; MORAIS, V. M.; LIMA, C. R.; SANTOS, G. J. C. Resistência natural de nove madeiras do semiárido brasileiro a fungos xilófagos em simuladores de campo. Revista Árvore, Viçosa - MG, v.33, n.3, p.511-520, 2009. PINHEIRO, R. V. Influência da preservação contra a demanda biológica em propriedade de resistência e de elasticidade da madeira. Tese (Doutorado) – Universidade de São Paulo, Escola de Engenharia de São Carlos. São Paulo – SP, 162 p., 2011. REVISTA DA MADEIRA (REMADE). 2013. Edição 134. Disponível em: http://www.remade.com.br/br/revistadamadeiramateria.php?num=1652&subject=Preservante&title=Princiapais+agentes+deterioradores+de+madeiras. Acessado no dia 10/05/2017. RIBEIRO, P. G. Utilização de tecnicas não destrutivas para caracterização de madeiras de Pinus caribae Var. houndurensius e de Eucalyptus grandis. Dissertação (Mestrado em Engenharia Florestal). Departamento de Engenharia Florestal, Universidade de Brasilia, Brasilia, DF, 114p, 2009. RICHARDSON, B.A. Wood preservation. London: E & FN Spon, v. 2, 226 p., 1993. SANTINI, J. E. Biodeterioração e preservação da madeira. Santa Maria: UFSM/FATEC, 125 p, 1988. SILVA, C.A. Análise da composição da madeira de Caesalpinia echinata Lam. (paubrasil): subsídios para o entendimento de sua estrutura e resistência a organismos xilófagos. Tese (Doutorado em Biologia Celular e Estrutural) – Universidade Estadual de Campinas, Campinas, 132 p., 2007. SILVA, L. F.; PAES, J. B.; JUNIOR, W. C. J.; OLIVEIRA, J. T. S.; FURTADO, E. L.; ALVES, F. R. Deterioração da madeira de Eucalyptus spp. por fungos xilófagos. CERNE, v. 20, n. 3, p. 393-400, 2014. STALLBAUN, P. H.; BARAUNA, E. E. P.; PAES, J. P.; RIBEIRO, N. C.; MONTEIRO, T. C.; ARANTES, M. D. C. Resistência natural da madeira de Sclerolobium paniculatum vogel a cupins em condições de laboratório. Floresta e Ambiente, v. 24, n. 2, 2017.
39
STANGERLIN, D. M.; COSTA, A. F; GONÇALEZ, J. C.; PASTORE, T. C. M.; GARLET, A. Monitoramento da biodeterioração da madeira de três espécies amazônicas pela técnica da colorimetria. Acta Amazonica, Manaus - AM, v. 43, n. 4, p. 429 – 438, 2013. STANGERLIN, D.M. 2012. Monitoramento de propriedades de madeiras da Amazônia submetidas ao ataque de fungos apodrecedores. Tese (Doutorado em Ciências Florestais), Universidade de Brasília, Brasília. 259 p, 2012. TEMIZ, A.; YILDIZ, U.C.; AYDIN, I.; EIKENES, M.; ALFREDSEN, G.; ÇOLAKOGLU G. Surface roughness and color characteristics of wood treated with preservatives after accelerated weathering test. Applied Surface Science, Amsterdam, v.250, n.1-4, p.35-42, 2005. TUFOLO NETTO, H. Benefícios do uso da madeira de reflorestamento tratada para a construção civil. Monografia (Especialização em Gestão Empresarial) – Instituto Nacional de Pós Graduação, São Paulo, 47 p., 2010. TREVISAN, H. Degradação natural de toras e sua influência nas propriedades físicas e mecânicas da madeira de cinco espécies florestais. Dissertação (Mestrado em Ciências Florestais) – Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica - RJ, 69 p., 2006. VIDAL, J. M.; EVANGELISTA, W. V.; SILVA, J. C.; JANKOWSKY, I. P. Preservação de madeiras no Brasil: histórico, cenário atual e tendências. Ciência Florestal, Santa Maria, v. 25, n. 1, p. 257-271, 2015. VIVIAN, M. A. Resistência biológica da madeira tratada de Eucalyptus grandis e Eucalyptus Cloezina em ensaios de laboratório e campo. Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal de Santa Maria, Centro de Ciências Rurais, Programa de Pós-Graduação em Engenharia Florestal, 105 p., 2011. VIVIAN, M. A.; SANTINI, E. J.; MODES, K. S.; GARLET, A.; MORAIS, W. W. C. Resistência biológica da madeira tratada de Eucalyptus grandis e Eucalyptus cloeziana a fungos apodrecedores em ensaios de laboratório. Ciência Florestal, Santa Maria, v. 25, n. 1, p. 175-183, 2015. VIVIAN, M. A.; SANTINI, E. J; MODES, K. S.; CARVALHO, D.; MORAIS, W. W. C. Resistência biológica da madeira tratada de duas espécies de Eucalyptus em ensaio de campo. Pesquisa florestal brasileira, Colombo, v. 34, n. 80, p. 425-433, 2014. ZABEL, R.A.; MORRELL, J.J. Wood microbiology: decay and its prevention. San Diego: Academic Press, 476 p, 1992.
40
![Apostila de Colorimetria[1]](https://img.document.onl/doc/110x75/5571fa0249795991699102fd/apostila-de-colorimetria1.jpg)
